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- NeoBioscience
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- EHC103a
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- 2026年05月21日
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- 文献和实验
- 技术资料
- 样本：
血清/ 血浆/ 细胞培养上清
- 适应物种：
Human
- 应用：
ELISA
- 检测方法：
双抗体夹心法
- 检测范围：
15.6-1000pg/ml
- 库存：
大量
- 供应商：
欣博盛
- 规格：
48T/96T
欣博盛 QuantiCyto® ELISA试剂盒采用双抗体夹心法：抗人TNF-α单抗包被于酶标板上，标本和标准品中的人TNF-α会与单抗结合，游离的成分被洗去。加入生物素化的抗人TNF-α抗体和辣根过氧化物酶标记的亲和素，生物素与亲和素特异性结合；抗人TNF-α抗体与结合在单抗上的人TNF-α结合而形成免疫复合物，游离的成分被洗去。加入显色底物，若反应孔中有人TNF-α，辣根过氧化物酶会使无色的显色剂现蓝色，加终止液变黄。在450 nm处测OD值，人TNF-α浓度与OD450值之间呈正比，可通过绘制标准曲线求出标本中人TNF-α的浓度。
人TNF-α简介：
早在三四十年代，人们就发现内毒素能引起小鼠移植肿瘤的出血坏死。1975年，Carswell等人发现卡介苗攻击小鼠后再用内毒素处理，小鼠血清中出现一种能诱导肿瘤组织出血坏死的物质，故命名为肿瘤坏死因子。TNF还称为恶液素（cachectin），这是因为它能引起急性或慢性感染动物的恶液质状态。TNF-α的生物学活性非常复杂，包括对造血、免疫和炎症的调节；对血管和凝血的影响和对多种器官（肝、心脏、骨、软骨、肌肉和其它组织）的作用等。TNF-α对不同的细胞有不同的作用：杀伤细胞，抑制、促进或不影响细胞生长。TNF-α能诱导敏感细胞凋亡。TNF-α能快速、强烈、不可逆地抑制红细胞系前体（CFU-ET和BFU-E）和红系、粒系肿瘤细胞（K562、HE2、HL-60）的生长，这种抑制作用不需要淋巴细胞或巨噬细胞的辅助，受抑制细胞必须表达TNF-α受体。TNF-α能促进人的成纤维细胞增殖，诱导细胞表达EGFR和转铁蛋白受体，胰岛素和EGF增强TNF-α的这一作用。TNF-α能抑制造血，引起红细胞生成减少、破坏增加。TNF-α也能诱导T细胞表达MHC-Ⅱ类分子和高亲和力IL-2受体。TNF-α能增加组织因子的表达，抑制抗凝蛋白C的辅助因子活性，从而引起血管内皮细胞的前凝血活性。C能促进骨细胞生长和合成DNA，抑制碱性磷酸酶活性使骨形成受阻，在骨质吸收和重建中起重要作用。TNF-α能降低骨骼肌胞浆膜的静息电位，增加细胞内钠离子浓度，使血管内钠离子减少（称为第三空间性丢失），这种情况在休克和危象病症中经常出现。TNF-α能抑制脂蛋白脂酶的活性，刺激脂肪溶解增加，抑制几种关键的脂肪生成酶基因的转录。TNF-α对肝脏、神经内分泌系统、心血管系统、肺脏有复杂的作用。TNF-α主要通过对肿瘤区域血管的影响引起移植肿瘤的出血坏死。TNF-α的抗肿瘤作用包括TNF-α的直接作用和TNFa诱导的针对肿瘤的免疫应答。TNF-α能诱导IL-1、IL-6、IL-8、IFN-γ、GM-CSF、TGF-ß、NGF和PDGF等细胞因子产生，TGF-ß、IL-10、sTNFR、CNTF等抑制TNF-α的作用，而IL-1、IFN-γ、LIF和LPS则增强TNF-α的活性。
部分文献引用：
1. Yuan R, Huang L, Du L J, et al. (2019).” Dihydrotanshinone exhibits an anti-inflammatory effect in vitro and in vivo through blocking TLR4 dimerization.” Pharmacological research
2. Wang H, Wu T, Wang Y, et al. (2019).” Regulatory T cells suppress excessive lipid accumulation in alcoholic liver disease.” Journal of lipid research
3. Fang H, Shao S, Jiang M, et al. (2018).” Proinflammatory role of blister fluid‐derived exosomes in bullous pemphigoid.” The Journal of pathology
4. Xi W, Song Z M, Chen Z, et al. (2018). "Short-Term and Long-Term Toxicological Effects of Vanadium Dioxide Nanoparticles on A549 Cells." Environmental Science: Nano
5. Chen Y, Jin S, Teng X, et al. (2018).” Hydrogen Sulfide Attenuates LPS-Induced Acute Kidney Injury by Inhibiting Inflammation and Oxidative Stress.” Oxidative medicine and cellular longevity
6. Dong W, Liu Z, Sun L, et al. (2018). ” Antimicrobial activity and self-assembly behavior of antimicrobial peptide chensinin-1b with lipophilic alkyl tails." European journal of medicinal chemistry
7. Yang J, Qin N, Zhang H, et al. (2016). "Cellular uptake of exogenous calcineurin B is dependent on TLR4/MD2/CD14 complexes, and CnB is an endogenous ligand of TLR4." Scientific Reports
8. Pian Y, Chen S, Hao H, et al. (2016).” Phenol-soluble modulin α4 mediates Staphylococcus aureus-associated vascular leakage by stimulating heparin-binding protein release from neutrophils.” Scientific Reports
9. Long J, Liu L, Xiao Y, et al. (2017).” The adverse vascular effects of multi-walled carbon nanotubes (MWCNTs) to human vein endothelial cells (HUVECs) in vitro: role of length of MWCNTs.” Journal of Nanobiotechnology
10. Du L, Chen X, Duan Z, et al. (2017).” MiR-146a negatively regulates dectin-1-induced inflammatory responses.” Oncotarget
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文献和实验兔肿瘤坏死因子α（TNF-α） 酶联免疫 分析（ ELISA ） 试剂 盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的：本试剂盒用于测定兔血清，血浆及相关液体样本中 肿瘤坏死因子 α （TNF- α ） 的 含量。 实验原理 ： 本试剂盒应用双抗体夹心法测定 标本 中 兔肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 水平。用纯化的 兔肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入 肿瘤坏死因子
猪肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 酶联免疫 分析（ ELISA ） 试剂 盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的：本试剂盒用于测定猪血清，血浆及相关液体样本中 肿瘤坏死因子 α （TNF- α ） 量。 实验原理 ： 本试剂盒应用双抗体夹心法测定 标本 中 猪肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 水平。用纯化的 猪肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入
人肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 酶联免疫 分析（ ELISA ） 试剂 盒使用说明书 本试剂仅供研究使用 目的：本试剂盒用于测定人血清，细胞上清及相关液体样本中 肿瘤坏死因子 α （TNF- α ） 的 含量。 实验原理 ： 本试剂盒应用双抗体夹心法测定 标本 中 人肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 水平。用纯化的 人肿瘤坏死因子 α （ TNF- α ） 抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中
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