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wb新手求助,image lab曝光scn格式如何转换成tif格式?
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WB 点样孔有残留,跑出的条带就变形了,这是怎么回事呢
丁香实验
我老师说出现这种情况在水浴5-10分钟试试
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ChIP中input的问题
bob523740605
我最后做的是Qpcr ,数据分析的时候是一input为基准的分析,通过一个excel表分析http://http://d.dxy.cn/detail/4076728
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【原创】Western blot 之制胶技巧,易翻车点及其解决方法汇总
丁香实验
说到WB制胶,相信很多同志都有说不尽的"翻车"故事。俗话说的好,工欲善其事必先利其器,SDS PAGE凝胶就是我们做WB要利的器,因为高质量的胶是跑出漂亮条带的重要前提之一。今天我们就来探讨一下制胶这个事。一、SDS PAGE 凝胶制备1、玻璃板梳子的清洁先用自来水浸泡5分钟,洗洁精清洗,注意厚玻璃板两侧沟槽容易残留胶,可以用尖锐的东西轻刮,然后用自来水冲洗干净泡沫,再用纯水冲洗即可,37度烘干或
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wb 小白求助 E-cadherin 和 N-cadherin 转膜条件和分子量是多少?
丁香实验
E-cadherin是135,一抗的话我们是4℃。转膜的话,我们是恒流,300mA,90min左右
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问
显色弱灵敏度低?
丁香实验
在完成所有实验步骤进行底物TMB溶液显色后,酶标板中孔的显色比较浅,即只有微弱的信号呈现。出现该现象的可能原因:产品过有效期,试剂没有按规定进行适当的保存。试剂,标准品或者样品在使用前没有平衡到室温。少加了试剂的量或者加入试剂的稀释比例不当。洗板或者加样过程中,酶标物受污染失活。孵育时间和孵育温度未达到实验要求。洗涤液稀释倍数不符合要求,洗板次数过多,洗板冲击力过大,洗板浸泡时间过长。底物溶液TM
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问
花板无梯度背景高是怎么回事?
丁香实验
在完成所有实验步骤进行底物TMB溶液显色后,酶标板中的孔有颜色但没有梯度,背景也可能较高,。出现该现象的可能原因:底物溶液TMB未置于阴凉避光处保存,实验前溶液已经变蓝。孵育温度过高或者孵育时间过长,发生了较强的非特异性吸附。没有按说明书要求洗板,特别是洗板时洗涤液的量少加了。加样时没有换枪头造成交叉污染。花板现象:低浓度或者低活性的包被抗体或者检测抗体,封闭不足导致的本底不稳定,洗板不充分,包被
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出现白板现象是怎么回事?
丁香实验
在完成所有实验步骤进行底物TMB溶液显色后,酶标板中所有孔的颜色均为无色,即无信号呈现。出现该现象的可能原因:试剂已过保质期,不同批次稀释液交叉使用。错加漏加检测A,检测B或者底物溶液TMB。洗板或者加样过程中,酶标记物被污染失活,稀释液中含有酶抑制剂如叠氮呐等。配置稀释液的蒸馏水可能被污染。洗涤液是浓缩型的,没有按比例进行稀释。酶标记物的活性和效价比较低。溶液的PH值不正确,一般稀释液的PH值应
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研究人血清中的一个蛋白,目前正在制备单抗。请问在用Elisa检测的时候用什么做标准品好?如果就用合成的重组蛋白是否合适?
丁香实验
首先回答你标准品这个,既然称之为标准品那么就可以作为标准的物质,那么就一定具有一定的溯源性。就实际情况来讲你用重组和天然的都可以,因为这两种在商品化Elisa试剂盒中都有使用。那么基于你这个问题再深入聊聊。首先我们分为两类:一是你想做个Elisa检测仅仅用于你项目或者论文的一部分;二是你是准备做商业化产品。第一种情况,你只需要大致做做,用重组就可以。不用深究;第二种情况,这种情况要求你论证更充分。
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问
ELISA检测时,如何排除其他抗体干扰?
