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        小鼠腹腔注射

        相关实验:病毒感染细胞实验

        最新修订时间:

        用途

        适用范围: 高效转导肝脏、脾脏、胰腺等腹腔内器官。

        材料与仪器

        病毒液制备: 使用无菌 PBS 将 AAV 稀释至目标浓度。用注射器吸取药液并彻底排空气泡。

        针头规格: 成年鼠推荐使用 27-30G;新生鼠使用 30-31G。

        注射体积参考:成年鼠: 50–200 µL;新生鼠 (1-5 日龄): 10–50 µL

        步骤

        1.病毒注射

        固定动物:

        成年鼠: 固定,使其头部朝下倾斜,内脏前移。

        新生鼠: 用拇指和食指轻柔固定即可。

        定位与消毒: 找到小鼠腹部下方四分之一、偏离腹部中线的区域。用 70% 乙醇消毒。

        小鼠腹腔注射

        图片来源:https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/TECH%2010%20IP%20Injections%20in%20the%20Mouse%20and%20Rat.pdf

        进针操作: 将小鼠腹部朝上,以 30-45° 角将针头刺入腹壁(深度约 5-8mm)。

        安全回抽: 此步至关重要。轻微回抽活塞,确认无血液或体液回流,以确保针头未进入血管或脏器。

        缓慢注射: 确认位置正确后,缓慢、匀速地注入病毒溶液。

        拔针与按压: 注射完毕后,快速拔出针头,并用干棉球轻压注射点数秒。

         

        2.注射后管理

        将动物放回洁净鼠笼,观察至少 30 分钟。

        特别注意: 新生鼠必须放置在加热垫上维持体温,防止失温。

        来源:丁香实验

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