临床样本中WNT5A/CD146表达与AKI进展的关联分析
评估WNT5A及其受体CD146在AKI患者肾脏中的表达模式及其与CKD进展的关系
对10例AKI患者肾活检样本和3例肾癌癌旁正常肾组织对照进行WNT5A、CD146免疫组化染色,以IOD定量,并比较AKI缓解组与CKD进展组WNT5A表达;在小鼠IRI模型第3天和第14天进行Wnt5a和CD146免疫荧光染色并以LTL标记近端小管
Targeting WNT5A noncanonical signaling attenuates renal fibrosis progression in acute kidney injury
含人肾活检样本、小鼠IRI/UUO模型、HK-2细胞体外模型及RNA-seq,并有siRNA、AAV过表达、Box5干预和ChIP-qPCR等机制验证。
AKI患者肾活检样本及临床队列(32例AKI患者、20例健康志愿者) Wnt5a+/−杂合敲低小鼠及其野生型同窝对照 双侧缺血再灌注损伤(IRI)小鼠模型 单侧输尿管梗阻(UUO)小鼠模型 TGF-β刺激的HK-2人近端肾小管上皮细胞
AKI患者肾活检中WNT5A和CD146的免疫组化表达及CKD进展组与缓解组的IOD定量比较 Wnt5a+/−小鼠UUO(术后第7天)和双侧IRI(术后第14天)模型中纤维化标志物Vim、α-SMA、Col1a1的Western blot和组织学定量 SGLT2启动子驱动AAV9-Wnt5a尾静脉注射(4×10^11 vg)过表达小鼠IRI模型中Box5(1 mg/kg,隔日腹腔注射,术后第3天开始)的干预效果 HK-2细胞中TGF-β(10、20、40 ng/mL,48 h)刺激下WNT5A/CD146 siRNA、SP600125(10 μM)和Box5(100 μM)对p-JNK及SNAI1的调控 c-JUN与KLF5在SNAI1启动子(chr20:49,980,981–49,983,059)上的双荧光素酶、ChIP-qPCR、coIP及ML264抑制验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估WNT5A及其受体CD146在AKI患者肾脏中的表达模式及其与CKD进展的关系
对10例AKI患者肾活检样本和3例肾癌癌旁正常肾组织对照进行WNT5A、CD146免疫组化染色,以IOD定量,并比较AKI缓解组与CKD进展组WNT5A表达;在小鼠IRI模型第3天和第14天进行Wnt5a和CD146免疫荧光染色并以LTL标记近端小管
明确Wnt5a缺失是否减轻AKI诱导的肾纤维化
采用Wnt5a+/−杂合敲低小鼠及野生型同窝对照建立UUO和双侧IRI模型,通过H&E、Masson三色染色、免疫组化Vim和α-SMA及Western blot检测Wnt5a、Vim、α-SMA、Col1a1
验证近端肾小管Wnt5a过表达是否加重IRI诱导的肾纤维化,以及WNT5A抑制剂Box5能否缓解
通过尾静脉注射SGLT2启动子驱动的AAV9-Wnt5a-EGFP过表达Wnt5a,14天后建立双侧IRI模型,术后第3天开始腹腔注射Box5,第14天取材,进行免疫荧光、H&E、Masson、Vim/α-SMA免疫组化及qPCR检测Wnt5a、FN1、Col1a1、Tgf-β、α-SMA
确定WNT5A是否通过CD146和JNK激活调控SNAI1及纤维化反应
对HK-2细胞进行RNA-seq;在TGF-β刺激下使用Box5、WNT5A siRNA、CD146 siRNA、JNK抑制剂SP600125及WNT5A过表达,Western blot和qPCR检测WNT5A、CD146、COL1A1、VIM、t-JNK、p-JNK、SNAI1、α-SMA
在体验证WNT5A调控JNK/SNAI1通路
在Wnt5a敲低小鼠UUO和IRI模型及Wnt5a-AAV过表达IRI小鼠中,通过免疫组化、Western blot和qPCR检测CD146、t-JNK、p-JNK、Snai1,并观察Box5对过表达小鼠中p-JNK和Snai1的影响
解析p-JNK下游c-JUN如何调控SNAI1转录
通过ChIP-seq数据库分析c-JUN在SNAI1启动子上游结合峰;在WNT5A过表达HK-2细胞中进行Western blot检测t-c-JUN/p-c-JUN;双荧光素酶报告基因、ChIP-qPCR、KLF5结合基序突变、coIP及KLF5抑制剂ML264处理验证c-JUN与KLF5的协同作用及KLF5结合位点(GCCCCGCCCC,−68至−59 bp)
探究血清sCD146是否可用于评估AKI进展和预后
纳入32例AKI患者和20例健康志愿者,ELISA检测血清sCD146,分析其与峰值血清肌酐、eGFR、BUN、Cys C、IFTA%、24 h尿蛋白和UACR的相关性,并比较进展至CKD与恢复患者的sCD146水平
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F-12培养基 | Ademas | C8015 |
| 胎牛血清 | Vazyme | F101-01 | |
| 细胞处理 | 转化生长因子β | StemRD | 240-B-002 |
| 基因沉默 | Wnt5a小干扰RNA | Sigma-Aldrich | SASI HS01 00202618 |
| CD146小干扰RNA | Thermo Fisher Scientific | AM16708 | |
| 质粒转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000015 |
| FuGENE转染试剂 | Promega | E2311 | |
| 药物处理 | SP600125 | MedChemExpress | HY-12041 |
| Box5 | MedChemExpress | HY-123071 | |
| ML264 | MedChemExpress | HY-19994 | |
