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huHSC-NCG-hIL15 免疫缺陷小鼠模型 人源化 k

i 免疫重建
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  • 品系背景:NOD/ShiLtJGpt
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  • 2025年12月30日
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      江苏集萃药康生物科技股份有限公司

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      huCD34+HSC-NOD/ShiLtJGpt-Prkdcem26Cd52Il2rgem26Cd22Il15em1Cin(hIL15)/Gpt

    huHSC-NCG-hIL15

    品系名称:huCD34+HSC-NOD/ShiLtJGpt-Prkdcem26Cd52Il2rgem26Cd22Il15em1Cin(hIL15)/Gpt

    品系简称:huHSC-NCG-hIL15

    品系类型:免疫重建

    品系编号:T038070

    品系背景:NOD/ShiLtJGpt

    一、品系描述

    HSC(hematopoietic stemcell,造血干细胞)免疫重建小鼠是将重度免疫缺陷小鼠(TBNK细胞缺失,如NCG小鼠)经过亚致死性辐照,通过尾静脉或腹腔注射等方式移植人脐带血、骨髓或胎肝来源的HSC,使其发育成TB、髓系细胞、NK细胞等多种人源免疫细胞的模型[1]。这些免疫细胞通过与肿瘤组织相互作用,可初步模拟临床患者体内免疫状态和肿瘤微环境[2,3],该模型存活周期长,免疫重建体系稳定,可用于长期体内实验,是临床前药物评价的理想模型。

    集萃药康自主品系的NCG-hIL15小鼠,通过基因编辑技术在NOD/ShiLtJGpt小鼠上敲除PrkdcIl2rg基因制作的高度免疫缺陷模型NCG的基础上进行人源化IL15基因的敲入,获得自主产权品系NCG-hIL15,该小鼠可支持人源NK细胞的定植及活性。IL15(白细胞介素-15)是一种多效性细胞因子,由活化的单核-巨噬细胞、表皮细胞和成纤维细胞等多种细胞产生,发挥类似IL2的生物学活性,具有激活T细胞、B细胞和NK细胞,并可介导这些细胞的增殖和存活功能[4,5]。集萃药康通过将人HSC注射到NCG-hIL15小鼠体内构建了huHSC-NCG-hIL15免疫系统人源化小鼠。同时,huHSC-NCG-hIL15小鼠结合CDXPDX建模,可用于研究人类免疫系统环境下肿瘤的生长,评价抗肿瘤治疗方案,尤其是助力基于免疫治疗的抗肿瘤新药研发。

    二、造模流程

    NCG-hIL15小鼠移植CD34+HSC后,相对于huPBMC重建速度慢,GvHD发生延迟,生存周期超过18周,延长了给药窗口期。huHSC-NCG小鼠的免疫重建效率高,主要重建T细胞和大量未成熟的B细胞,以及少量NK细胞和巨噬细胞等,可用于肿瘤免疫治疗药物的评价

    产品细节图片1

    1huHSC- NCG-hIL15重建过程

    三、应用领域

    1.用于人源细胞、组织移植;

    2.接种人源肿瘤用于筛选相关药物;

    3.用于人类造血系统和免疫系统研究。

    四、验证数据

    1NCG-hIL15小鼠人源IL15mRNA表达水平验证

    产品细节图片2

    2对比NCG-hIL15小鼠人源IL15NCG小鼠鼠源IL15mRNA表达水平

    通过Q-PCR检测发现NCG-hIL15人源化小鼠中人源IL15组织表达特异性与NCG背景鼠中鼠源IL15表达特异性一致。

    1. NCG-hIL15小鼠外周血中人源IL15表达水平

    产品细节图片3

    3NCGNCG-hIL15小鼠外周血中人源IL15的含量比较

    通过ELISA检测发现NCG小鼠外周血血浆中未检测到人源IL15,而NCG-hIL15人源化小鼠的杂合子及纯合子中均能检测到人源IL15的表达,且纯合子表达水平高于杂合子。

    1. HuHSC-NCG-hIL15小鼠生存率和体重变化

    产品细节图片4

    4人源HSC重建后NCGNCG-hIL15小鼠生存率和体重变化情况

    免疫重建过程中huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠体重呈上升趋势。

    1. huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血免疫重建

    产品细节图片5

    5huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血中各细胞组份的重建情况

    791113周收集huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血,采用流式细胞技术检测huHSC-NCG小鼠及huHSC-NCG-hIL15小鼠人源化进程。检测指标为hCD45hCD3hCD19hCD4hCD8hCD56。随着免疫重建进程,5周左右huHSC-NCG-hIL15小鼠外周血中hCD45+白细胞水平在已达20%以上,其中hCD3+T细胞水平逐渐增加,且分化出hCD4+ThCD8+T细胞亚群。与huHSC-NCG小鼠相比,CD56+NK细胞重建水平明显升高。