丁香实验
就问题来讲我我认为是这样的体内的Ig的不同形式其实是存在在免疫的不同时期的,或者我们理解为半衰期不同。那么最后起到作用主要还是IgA,其他的都比较少。那么你想排除干扰,这个一般是在你产品的检测系统上下功夫。比如你二抗的特异性等。纯粹去除的,并且简单可行的我没遇见过。
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问
WB 敷牛奶需要多长时间?
wangyx520
一般采用 5% 牛奶封闭,可以 4° 封闭过夜,也可以室温封闭 1-2 小时。我都试过,没啥区别。
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问
为什么 WB 有荧光,但曝光失败?
yunzhongmanbu555
我觉得很可能是显影液的问题。新鲜的显影液应该是淡黄透明,如果变成酱油色就尽量别用了。以前我就遇到过这种情况,一换显影液,马上就可以显出了。
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为什么做的 Western 最后都没有显出影啊?
wuhao88
在两个实验室遇到过ECL试剂盒出问题,第一次是前人用试剂盒时吸取液体没有换枪头,试剂盒污染;第二次是师兄用下来的试剂盒,开封日期已经2年,最后验证是试剂盒失效,换了试剂盒之后就曝出很漂亮的条带,浪费了我半个月时间。我遇到同样的问题是从头找起的:先用考马斯亮蓝染胶看看胶上有没有蛋白,排除蛋白被降解,如果没有问题,再用考马斯亮蓝染转膜后的膜,可以看到膜上是不是有蛋白,如果还没有问题,就要注意二抗是不是
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为什么同一批次提取蛋白跑出的条带不一致?
dxymuchong
我可以这么理解吗:内参稳定说明上样量稳定(应该大致是一样的),所以不存在什么上样量不一样的问题;出现这样的结果,问题出在每一步都有一定的可能性,比如电泳,转膜,敷抗体,显色等等。但据我所知,WB最关键的还是转膜和敷抗体步骤,可能是你敷抗体的时候敷的不均匀。我的建议是你再认认真真,仔仔细细做几遍,很可能重复性就做出来了。只是个人观点。
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为什么用 ELISA 试剂盒检测样品显色无差异?
jm晶美生物
显色弱灵敏度低。在完成所有实验步骤进行底物TMB溶液显色后,酶标板中孔的显色比较浅,即只有微弱的信号呈现。 出现该现象的可能原因: 1.产品过有效期,试剂没有按规定进行适当的保存。 2.试剂,标准品或者样品在使用前没有平衡到室温。3. 少加了试剂的量或者加入试剂的稀释比例不当。4. 洗板或者加样过程中,酶标物受污染失活。5.孵育时间和孵育温度未达到实验要求。6.洗涤液稀释倍数不符合要求,洗板次数过
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为什么 Western Blot 的条带向两边扩散?
larixa
你的胶是失败的,胶的比例有无问题,微波炉加热是否充分,趁热倒胶时是否均匀,冷却凝结时是否静置,冷却时间是否足够。都可能出现小问题。从你的叙述来看,你的胶可能不止一处存在问题。先不要浪费你的样品,先研究一下怎样做出能用的凝胶。
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为何我的 WB 压出的片子整张膜都发光?
我是金博士
1、转膜条件基本可以,一抗与二抗浓度均较高。建议:(1)先做二抗的稀释度(同时不同的ECL均需检测),用点杂交,用1倍TBS或PBS稀释二抗做不同的梯度,比如1:1000,1:2000,1:4000,稀释好后各取1ul点在NC膜上,RT干燥,加发光液,曝光,确定二抗的合适稀释度。二抗浓度高了HRP会把ECL中的底物消耗掉,在你加上ECL的时候会很亮,但是很快就会减弱了,首先要保证二抗的稀释度合适才
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做 WB,一抗和 marker 怎样选取?
xzmcjxj
个人觉得一抗的话是abcam,cell signaling technology,santa cruz,bioworld这几家公司的不错 ,也比较常用,购买一抗的时候要注意它的试用范围,比如说使用的物种,主要就是H\M\R,指的是人、小鼠和大鼠,还有就是它适合做哪些实验,最常规的就是WB\IF\IMH等。而marker的话就是要根据自己的目的蛋白的大小来决定了,一般选接近的,如果分子量比较小的话就
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问
做免疫沉降能否使用不同公司生产的抗体?
changhao6787
能不能做IP要看抗体说明书,有适用范围;磷酸化和非磷酸化MW差不了这么多,基本是一致的,你可以看看sigma是不是对于截短的蛋白跑wb的,具体你目标蛋白的分子量(MW)你可以在NCBI上或是文献途径确定一下,没有要求鼻血用一种公司的抗体进行试验。
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请问如何提取 IgAN 患者血清中的免疫复合物?
云天昊
离子交换层析法提取IgG 常用的离子交换剂有DEAE纤维素或QAE纤维素,以QAE-Sephadex最为理想,DE22、32、52也可应用。取QAE-SephadexA25或A50经酸处理并在0.05mol/LpH7.5~8.6的磷酸盐缓冲液中平衡,将水分抽干,称湿重Ig加于10ml血清中,在室温30min后,离心或过滤除去离子交换剂。上清液再如此处理一次,即获得较纯的IgG。
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