Lipi-Red试剂，脂滴检测（红色），脂滴定位，组织脂滴成

检测条件：

* Lipi-Blue ：Ex：405 nm, Em：450–500 nm

* Lipi-Green：Ex：488 nm, Em：500–550 nm

* Lipi-Red：Ex：561 nm, Em：565–650 nm

* Lipi-Deep Red：Ex：640 nm, Em：650–700 nm

染色条件：

在HeLa细胞培养基中加入200 μmol/l油酸，过夜培养后，用PBS清洗细胞，并分别加入不同颜色的Lipi探针(Lipi-Blue/Green/Deep Red：0.1 μmol/l、Lipi-Red： 1 μmol/l) 染色15 min后观察。

如何制备油酸溶液

请参考Q&A“油酸溶液的制备和加入细胞的方法”。

Lipi系列荧光探针大幅度地改善了现有脂滴染色试剂存在的问题 (如选择性，滤波器的适应性，荧光滞留性)。而且 Lipi系列荧光探针也适用于多重染色实验，可选颜色更多。

同仁化学试剂					其他品牌（T公司）
	Lipi-Blue	Lipi-Green	Lipi-Red	Lipi-Deep Red	Oil Red O (比色)	Nile Red	试剂B
活细胞染色	〇	〇	〇	〇	×	〇	〇
固定细胞染色	〇	〇	〇	〇	〇	〇	〇
对脂肪滴的选择性     (低背景)	〇	〇	〇	〇	×	×	△
与其他试剂的共染色*1	〇	〇	〇*2	〇	n.d.	×*3	〇
活细胞内的滞留性(24h)	〇	〇	×	×	n.d.	×	×

*1. 关于共染色时推荐的荧光滤光片，您可以参考网页下方Q&A“共染时推荐的荧光滤光片”。

*2. 与绿色荧光共染色时，推荐使用550 nm以下的绿色荧光滤光片。

*3. 用GFP的滤光片(500~540 nm)时会串色。

特点1：与抗体检测方法高度相关

用4％PFA固定HepG2细胞后，用1 μmol/l Lipi-Red 染色。 然后在脂滴膜上用抗ADFP抗体荧光标记，免疫染色，该抗体可以特异性标记脂滴膜上的蛋白质 (Adipophilin; ADFP)。实验证明Lipi-Red 与脂滴上蛋白质ADFP的定位高度相关。

<检测条件>  

Lipi-Red：Ex: 405 nm / Em: 450-500 nm，

抗ADFP抗体(Alexa Fluor 647)：Ex: 640 nm / Em: 650-700 nm

特点2：高特异性定位脂滴

在HeLa活细胞中加入油酸，并用1μmol/L Lipi-Red和100 nmol/l Nile Red（T公司）染色。该结果显示Nile Red会染上脂滴以外的其它细胞质。

<检测条件>  

Lipi-Red： Ex: 561 nm / Em: 565 - 650 nm

Nile Red：Ex: 561 nm / Em: 565-650 nm

特点3：光谱范围更窄，不易串色(Lipi-Red vs Nile Red)

在单通道情况下，Lipi Red和Nile Red（T公司）染色HepG2会用G激发观察红色荧光。而在多重染色情况下，可能会用B激发观察绿色荧光，此时Nile Red会出现串色现象。

在用Lipi-Red染色的细胞中，确认了由于G激发引起的红色荧光，并且没有确认由于B激发引起的绿色荧光泄漏。 另一方面，在用尼罗红染色的细胞中，观察到由于G激发引起的红色荧光，但是由于B激发而观察到绿色荧光的泄漏。

特点4：荧光在细胞中的滞留时间长

分别用Lipi系列、Nile Red和市售的试剂B染色HepG2细胞，观察在培养30 min和24 h的荧光图像。

<脂肪细胞染色实验例>

(1)将3T3-L1细胞(1.5x10⁴cells/孔)接种在µ-Plate 96孔板（ibidi）的各孔中，并在37℃ 5% CO₂培养箱内培养。

(2)按照常规方法诱导分化为脂肪细胞。

(3) 去除上清液，用DMEM（25 mmol/l葡萄糖, 10% FBS, 无酚红）洗涤两次。

(4)加入用DMEM（25 mmol/l葡萄糖，10％FBS，无酚红）制备的每种染料的工作溶液，并在37℃下培养24 h。

(5)用荧光显微镜观察。

※试剂浓度：各2.5 µmol/l

实验例2：脂肪组织的脂滴成像

用4%PFA固定小鼠肝脏脂肪组织(冰冻切片)后用Lipi系列染色，比较幼鼠(6周龄)和老年小鼠(31周龄)的脂滴成像图像，发现肝脏脂肪组织中的脂滴量有很大差异。

<组>织样品的染色实验例>

(1)向小鼠肝脏脂肪组织(冰冻切片)中加入4%PFA(PBS)，在室温下静置5 min。

(2)用PBS清洗后，加入各浓度的Lipi系列working solution（PBS），在4℃下静置24 h。 

(3)用PBS清洗后，用落射型荧光显微镜进行荧光观察。

※工作液浓度：2.5 µmol/l(Lipi-Blue、Lipi-Green、Lipi-Deep Red)、25 µmol/l(Lipi-Red)

实验例3：使用细胞成像仪进行定量分析

将油酸或Triacsin C(acyl-CoA synthetase抑制剂）分别加入到HepG2细胞中，并比较脂滴的变化。在分析中，我们使用共聚焦定量细胞成像仪(横河电机株式会社 CQ1)获得每个细胞脂滴数量和面积的数据。

脂肪滴和细胞核的成像

使用共聚焦定量细胞成像仪在617/73 nm处拍摄脂滴图像，在447/60 nm处拍摄细胞核图像，在分析软体CellPathfinder中识别单个脂滴和细胞核，并计算其数量和面积。

细胞处理及脂滴染色条件

将HepG2细胞(1x10³cells)接种到96孔板中过夜培养。除去培养上清液后，加入未处理（仅含FBS的DMEM培养基）、油酸（含200 μmol/l油酸和FBS的DMEM培养基）或Triacsin C（含5 μmol/l Triacsin C和FBS的DMEM培养基）过夜培养。之后用PBS 清洗2次，用4%的PFA在室温下固定5 min后，用PBS 清洗2次。最后，加入1 μmol/l Lipi-Red working solution 在室温、避光下染色2 h后，用共聚焦定量细胞成像仪进行定量分析。

脂肪滴产品种类的检测方法