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科研学霸天团,48小时有问必答
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问
放射免疫测定时,胰岛素释放试验的曲线特点?
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(1)胰岛素分泌不足型:为试验曲线呈低水平状态,表示胰岛功能衰竭或遭到严重破坏,说明胰岛素分泌绝对不足,见于胰岛素依赖型糖尿病,需终身胰岛素治疗。(2)胰岛素分泌增多型:患者空腹胰岛素水平正常或高于正常,刺激后曲线上升迟缓,高峰在2小时或3小时,多数在2小时达到高峰,其峰值明显高于正常值,提示胰岛素分泌相对不足,多见于非胰岛素依赖型肥胖者。该型患者经严格控制饮食、增加运动、减轻体重或服用降血糖药物
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问
双向免疫扩散实验怎么判断抗原蛋白相对浓度?
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当两者在最适当比例处相遇时,即形成一条清晰的沉淀线。根据有否出现沉淀线,可用已知的抗体鉴定未知的抗原,或用已知的抗原鉴定未知的抗体。沉淀线靠近抗原孔,则提示抗体含量大;靠近抗体孔,则提示抗原含量较多;不出现沉淀线则表明抗体或抗原的缺乏或抗原过剩;另外,如出现多条沉淀线,则说明抗原和抗体皆不是单一的成分。因此,可用于鉴定抗原或抗体的纯度。
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问
所有底物在孵育之前都要避光吗?
yfcwyh
ELISA实验中,在酶标抗体孵育,以及显色底物孵育这两步建议避光,其他步骤无需避光。避光可采用锡纸包裹,或将整个ELISA板子放入暗盒或抽屉等无光处即可。
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问
做COIP实验,互作的两个蛋白在目标位置有条带,但是阴性对照(NC)在相同蛋白分子量的位置也出现了浅条带,是什么原因?怎么改善?
小暮
阴性不应该有条带,有条带就是有结合,这个说明抗体有非特异结合的可能:1.抗体特异性不够,如果反复多次阴性对照出现条带考虑,更换抗体。2.上样错误,仅表现一次阴性对照阳性,重复实验就行
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问
免疫荧光中DAPI 信号过强甚至看不清细胞核轮廓和核仁是什么情况?
dxywode
1.组织切片太厚:这种情况下可以选择将组织切片变薄试试。2.封闭不佳:封闭的目的就是为了减少非特异性的结合,减少背景染色。如果背景太强,可以考虑换种封闭液或者增加封闭孵育的时间。
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问
请问流式细胞术染CD4 CD8 CD3的时候能否先固定,再染色?
dxywode
标本采集后要及时固定或深低温保存,以免组织发生自溶,DNA降解,而造成测试结果的误差。
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问
Western Blot转膜失败是为什么
小暮
(1) 膜没有完全均匀湿透使用 100% methanol 浸透膜。(2) 靶蛋白分子量小于 10 000选择小孔径的膜,缩短转移时间。(3) 靶蛋白等电点等于或接近转移缓冲液 pH 值可尝试使用其他缓冲液如 CAPS 缓冲液(pH 10.5) 或使用低 pH 值缓冲液如乙酸缓冲液。(4) 甲醇浓度过高过高甲醇浓度会导致蛋白质与 SDS 分离,从而沉淀在凝胶中,同时会使凝胶收缩或变硬,从而抑制高分
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问
染色不清楚的原因是什么?
dxywode
应该是染液的问题哦,缓冲液的PH也有关系,最好在显微镜下边染色边观察。
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问
重复性较差,做了两个复孔值相差太大,是什么原因?
dxywode
1、样品数量多少不一,加样时间有长有短;所以重复某一样品时,加样时间尽可能与第一次接近。2、保温时间不一致,洗涤条件不一致,操作人员不一致;重复测定标本,操作条件、人员等应尽可能与上次保持一致,以排除这些因素造成的不一致的可能性。3、加样量不一致;样品稀释前应充分混匀,尽可能使用同一移液器并装紧吸嘴。
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问
花板实验终止后,整板结果呈现均一的黄色或淡黄色,或阴阳性对照、质控正常,阴性标本OD值过高。是什么原因?
