博落回提取物脂质体递送通过肠道屏障修复、菌群重塑和抑制炎症因子释放缓解细菌性腹泻

Liposomal Delivery of Macleaya cordata Extract Alleviates Bacterial Diarrhea Through Intestinal Barrier Restoration, Microbiota Remodeling, and Inhibition of Inflammatory Factor Release.

作者信息Rujia Xie, Siya Chen, Wangxia Peng, Xinlei Tang, Hui Su, Bozhi Zeng, Congcong Chen, Chengcheng Yi, Jianguo Zeng, Jing Yang
PMID41754960
发布时间2026-02-09
DOI10.3390/pharmaceutics18020218

实验完整度

包含体外细胞实验(细胞活力、炎症因子、紧密连接蛋白)、小鼠急性毒性和细菌性腹泻模型,以及非靶向代谢组学和16S rRNA测序等多层级验证。

主要模型

人原代骨骼肌细胞 人正常结肠上皮细胞NCM460 ICR小鼠细菌性腹泻模型(大肠杆菌诱导)

重点核对

MCE-Lips制备条件:MCE 8 mg、大豆卵磷脂80 mg、胆固醇13.33 mg,薄膜分散法,粒径86.49 nm,包封率89.07% 细胞实验药物浓度:骨骼肌细胞1.25 μg/mL,NCM460细胞0.63 μg/mL,LPS刺激浓度1 μg/mL 小鼠模型:ICR小鼠,腹腔注射0.6 mL/只E. coli(4×10^10 CFU/mL)建立腹泻模型 MCE-Lips剂量分组:低6.3 mg/kg、中12.5 mg/kg、高25.0 mg/kg,肌内注射 检测指标:腹泻潜伏期、腹泻指数、血清炎症因子(IL-6、TNF-α、CRP)和胃肠激素(MTL、GAS)

摘要

背景/目的:为克服博落回提取物(MCE)在兽用中药应用中活性成分生物利用度低、胃肠道刺激和肌肉毒性等瓶颈,本研究旨在开发一种负载MCE的脂质体纳米递送系统(MCE-Lips),以实现“增效减毒”的核心目标,并探讨其在治疗细菌性腹泻中的潜在应用和作用机制。方法:采用薄膜分散法制备MCE-Lips,并表征其理化性质——粒径、包封率和载药量。体外,采用CCK-8法评估对骨骼肌细胞和NCM460肠上皮细胞的细胞毒性。用LDH检测试剂盒测定骨骼肌细胞乳酸脱氢酶(LDH)的释放。通过ELISA测定两种细胞中炎症因子(TNF-α、IL-6和IL-1β)的表达水平。使用荧光探针评估细胞膜完整性。通过免疫荧光评估MCE-Lips对紧密连接蛋白(ZO-1、Occludin和Claudin-5)表达的影响。通过H&E染色检查急性毒性。使用大肠杆菌在小鼠中建立细菌性腹泻模型,并通过血液学检查和胃肠动力评估综合安全性和有效性。