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问
为什么跑完蛋白总是靠近浓缩胶这一半胶脱不了色
huarenqiang5
考虑胶的浓度过高,建议降低浓度。
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问
组织蛋白酶酶切趋化因子实验步骤怎么做啊??大家
周末也要努力呀
组织蛋白酶酶切趋化因子实验一般分为以下几个步骤:1. 提取趋化因子:从细胞培养上清液或组织中提取趋化因子。2. 纯化趋化因子:通过某些分离纯化技术,如离子交换层析、凝胶过滤层析等,将趋化因子纯化。3. 制备底物:制备含有趋化因子底物的凝胶,如聚丙烯酰胺凝胶。4. 酶切实验:将纯化的组织蛋白酶加入含有趋化因子的凝胶中,进行酶切反应。反应后,观察凝胶中的趋化因子是否被酶切分解,从而判断组织蛋白酶对趋化
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问
为啥我的co-ip阴性对照有条带呢?
龙大人驾到
如果在共免疫沉淀(Co-IP)的阴性对照组中观察到条带,可能存在非特异性结合的情况。这种非特异性结合可能是由于实验条件、试剂或样品中其他成分引起的。以下是一些处理非特异性结合的常见方法:1. 优化实验条件:确保使用正确的缓冲液、温度和pH值等实验条件。适当的优化可以减少非特异性结合。2. 阻断剂:添加合适的阻断剂可以降低非特异性结合。常用的阻断剂包括非特异性蛋白质(如牛血清蛋白、鱼胶等)或非特异性
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问
Elisa实验做完,吸光度太高,一般是什么原因呢?
dxy_xextz7w2
有可能是试剂和样品没有混合均匀
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问
岛津的nsmol试剂盒对单抗进行酶解并富集后,可以直接进质谱吗?
土井挞克树
可以直接进质谱的,这个试剂盒效果不错
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问
组织切片免疫荧光的表达量是看亮度还是看染色密度的?
huarenqiang5
组织切片免疫荧光的表达量一般情况下是看亮度,而不是看染色密度。
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问
两个组别的同一目的条带在wb中位置不同(内参齐平)
科研小dog
两个组别,是细胞不同还是组织来源不一样呢?相同蛋白在不同类型细胞和组织,受到不同修饰或者是其他原因的影响,有可能分子大小是会不一样的,这就会导致目的条带不在同一个位置上。
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问
为什么全菌的蛋白条带总是糊成一片,不是清晰的条带?而且诱导的蛋白和纯化蛋白条带不一致是怎么回事,一个是纯化蛋白,一个是诱导后全菌
huarenqiang5
主要考虑可能是上样量过多或样品弥散导致。
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问
鉴定到的蛋白与凝胶电泳图谱中估测分子量差异很大的原因?或者为什么SDS-PAGE胶上不同位条带的质谱鉴定结果中含有同一个蛋白?
huarenqiang5
由于体内或者体外因素,导致同一蛋白存在不同形式的修饰、剪切或者降解,从而形成凝胶电泳图中能够看到的存在差异分子量的蛋白条带。然而这些蛋白在质谱鉴定时会同时指向数据库中同一个、全长的、无修饰的蛋白理论序列。因此会出现凝胶电泳图中的蛋白分子量(实际分子量)与鉴定的蛋白分子量(理论分子量)不同的情况。
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问
蛋白质胶总是凝的很慢,凝的不好怎么回事
高山云初
过硫酸铵一定要现用现配,时间久了就会造成不凝.这是最常见的不凝的原因
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问
如果skyline锁定的所有离子对均不出峰,该怎么锁定目标离子对?
高山云初
在碰到样品没有出峰的情况,首先考虑是否是因进样浓度太小,运行时间不够,仪器和色谱柱故障,样品是否降解变质,检测器(检测波长)的选择是否准确等问题导致的。如果排除上述问题,样品仍未出峰,则很有可能是样品在固定相上保留太强,这样可以先调整流动相的洗脱能力,增强对化合物的洗脱,或者更换更合适的固定相,如反相C18换成碳载量低一些的C18或者短碳链的反相柱如C8等。
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问
ELISA实验和液质联用法(LC-MS)相比,有何优缺点?
