答:可以你在丁香通上发求购,方便提供这方面服务的公司联系你。
答:一、总体思路原生质体融合(protoplast fusion)的核心流程: 制备原生质体 → 两亲本原生质体混合 → PEG 诱导融合 → 稀释洗涤去除 PEG → 再生培养 → 重组子筛选与鉴定关键逻辑:先去掉细胞壁使细胞膜可直接接触,PEG 作为脱水剂/桥连剂促使膜融合,再去掉 PEG 让融合体恢复,并在再生培养基上重建细胞壁。二、操作步骤1. 亲本菌株准备两亲本需带有可用于筛选的遗传标记(如
答:做粉末显微鉴定如何水合氯醛试液配制
答:建议用TRIzol提取总RNA,DNase I消化基因组DNA,逆转录后qPCR检测。关键:设计跨内含子引物或3'UTR引物区分mRNA与DNA;设无逆转录对照排除DNA污染。仪器:NanoDrop测纯度,qPCR仪定量。易错点:RNA降解、引物设计不当。
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答:A、B是小鼠颈淋巴结解剖图大致位置
答:一、染色原理与显色效果天狼星红染色原理:天狼星红是一种强酸性染料,通过静电作用与胶原纤维中的碱性基团(如赖氨酸、羟脯氨酸)结合。染色后,胶原纤维呈红色,肌纤维呈黄色,细胞核通常用苏木素复染呈蓝色715。显色特点:在偏光显微镜下,胶原纤维可呈现双折光现象(Ⅰ型胶原呈黄色或红色,Ⅲ型胶原呈绿色),从而区分胶原类型1015。Masson三色染色原理:通过多种染料组合(如酸性品红、苯胺蓝)对不同组织成分进
答:非常通俗的讲就是几个病毒对应一个细胞的感染。例如MOI=10就是你加入的病毒量是细胞数量的10倍。这样的感染剂量很容易立刻达到平台期。
答:分离胶浓度的选择 分离胶的浓度主要依据目标蛋白的分子量来确定。蛋白分子量越小,所需的分离胶浓度通常越高,以便更好地分离和分辨小分子蛋白。常见的分离胶浓度包括4%、6%、8%、10%、12%等,不同浓度的分离胶对应不同的最适蛋白分子量范围。 4%分离胶:适用于较大分子量的蛋白质,但一般不常用。 6%分离胶:适用于中等至较大分子量的蛋白质,如10-200 kDa。 8%分离胶:适用于较小分子量的蛋白质
答:可以参照这篇硕士论文《基于PI3K-AKT通路探讨泽泻醇A改善脑微血管内皮细胞氧糖剥夺损伤的机制研究》和博士论文《LIPUS联合SonoVue对肾小球内皮细胞的影响及机制研究》通透性检测方法步骤如下:将细胞接种于含0.4 um 孔聚碳酸酯膜的6.5 mm Transwell小室,培养Sd至细胞融合,进行OGD 处理,再予以不同含药培养基复氧,CO2继续培养24 h。然后将上室培养基更换为含20 u
答:每个24孔板一般每孔20w-40w左右
答:要放标尺,标尺和放大倍数的关系为:标尺每一格代表20μm;100x标尺每一格代表10μm;200x标尺每一格代表5μm;400x标尺每一格代表2.5μm;500x标尺每一格代表2μm;1000x标尺每一格代表1μm。放大倍数的测量是动态的,随着显示图像的大小不同,需要时就测量。标尺的作用就在于这里。
答:一般OD600=1时对应的细菌浓度为2*10^9cfu/ml
答:皮肤从外到内分为表皮层、真皮层和皮下脂肪层,而表皮层又从外到内可以看到最外层是角质层,角质层下面是颗粒层,颗粒层下面是表皮最厚的棘细胞层,棘细胞层的下面则是基底细胞层。由此可见绿色箭头表示的是表皮层,黄色箭头表示的是角质层。
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