最后,利用非靶向代谢组学和16S rRNA测序研究其潜在作用机制。结果:制备的MCE-Lips平均粒径为86.49 nm,包封率高达89.07%。体外实验表明,MCE-Lips显著减轻骨骼肌细胞损伤,降低LDH释放(p < 0.05),并有效抑制炎症因子IL-6、TNF-α和IL-1β的表达(p < 0.05)。在NCM460细胞中,MCE-Lips对LPS诱导的TNF-α(p < 0.01)、IL-6(p < 0.0001)和IL-1β(p < 0.0001)释放表现出更显著的抑制作用,并通过上调紧密连接蛋白ZO-1(p < 0.001)、Occludin(p < 0.01)和Claudin-5(p < 0.01)的表达增强肠道屏障功能。在细菌性腹泻模型中,MCE-Lips显示出优异的抗腹泻功效(p < 0.01)。血液学分析表明无全身毒性。在内分泌水平上,高剂量组显著降低胃动素(MTL)水平(p < 0.01),从而减缓肠道蠕动,延长食糜保留时间,进而缓解腹泻症状。机制研究表明,其通过调节肠道代谢谱和微生物群落结构发挥作用,其中脱硫弧菌属、肠球菌属和链球菌属被确定为关键特征差异属。结论:首次构建了MCE脂质体纳米颗粒系统,并结合非靶向代谢组学和16S rRNA测序阐明其抗腹泻机制。MCE-Lips通过多种机制发挥优异的抗细菌性腹泻作用,包括直接细胞保护和抗炎作用、增强肠道屏障、调节胃肠功能和重塑肠道微生态。这项工作为植物源性纳米抗腹泻剂提供了新的范例。在仔猪细菌性腹泻模型中对MCE-Lips药效学的系统评价将为其最终市场应用奠定坚实基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何通过脂质体纳米递送系统解决博落回提取物(MCE)生物利用度低、胃肠道刺激和肌肉毒性等问题,并阐明其在细菌性腹泻中的治疗作用及机制?
核心机制
MCE-Lips通过上调紧密连接蛋白(ZO-1、Occludin、Claudin-5)表达修复肠道屏障,抑制炎症因子(TNF-α、IL-6、IL-1β)释放,调节肠道代谢(如4-羟基戊酸、9,12,13-TriHOME、硫酸胆碱)和重塑肠道菌群结构(如促进乳杆菌、抑制螺杆菌),并降低胃动素水平减缓肠蠕动,从而缓解腹泻。
主要证据
体外细胞实验显示MCE-Lips降低骨骼肌细胞LDH释放和炎症因子,增强NCM460细胞屏障功能;小鼠腹泻模型中,中高剂量显著延长腹泻潜伏期并降低腹泻指数;非靶向代谢组学和16S rRNA测序揭示代谢物和菌群变化。
研究意义
首次构建MCE脂质体纳米系统,实现“增效减毒”,为植物源纳米抗腹泻剂的开发提供新范式,并为MCE治疗腹泻等疾病的靶点和通路提供证据,为仔猪细菌性腹泻的防治奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