dxywode
: ①整板的黄板现象可能是由于错加其他试剂造成。②酶标对吸头的污染以及对盛放显色剂容器的污染都易造成黄板现象。③孵育温度过高或孵育时间过长。④未按要求洗板,用自来水或其他公司洗液洗板,特别是洗液时每孔未注满洗液,易造成花板黄板现象。⑤阴阳性对照、质控正常,阴性标本OD 值过高的情况称为花板,一般是由于标本的收集、处理和保存方法不当,洗板不切底、显色时间延长造成。
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问
Elisa测定中出现了问题,可能会有哪些原因呢
dxywode
标准曲线较差、无信号、变异系数较大
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问
染色质为什么要片段化,片段化长度是多少
府宅
一般片段化的大小在200-1000bp,一般300-600bp均能获得较好的ChIP结果。如果小于200bp的话,蛋白的结合位点很有可能被打断,原因是由于每个核小体结合DNA的序列长度为175bp,加上不同核小体间的linker DNA序列,这样每个核小体结合DNA的最小序列大概在200bp左右,如果片段长度大于1000bp,您将会分离获得包含目标序列的DNA,但所要研究的蛋白可能会离您目标序列有
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问
石蜡切片在染色过程中总出现脱片现象的原因是?
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1.多聚赖氨酸玻片质量的问题。我原先是买的,后面补做第二批时用的病理科老师自己做的片子,要好一点。2.组织切的不好,切片机的问题例如比较老的旧的机器切得厚或者不均匀,或者切片者手法不好等。3.组织的问题,我用的组织癌症的很多,越是癌症组织有坏死之类越容易脱。4.没烤好,时间短温度不够之类。
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问
电泳液PH没问题,电极也没插反,为什么跑不出条带?
郭郭的郭郭
这个有许多原因,跑电泳有对照吗?比如marker.如果没有就是电泳问题,如果有,你看下有没有引物二聚体,如果没有,pcr整体肯定忘加东西了,需重做,如果有,就是你pcr体系本身有问题,需要优化,或是你的引物不好,需重新设计。还有就是 琼脂糖里面忘记加溴化乙锭了,这个也有可能。
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问
影响淋巴细胞转化的因素有哪些?
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⑴、受体细胞转化的受体细胞一般是限制-修饰系统缺陷的突变株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株,它可容忍外源DNA分子进入体内并稳定地遗传给后代。另外还应根据载体的性质及实验的目的选择合适的宿主。此外,受体细胞生长状态和密度也很重要。不要使用经过多次转接或储存于4℃的培养菌。细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好,密度过高或不足均会影响转化率。⑵、载体DNA和重组DNA方面载体本身性质决定了转化的
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对流免疫电流里,为什么抗原必须加在接电源阴极的孔呢?
郭郭的郭郭
跟在缓冲液中抗原抗体所带的电荷以及两者泳动的方向有关。在pH值8.6的琼脂凝胶中,抗体球蛋白只带有微弱的负电荷,而且它分子又较大,所以泳动慢,受电渗作用的影响也大,往往不能抵抗电渗作用,故在电泳时,反而向负极倒退。而一般抗原蛋白质常带较强的负电荷,分子又较小,所以泳动快,虽然由于电渗作用泳动速度减慢,但仍能向正极泳动。
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用免疫荧光方法做组织切片和培养细胞内的蛋白,两者操作过程有哪些不同?
小暮
原理都是一样的,就是固定方式不一样,细胞固定多用甲醛,组织切片固定多用多聚甲醛
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问
Elisa实验显示不明显问题
peaceful13
是所有孔显色都不明显?标曲如果也不显色,那应该是整个实验体系是有问题的,需要去深究一下原因,如果标曲显色是正常的,而样本显色比较低,一般就是样本含量的问题,如果确实是因为含量低的原因,那么需要优化一下样本的处理或者对样本蛋白进行提取过纯化
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问
实验中,双向免疫扩散实验测得抗体效价为1:2,而ELISA实验测得得抗体效价却是1:32000,为什么差距?这么大?
府宅
在筛选抗体的时候,要看抗原表位位置,如果是线性表位,重组蛋白筛选没问题,如果非线性表位或者复杂结构包含着的,如果用重组蛋白表达出来,表位结构可能与真实结构不一致,从而导致筛选出来的抗体,并非真实表位相对的抗体,所以ELISA结果会有差距大
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用目标蛋白做IP,WB的时候孵Ub,但是目标条带位置没有ladder,该怎么改善条件?
dxywode
你可以加 NEM 抑制 去泛素酶(DUB)的活性,或者干脆用 denaturing IP 去拉目的蛋白,然后检测泛素化。如果真的很难做,可以试试看过表达目的蛋白,再 IP ,当然无论如何也要用 NEM 或者 denaturing IP.
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