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- 文献和实验
- 技术资料
- 服务名称：
化学修饰siRNA用于RNAi活体研究（In vivo RNAi）
- 规格：
P4158-25MG
技术服务详细描述
RNAi活体研究（In vivo RNAi） |
| 在培养的哺乳动物细胞中，RNA干扰已经广泛应用于基因功能的研究。虽然RNAi干扰已经在体外（in vitro）研究中成为一个强大的研究方法，但是我们还是要着眼于将基因功能的研究放在整体生物中进行评价。为此，研究人员现在应用RNAi活体研究（RNAi in vivo）的方法来进行研究。虽然此项研究还处于早期，但是活体RNAi已经越来越广使用并取得了不少进展。 目前在活体研究中的两个基本方法： |
| 1. 化学合成的siRNA 2. 质粒或者病毒载体的方法 |
| 化学合成方法容易合成，成本低，转染效率高，目前已经广泛应用于活体研究，质粒和病毒相对而言难于构建合成，并且经常有突变，转染效率低，有免疫原性等缺点。 在活体水平，siRNA成功调控基因的沉默主要依赖于有效的传递方式，特异靶组织的siRNA富集浓度，siRNA的稳定性。目前已经有多报道应用局部注射或者全身性给药的方式，siRNA成功抑制基因表达。最新的报道，siRNA可以穿过血脑屏障作用于靶点。活体给药的位置如下图：
|
| 吉玛公司化学修饰的 stableTM siRNA 已经成功应用于活体研究。 |
吉玛公司提供多种修饰方式的siRNA满足客户活体水平基因功能研究。我们的单体的修饰方式有2’-F, 2’-Ome，磷酸化修饰，胆固醇修饰，巯基修饰等。我们in vivo siRNA经过离子交换式的HPLC纯化，纯度>95%以上。
| 目录号 |
产品说明 |
规格 |
纯化方式 |
价格 |
交货期限 |
| A02004 |
Chemically modified siRNA |
4 OD |
HPLC |
￥600 |
4个工作日 |
| A02005 |
Chemically modified siRNA |
5 OD |
HPLC |
￥700 |
4个工作日 |
| A02010 |
Chemically modified siRNA |
10OD |
HPLC |
￥1300 |
4个工作日 |
| A02025 |
Chemically modified siRNA |
25OD |
HPLC |
￥2700 |
4个工作日 |
| A02050 |
Chemically modified siRNA |
50OD |
HPLC |
￥5000 |
4个工作日 |
| A02100 |
Chemically modified siRNA |
100OD |
HPLC |
￥8500 |
4个工作日 |
| A02250 |
Chemically modified siRNA |
250OD |
HPLC |
￥16000 |
4个工作日 |
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- 内容
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文献和实验目前RNAi技术已经进入了生物科学研究的许多领域，成为了一种主要的生物学研究工具，发展得相当迅速，并受到了此次诺贝尔奖评审委员会 的青睐，获得2006年诺贝尔奖医学/生理奖。然而这一才历经十个年头的技术依然对于许多研究人员来说还是很陌生的，以下是有关RNAi技术在哺乳动物细胞中应用的具体设计策略，主要来自于《遗传》杂志2005年“RNA干涉（RNAi）技术应用于哺乳动物细胞的研究策略”，希望能给从事或者准备从事RNAi相关实验的研究人员以帮助。一、靶siRNA序列选择靶siRNAA序列
拥有一项未公布的病毒制备技术，可以在15天内完成shRNA病毒制备，价格接近shRNA制备的其他方法，将极有可能取代常规病毒表达shRNA的方法成为最佳的RNA干扰技术。 6．PCR制备shRNA表达框生产siRNA优点：成本较低，方便快捷，可以用于有效序列的筛选，可以用于质粒载体构建。缺点：转染效率低，不适合大规模制备。适用于：筛选siRNA序列，在克隆到载体前筛选最佳启动子不适用于：长期抑制研究。（如果克隆到载体后就可以了）评价：★★★☆☆ 晶赛公司推荐给您的RNAi实验方法的参考模式：1．
的应用前景。 目前慢病毒也被广泛地应用于表达 RNAi 的研究中。由于有些类型细胞脂质体转染效果差，转移到细胞内的 siRNA 半衰期短，体外合成 siRNA 对基因表达的抑制作用通常是短暂的，因而使其应用受到较大的限制。采用事先在体外构建能够表达 siRNA 的载体，然后转移到细胞内转录 siRNA 的策略，不但使脂质体有效转染的细胞种类增加，而且对基因表达抑制效果也不逊色于体外合成 siRNA ，在长期稳定表达载体的细胞中，甚至可以发挥长期阻断基因表达的作用。 在所构建的 siRNA 表达
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