MCE-Lips制备与表征

制备负载MCE的脂质体并评估其理化性质,以确定其作为递送系统的可行性。

采用薄膜分散法制备MCE-Lips,测定粒径、PDI、Zeta电位、包封率和载药量,并通过TEM观察形态,评估储存稳定性及冻干粉特性。

2

体外骨骼肌细胞毒性及保护作用评估

比较MCE-Lips与普通注射液对骨骼肌细胞的毒性,验证脂质体包裹是否降低细胞损伤和炎症反应。

使用CCK-8检测细胞活力,LDH试剂盒检测LDH释放,ELISA检测炎症因子(TNF-α、IL-6、IL-1β),荧光探针(EtBr)评估细胞膜完整性。

3

体外NCM460细胞LPS损伤模型及屏障功能评估

评估MCE-Lips对LPS诱导的肠上皮细胞损伤的保护作用,包括细胞活力、炎症因子释放和紧密连接蛋白表达。

NCM460细胞经MCE-Lips预处理后加入LPS,CCK-8检测活力,ELISA检测炎症因子,免疫荧光检测紧密连接蛋白(ZO-1、Occludin、Claudin-5)表达。

4

小鼠急性毒性评估

评估MCE-Lips在最大给药剂量下的急性毒性,确保其安全性。

ICR小鼠肌内注射最大剂量MCE-Lips(76.85 mg/kg),观察14天,记录行为、体重、死亡率,并通过H&E染色检查主要器官病理变化。

5

小鼠细菌性腹泻模型药效评价

评估MCE-Lips对大肠杆菌诱导的细菌性腹泻的治疗效果。

60只ICR小鼠随机分为6组,腹腔注射大肠杆菌建立腹泻模型,给予不同剂量MCE-Lips、穿心莲注射液或空白对照,记录腹泻潜伏期、腹泻发生率、腹泻指数。

6

血液学及血清指标检测

评估MCE-Lips对血液参数、炎症因子和胃肠激素的影响,探索其抗腹泻的潜在机制。

采集眼眶静脉血,进行血细胞分析,ELISA检测血清IL-6、TNF-α、CRP、MTL和GAS水平。

7

非靶向代谢组学分析

揭示MCE-Lips对腹泻小鼠肠道代谢谱的调节作用。

收集各组小鼠肠道内容物,采用UPLC-QTOF-MS进行非靶向代谢组学分析,通过PCA、火山图和KEGG富集分析筛选差异代谢物及相关通路。

8

16S rRNA基因测序分析

分析MCE-Lips对腹泻小鼠肠道菌群结构和组成的影响。

提取肠道内容物DNA,通过Illumina PE300/PE250平台测序,进行OTU分析、门水平和属水平分类及LEfSe差异分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
血根碱Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.--
白屈菜红碱Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.--
二氢血根碱Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.--
二氢白屈菜红碱Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.--
甲醇Spectrum Chemical Mfg. Corp.--
磷酸Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd.--
磷酸二氢钠Shanghai Macklin Biochemical Technology Co., Ltd.--
磷酸氢二钠Shanghai Macklin Biochemical Technology Co., Ltd.--
胆固醇Shanghai Macklin Biochemical Technology Co., Ltd.--
大豆卵磷脂Shanghai Macklin Biochemical Technology Co., Ltd.--
原代骨骼肌细胞基础培养基iCELLiCell-s008-002h
胎牛血清AbcellAFD050
青霉素/链霉素溶液sevenSC118-01
RPMI 1640培养基GibcoC11875500BT
CCK8溶液sevenSC119-02
LDH检测试剂盒Enzyme-linked Biotechnologyml098824
IL-1β ELISA试剂盒NeobioscienceEHC002b
TNF-α ELISA试剂盒NeobioscienceEHC103a
IL-6 ELISA试剂盒NeobioscienceEHC007
溴化乙锭MCEHY-D0021
脂多糖SigmaL2880
ZO-1抗体Proteintech82870-7-RR
Occludin抗体Proteintech27260-1-AP
Claudin-5抗体Proteintech29767-1-AP
0.9%生理盐水Zhejiang Guojing Pharmaceutical Co., Ltd.C23070703
穿心莲注射液----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
MCE-Lips制备
MCE、大豆卵磷脂、胆固醇的精确用量,溶剂比例,旋转蒸发温度与时间,水化条件(PBS pH、温度、时间),超声参数(时间、开关时间),滤膜孔径
阅读提示:Methods 2.4
细胞培养与处理
细胞系(骨骼肌细胞、NCM460)的来源和培养基成分,药物浓度(1.25 μg/mL、0.63 μg/mL),LPS浓度(1 μg/mL),处理时间(2 h预处理、24 h共培养)
阅读提示:Methods 2.2, 2.11, 2.12
体外毒性及炎症检测
CCK-8检测波长、LDH检测波长、ELISA试剂盒货号、荧光探针浓度(0.1% EtBr)及孵育条件
阅读提示:Methods 2.7, 2.8, 2.9, 2.10
小鼠模型及给药
ICR小鼠品系、体重范围,造模用E. coli浓度和体积,给药途径(肌内注射),MCE-Lips剂量分组(6.3、12.5、25.0 mg/kg),空白对照(生理盐水)
阅读提示:Methods 2.3, 2.15, Table 1
体内效果评估
腹泻潜伏期、腹泻指数计算方法,血液学指标参数,血清炎症因子和胃肠激素检测方法
阅读提示:Methods 2.16, Results 3.7, 3.8, 3.9
组学分析
代谢组学检测平台(UPLC-QTOF-MS)、筛选标准(p < 0.05, VIP ≥ 1.5, FC ≥ 2),16S rRNA测序平台(Illumina PE300/PE250)、LEfSe分析阈值
阅读提示:Methods 2.17, 2.18