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        尾静脉注射

        相关实验:病毒感染细胞实验

        最新修订时间:

        材料与仪器

        动物准备: 称量小鼠并计算最终剂量。将其置于固定器中,仅露出尾巴。

        血管扩张: 将鼠尾浸入温水(约 40°C)至少 1 分钟,或用酒精棉球擦拭,直至两侧静脉清晰可见。这是成功的关键。

        药液准备: 在此期间,将计算好的 AAV 溶液吸入注射器。务必排尽气泡,并将注射器静置约 40 秒,使其恢复至室温,避免冷刺激导致血管收缩。

        步骤

        1.病毒注射

        定位与固定: 擦干鼠尾,用酒精消毒后再次擦干。用拇指和食指绷直鼠尾,使一侧静脉朝上。始终从尾巴的远端(靠近尾尖)开始首次注射。

        进针: 将针头斜面朝上,以几乎与尾巴平行的极小角度,平稳地滑入静脉。

        推注与判断:

        成功标志: 推注活塞时应感觉不到任何阻力,部分品系小鼠可见注射点近端的血管瞬间变白。

        失败迹象: 若感到阻力或注射部位出现皮下鼓包,说明注射失败,应立即停止,拔出针头。

        再次尝试: 若初次失败,须在更靠近身体(近端)的位置重新尝试。每侧静脉的失败尝试不应超过 3 次。

         

        2.注射后处理

        止血: 注射完成后,缓慢拔出针头,并立即用干纱布按压注射点至少 1 分钟,直至完全止血。

        观察与清洁: 将小鼠移入新笼中,密切观察至少 10 分钟。最后,用 70% 乙醇彻底消毒工作台面。

        尾静脉注射

        图片来源:https://research.unc.edu/wp-content/uploads/2021/06/mouse-class-handout.pdf

        来源:丁香实验

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