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AAV 注射液配制
1、确定注射参数计算最大体积:称量小鼠获取「平均体重」,并根据您所在机构的规定(例如:10 µL/g)计算单只小鼠的最大注射体积。公式:最大注射体积 (µL) = 10 µL/g × 平均体重 (g)选择给药策略:固定总量 (vg/只): 操作简单,所有小鼠注射相同的病毒总量。按体重计算 (vg/kg): 更为严谨,能校正个体体重差异,尤其推荐在雌雄小鼠混用时使用。2、计算工作液体积计算单只病毒量
玻璃体注射 (IVT)
适用范围: 靶向眼内组织,特别是视网膜。
滴鼻给药
适用范围: 主要用于靶向呼吸系统(如上呼吸道、肺部)和通过嗅球入脑。
小鼠肌肉注射
适用范围: 肌肉组织,可实现高效的局部基因表达,或利用肌肉作为「蛋白工厂」进行全身性分泌。
小鼠腹腔注射
适用范围: 高效转导肝脏、脾脏、胰腺等腹腔内器官。
慢病毒包装流程
慢病毒常用滴度检测方法解析:1、荧光显微镜计数法原理:通过荧光显微镜直接观察和计数表达荧光蛋白的阳性细胞,估算病毒滴度。操作流程:将病毒进行梯度稀释并感染目标细胞;培养 48-72 小时;荧光显微镜下观察计数阳性细胞。计算公式:TU/mL = 阳性细胞数 × 稀释倍数 / 感染体积(mL)优势:设备要求较低;可直观观察细胞形态和感染情况;适合初步评估或小规模检测;操作相对简便。局限性:统计效率低,
脑立体定位
适用范围: 实现对大脑特定核团或区域的精准基因转导。
气管插管给药
适用范围: 无需手术即可将病毒递送至气管和肺部,并可实现对左、右肺的选择性给药。
气管内注射
适用范围: 直接将病毒载体递送至气管和肺部。
鞘内注射 (IT)
适用范围: 靶向中枢神经系统 (CNS),如脊髓和大脑。
肾实质注射
适用范围: 直接将基因递送至肾脏细胞,用于研究肾脏功能、纤维化及相关疾病。
肾盂注射 (逆行灌注)
适用范围: 通过逆行方式实现对整个肾脏的高效基因递送,特别适用于需要广泛靶向肾单位的研究。
视网膜下注射 (SRI)
适用范围: 直接靶向视网膜细胞,特别是光感受器细胞和视网膜色素上皮 (RPE) 的金标准方法。
尾静脉注射
1.病毒注射定位与固定: 擦干鼠尾,用酒精消毒后再次擦干。用拇指和食指绷直鼠尾,使一侧静脉朝上。始终从尾巴的远端(靠近尾尖)开始首次注射。进针: 将针头斜面朝上,以几乎与尾巴平行的极小角度,平稳地滑入静脉。推注与判断:成功标志: 推注活塞时应感觉不到任何阻力,部分品系小鼠可见注射点近端的血管瞬间变白。失败迹象: 若感到阻力或注射部位出现皮下鼓包,说明注射失败,应立即停止,拔出针头。再次尝试: 若初
腺相关病毒的包装流程
qPCR 检测法:原理:该方法通过特异性引物和探针扩增病毒基因组特定区域,并实时监测荧光信号强度来定量病毒基因组。常用的靶序列包括ITR区域、载体中的启动子或转基因序列等。
心包内注射 (新生鼠)
适用范围: 高效靶向 P0-P3 新生鼠的心脏。
心肌原位注射
适用范围: 高效、直接地将基因导入心脏组织,是心脏研究的常用技术。
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