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答:1. 包被:PLL/PDL、层粘连蛋白失效、浓度不够、包被后没充分晾干、洗板不当,基底抓附力不足,细胞挂不住。2. 细胞解离损伤:消化时间过长、酶浓度偏高;吹打时力度大、枪头没抛光,剪切损伤神经元,细胞活力下降,就算种下去也很快飘起。建议消化3–5min,看到组织松散就终止,吹打轻柔、次数控制住,可加DNase减少DNA黏连成团。3. 接种操作:接种密度偏低是很常见原因;悬液加板后反复晃动、频繁挪
答:cf-DNA 提取建议使用专用游离核酸采血管并尽快分离血浆,采用柱式或磁珠法富集短片段;cf-mtDNA 定量需设置线粒体特异引物并做绝对定量标准曲线。
答:A、B是小鼠颈淋巴结解剖图大致位置
答:一、染色原理与显色效果天狼星红染色原理:天狼星红是一种强酸性染料,通过静电作用与胶原纤维中的碱性基团(如赖氨酸、羟脯氨酸)结合。染色后,胶原纤维呈红色,肌纤维呈黄色,细胞核通常用苏木素复染呈蓝色715。显色特点:在偏光显微镜下,胶原纤维可呈现双折光现象(Ⅰ型胶原呈黄色或红色,Ⅲ型胶原呈绿色),从而区分胶原类型1015。Masson三色染色原理:通过多种染料组合(如酸性品红、苯胺蓝)对不同组织成分进
答:非常通俗的讲就是几个病毒对应一个细胞的感染。例如MOI=10就是你加入的病毒量是细胞数量的10倍。这样的感染剂量很容易立刻达到平台期。
答:分离胶浓度的选择 分离胶的浓度主要依据目标蛋白的分子量来确定。蛋白分子量越小,所需的分离胶浓度通常越高,以便更好地分离和分辨小分子蛋白。常见的分离胶浓度包括4%、6%、8%、10%、12%等,不同浓度的分离胶对应不同的最适蛋白分子量范围。 4%分离胶:适用于较大分子量的蛋白质,但一般不常用。 6%分离胶:适用于中等至较大分子量的蛋白质,如10-200 kDa。 8%分离胶:适用于较小分子量的蛋白质
答:可以参照这篇硕士论文《基于PI3K-AKT通路探讨泽泻醇A改善脑微血管内皮细胞氧糖剥夺损伤的机制研究》和博士论文《LIPUS联合SonoVue对肾小球内皮细胞的影响及机制研究》通透性检测方法步骤如下:将细胞接种于含0.4 um 孔聚碳酸酯膜的6.5 mm Transwell小室,培养Sd至细胞融合,进行OGD 处理,再予以不同含药培养基复氧,CO2继续培养24 h。然后将上室培养基更换为含20 u
答:每个24孔板一般每孔20w-40w左右
答:要放标尺,标尺和放大倍数的关系为:标尺每一格代表20μm;100x标尺每一格代表10μm;200x标尺每一格代表5μm;400x标尺每一格代表2.5μm;500x标尺每一格代表2μm;1000x标尺每一格代表1μm。放大倍数的测量是动态的,随着显示图像的大小不同,需要时就测量。标尺的作用就在于这里。
答:一般OD600=1时对应的细菌浓度为2*10^9cfu/ml
答:皮肤从外到内分为表皮层、真皮层和皮下脂肪层,而表皮层又从外到内可以看到最外层是角质层,角质层下面是颗粒层,颗粒层下面是表皮最厚的棘细胞层,棘细胞层的下面则是基底细胞层。由此可见绿色箭头表示的是表皮层,黄色箭头表示的是角质层。
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