AAV 在神经领域中的应用

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  • 2025年12月10日
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      AAV 在神经领域中的应用

    AAV 在神经系统中的应用







    AAV 在神经领域中的应用优势
    1.   扩散性强: 体积小,滴度高,具有远高于腺病毒和慢病毒的扩散性,可穿透血脑屏障,是最理想的神经元和胶质细胞感染工具。
    2.   特异性强: 有十数种常用的血清型,不同的血清型对不同的脏器有较高的识别及感染能力。
    3.   免疫原性低: 局部大剂量感染肌肉、脑、眼等组织时,很少有感染上的细胞之后被免疫系统所清除。这种特性对于动物实验显然极有帮助。






    AAV 应用于神经系统的文献综述
    病毒类型 注射部位 病毒滴度( 量) 注射方法 检测时间 代表文献
    AAV 小鼠单侧皮层 0.5-5×1013 v.g/mL 1.5 μL/ 位点,按照核团的坐标一侧皮层注射3个位点 28天 【1】
    小鼠双侧皮层 1.49×1012 v.g/mL 0.5 μL/ 位点,速度30nL/min,留针10 min 至少28 天 【2】
    小鼠双侧海马   1 μL/ 位点,速度0.2μL/min,留针10 min 14 天 【3】
    小鼠双侧松果体 1×1012 v.g/mL 0.8-1 μL / 位点,速度100-150μL/min, 保留5 min   【4】
    小鼠脊髓注射 1×1012 v.g/mL 8 个位点, 1 μL / 位点 30 天 【5】





    AAV 在神经系统中的应用

    1.   皮层注射
    AAV 在神经领域中的应用


    AAV 在神经领域中的应用


    2.   海马体注射
    AAV 在神经领域中的应用


    3.   松果体注射
    AAV 在神经领域中的应用


    4.   脊髓注射
    AAV 在神经领域中的应用






    AAV 在神经系统中的注射方法综述
    脑立体定位注射

    第一部分:实验前准备
    1. 首先麻醉小鼠。
    2. 然后从饲养笼中取出小鼠。5-10min 后,麻醉剂起效。
    3. 待小鼠麻醉后,用剃毛器将小鼠头部毛发剔除干净。

    第二部分:固定小鼠
    1. 将麻醉剔毛后的小鼠固定到立体定位仪上。
    2. 固定时,先将小鼠门齿卡在适配器门齿夹上,轻轻压上门齿夹横杆,调整适配器高度和前后,使耳杆可以方便进入小鼠外耳道。
    3. 左手托起小鼠头部,将左侧耳杆插入小鼠耳道,调节左右侧耳杆使动物头部保持在U 型开口的中心位置,先锁紧固定一侧耳杆,后旋紧另一侧耳杆,使动物头部不能晃动,同时旋紧门齿夹螺丝。
    4. 检查是否固定成功:鼻对正中,头部不动,提尾不掉,目测大脑放置水平。
    5. 用脱毛膏或者剃刀将需要手术部位的毛发去除。
    6. 然后用手术刀划开小鼠头部皮肤,去除颅骨表面结缔组织,暴露前后囟。
    7. 根据脑图谱,确定待注射脑区的位置参数,包含离Bregma 和Lambda点的距离以及核团深度。
    8. 以Bregma 为0 点,按照预先确定好的坐标移动颅骨钻,打开合适大小的骨窗(窗口尽量小但是又不妨碍实验)。小心地用颅骨钻在注射位点处轻磨颅骨,将颅骨慢慢打薄,当颅骨出现裂缝的时候,用医用注射器的针头小心挑破,防止损伤,如果在此过程中有出血,可以用很小的医药棉球拉成长条形将血吸走,钻孔时一定要控制好,否则很容易在钻通颅骨后一不小心钻头进入脑组织,造成损伤。

    第三部分: 注射病毒
    1. 用PBS 冲洗微量注射器3-5 次。
    2. 先吸取1μl 空气,再吸取1μl 稀释好的病毒( 方便病毒充分注射进脑),在空气中测试注射器是否通畅;
    3. 将微量注射泵,微量注射器组装好,置于钻好的孔上方,针尖与颅骨平行(Z=0),微调注射器位置使之与之前钻孔时位置相同。
    4. 根据定好的深度将注射针缓慢下降。


    AAV 在神经领域中的应用

    原位注射方式多样,由于篇幅限制,其他注射方式不详细列举。请扫描二维码登录吉凯基因网上商城干货区详细了解,更有动物实验操作视频等。
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