     

    5huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血中NK细胞功能蛋白检测

    产品细节图片6

    6huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血中重建人源NK细胞功能性蛋白检测

    13周(W13)收集huHSC-NCGhuHSC-NCG-hIL15小鼠外周血,采用流式细胞技术检测huHSC-NCG小鼠及huHSC-NCG-hIL15小鼠外周血中重建的人源NK细胞功能基因表达情况。检测指标为CD56CD16KIR2DLNKG2D。与huHSC-NCG相比,huHSC-NCG-hIL15小鼠人源NK细胞重建水平显著升高,且可以表达KIR2DLNKG2D功能性蛋白

    6NK细胞功能性数据验证

    产品细节图片7

    7NCG-hIL15小鼠中移植人源造血干细胞HSC重建NK细胞杀伤及ADCC作用

    随着效靶比的增加(NKK562=2:15:110:1),NCG-hIL15人源化小鼠重建NK细胞对于人慢性髓系白血病细胞K562的杀伤率也随之增加(左图)。随着效靶比的增加(NKRaji=2:15:1),NCG-hIL15人源化小鼠重建NK细胞对于Raji细胞的杀伤率也随之增加(右图)。加入0μg/mL10μg/mLRituximab(靶向CD20抗体,主要通过抗体依赖性细胞介导的细胞毒作用ADCC杀伤CD20+肿瘤细胞),Rituximab抗体通过NK细胞介导的ADCC作用,对Raji细胞的杀伤作用进一步增强。

    产品细节图片8

    8基于huHSC-NCG-hIL15小鼠体内用药试验

    将对数生长期人淋巴瘤细胞Raji细胞接种到huHSC-NCG-hIL15小鼠皮下,待肿瘤生长至平均体积约40-50mm3时,随机分为PBS组,Rituximab给药组及Blincyto(靶向CD3CD19的双特异性抗体,主要通过介导CD3+T细胞杀伤CD19+肿瘤细胞)给药组,并使用相应的药物进行治疗。

    结果显示:RituximabTGI=48.95%BlincytoTGI=59.67%huHSC-NCG-hIL15Raji细胞荷瘤鼠上肿瘤生长有显著的抑制作用。

    结果证明:移植人源造血干细胞HSCNCG-hIL15小鼠结合人来源的肿瘤构建的动物模型可以用于评价借助T细胞及NK细胞发挥抗肿瘤作用的肿瘤免疫治疗相关药效评估。

    五、饲喂条件

    温度

    21-26 ℃

    湿度

    40-70%

    光照

    8:00 am - 20:00 pm光照,20:00 pm – 8:00 am(次日)黑暗

    笼具尺寸

    (长宽高)

    艾可林(300mm×190mm×135mm

    垫料

    玉米芯

    饲料

    自由取食。采用标准SPF级辐照实验鼠转基因饲料,购于江苏协同医药生物有限责任公司。每批饲料由生产单位提供饲料质量合格证,每年提供第三方的检测报告;检测标准参照国家标准GB 14924.3-2010 《实验动物配合饲料营养成分》和GB14924.2-2001《实验动物配合饲料通用卫生标准》

    饮水

    自由饮水。饮用水外观和细菌指标每月检测一次,在本公司内检测,每年提供本区自来水公司检测报告,参照国家标准GB5749-2006《生活饮用水卫生标准》

    动物标记

    耳号

    换笼频率

    1/

    动物适应饲养时间

    3天及以上

    六、相关产品与服务

    相关服务

    成瘤性测试

    肿瘤免疫药物筛选评价

    荷瘤鼠

    服务优势

    支持IND申报

    自主产权品系

    完善的服务体系

    AAALAC认证的动物设施

    参考文献

    1. Shultz, L.D., et al., Human Lymphoid and Myeloid Cell Development in NOD/LtSz-scid IL2R null Mice Engrafted with Mobilized Human Hemopoietic Stem Cells. The Journal of Immunology, 2005. 174(10): p. 6477-6489.

    2. Seitz, Establishment of a rhabdomyosarcoma xenograft model in human-adapted mice. Oncology Reports, 2010.

    3. Wege, A.K., et al., Humanized tumor mice--a new model to study and manipulate the immune response in advanced cancer therapy. Int J Cancer, 2011. 129(9): p. 2194-206.

    4. Ali, A. K., Nandagopal, N. & Lee, S. H. (2015). “IL-15-PI3K-AKT-mTOR: A Critical Pathway in the Life Journey of Natural Killer Cells”. Frontiers in immunology. 6, 355.

    5. Fehniger, T. A. et al. (2001). “ Fatal leukemia in interleukin 15 transgenic mice follows early expansions in natural killer and memory phenotype CD8+ T cells”. The Journal of experimental medicine. 193,219-231.

     

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