| 蛋白提取 | T-PER蛋白提取试剂 | Invitrogen | 78510 |
| 磷酸酶/蛋白酶抑制剂混合物 | Beyotime | P1045 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Yoche | YSD-500T |
| Western blot | LumiQ ECL化学发光液 | ShareBio | SB-WB012 |
| 抗WNT5A抗体 | Proteintech | 55184-1-AP | |
| 抗CD146抗体 | Proteintech | 17564-1-AP | |
| 抗JNK抗体 | Proteintech | 24164-1-AP | |
| 抗磷酸化JNK抗体 | Abcam | ab124956 | |
| 抗c-JUN抗体 | Proteintech | 24909-1-AP | |
| 抗磷酸化c-JUN抗体 | Proteintech | 80086-1-RR | |
| 抗SNAI1抗体 | Proteintech | 13099-1-AP | |
| 抗COL1A1抗体 | Proteintech | 14695-1-AP | |
| 抗波形蛋白抗体 | AiFang Biological | AFW21648 | |
| 抗His标签抗体 | Proteintech | 66005-1-Ig | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 免疫组化 | 抗α-SMA抗体 | Proteintech | 14395-1-AP |
| 抗SNAI1抗体 | Abcam | ab167609 | |
| 免疫荧光 | 抗CD146小鼠单克隆抗体 | Proteintech | 66153-1-Ig |
| 组织染色 | H&E染色试剂盒 | Beyotime | C0105S |
| Masson三色染色试剂盒 | Beyotime | C0189S | |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | Vazyme | R410 |
| 逆转录 | 逆转录酶试剂盒 | Vazyme | R302-01 |
| 实时定量PCR | SYBR Green预混液 | Vazyme | Q311-02 |
| RNA-seq | NEBNext poly(A)磁珠纯化试剂 | NEB | E7490 |
| NEBNext Ultra定向RNA文库构建系统 | NEB | E7760S | |
| 双荧光素酶报告基因 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Vazyme | DL101-01 |
| coIP | Protein A/G磁珠 | Vazyme | PB101-01 |
| ChIP-qPCR | Protein A/G磁珠 | MedChemExpress | HY-K0202 |
| ELISA | sCD146酶联免疫吸附检测试剂盒 | Abcam | ab267610 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本与队列 | AKI诊断与分期依据KDIGO标准;AKI进展至CKD定义为90天随访窗口内连续两次eGFR低于90 mL/min/1.73 m2;肾活检10例、sCD146分析32例AKI患者及20例健康志愿者;随访至少3个月;伦理批号2023-YS-121 阅读提示:见Materials and methods中Human biopsy samples小节及Table S1、Table S5 |
| 动物模型建立 | Wnt5a+/−小鼠6周龄、8周龄成熟后进行实验;IRI为双侧肾血管夹闭30 min,核心体温维持37.0°C ± 0.3°C,术后14天取材;UUO为4-0丝线两点结扎并切断,术后7天取材;麻醉为1%戊巴比妥50 mg/kg腹腔注射;术后镇痛为美洛昔康5 mg/kg皮下注射3天;伦理批号2023-0235 阅读提示:见Materials and methods中Animal models、IRI model和UUO model小节 |
| AAV过表达与Box5干预 | AAV9-SGLT2-Wnt5a-EGFP剂量4 × 10^11 vg尾静脉注射;注射14天后诱导双侧IRI;Box5剂量1 mg/kg隔日腹腔注射,术后第3天开始;对照注射等体积空载AAV或等体积PBS;IRI后14天取材 阅读提示:见Materials and methods中Application of AAV and Wnt5a inhibitors in animal models小节及Figure 3A |
| HK-2细胞处理 | HK-2细胞汇合度50%–60%时处理,处理前饥饿12 h;TGF-β浓度10、20、40 ng/mL处理48 h;siRNA转染浓度50 nM并使用Lipofectamine 3000;SP600125浓度10 μM、Box5浓度100 μM;质粒转染在药物处理前1天使用FuGENE进行 阅读提示:见Materials and methods中Cell culture, intervention, and plasmid transfection小节 |
| 机制验证实验 | SNAI1启动子区域chr20:49,980,981–49,983,059(GRCh38.p14);KLF5结合基序GCCCCGCCCC及突变位点−68至−59 bp;双荧光素酶检测转染后48 h;coIP使用3 μg KLF5抗体,22°C–25°C孵育180 min;ChIP使用anti-c-JUN和anti-KLF5抗体;ML264抑制KLF5 阅读提示:见Materials and methods中Dual-luciferase reporter assays、CoIP和ChIP-qPCR小节及Figure 6 |