高山云初
缺点:1、重复性不好;2、收自身抗体、嗜异性抗体等干扰,易出现假阳性;3、不论仪器和手工操作,干扰因素较多。影响最大的是温度和时间。
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问
高效液相色谱用于分离酶解后的蛋白,还需要纯化吗?
sswei
高效液相色谱用于分离酶解后的蛋白,还需要纯化
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问
请问对于新上市的多肽类药物,如何在skyline软件上寻找可能性较大的离子对?如何筛选出较少的目标离子对,用质谱MRM通道监测?
dxy_mqg1dtg8
对于新上市的多肽类药物,建议首先进行文献调研,了解该药物的化学结构、氨基酸序列和药代动力学等信息。根据该信息,可以使用Skyline软件构建出该药物的离子对库,包括预测的前体离子和碎片离子。在构建离子对库时,可以考虑以下几个方面:1. 根据氨基酸序列预测可能的碎片离子,包括b离子、y离子、a离子、x离子等。2. 针对药物的特殊结构,预测相关的碎片离子,如磷酸化、甲基化、乙酰化等修饰的碎片离子。3.
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问
大小分子蛋白各自的电泳胶浓度如何选择? 蛋白marker大分子条带降解原因? 蛋白样本跑胶时出现笑脸条带什么原因?
高山云初
微笑是因为你灌胶的时候冷却不均匀,中间部分冷却不好,导致凝胶中的分子有不同的迁移率所致
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问
蛋白组学如何快速建立方法?如果给第三方公司做,成本很高。但是自己做建立方法又很难很慢,如何解决这两者之间的矛盾?
huarenqiang5
你可以先借鉴一下这篇文章,《蛋白质组学研究的基本步骤》。然后决定是给第三方公司做还是自己建立。
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问
电泳时样品没有溢出到其他泳道,胶进行考马斯亮蓝染色后,各个泳道蛋白都连在一起了,而且泳道越来越宽,为什么呢?
balalaLy
上样量太大了,蛋白向两边溢了。
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问
请问诸位老师,定量蛋白质组学的抗病毒天然免疫通路蛋白泛素化研究,最近有什么新的学科进展?谢谢
huarenqiang5
研究新进展,可以看一下这篇文章《Tankyrases inhibit innate antiviral response by PARylating VISA/MAVS and priming it for RNF146-mediated ubiquitination and degradation》,该研究使用生化纯化方法,首次发现VISA能够被Tankyrase 1 (TNKS1,PARP5a
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问
大肠杆菌中菌上清液中高效液相色谱测天冬酰胺的含量
sswei
1). 先对流动相进行过滤,根据需要选择不同的滤膜,般为有机系和水系,常用的孔径为0.20um和0.45um。2). 对抽滤后的流动相进行超声脱气10-20分钟。3). 正常情况下,仪器先用甲醇冲洗10-20分钟,然后再进入测试用流动相(如流动相为缓冲试剂,则要次重蒸水冲洗10-20分钟,直至色谱柱中有机相冲净为止) 。4). 般情况下,流动相冲洗20-30分钟后,仪器方可稳定,重要的是仪器基线走
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问
跑SASPAGE胶,发现条带比预测大小大20kDa,目的条带10kda
静心观照
1.确定蛋白是内源的还是外源的,如果是外源蛋白是不是全长序列;2.SWISSPROT 数据库查询该蛋白是否有其他isoform ;3.SWISSPROT 和文献查询蛋白质是否有剪切活化,剪切活化造成蛋白变小;4.确定蛋白质是否是二聚体或多聚体5.NCBI和SWISSPROT 查询蛋白质表达后是否有修饰,如有修饰会导致蛋白质增大如果除了上述 5条,还是没找到问题在哪里,那就回过头看看是不是预测不准或
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