临床样本中Fn和巨噬细胞的富集分析
验证Fn和M2巨噬细胞在OSCC组织中的富集情况
通过16S rDNA测序、荧光原位杂交(FISH)和免疫荧光(IF)检测临床OSCC组织和癌旁组织中Fn和巨噬细胞标志物。
The role of CXCL2-mediated crosstalk between tumor cells and macrophages in Fusobacterium nucleatum-promoted oral squamous cell carcinoma progression.
包含临床样本分析、体外共培养模型、细胞功能验证、机制验证(NF-κB通路)及小鼠体内模型,多层级证据支持。
cal27人舌鳞状细胞癌细胞系 THP-1人单核细胞系(PMA诱导分化为巨噬细胞) SCC7小鼠头颈鳞状细胞癌细胞系 RAW264.7小鼠巨噬细胞系 C3H小鼠SCC7皮下移植瘤模型
Fn感染复数(MOI):cal27和SCC7为100,THP-1为20,RAW264.7为10 条件培养基制备:无血清培养基中加或不加Fn孵育48小时 巨噬细胞极化检测:CD86(M1)和CD206(M2) SB225002给药剂量:10 mg/kg腹腔注射,每2天一次 小鼠模型:5周龄雄性C3H小鼠,皮下注射10^6 SCC7细胞,第19天处死
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Fn和M2巨噬细胞在OSCC组织中的富集情况
通过16S rDNA测序、荧光原位杂交(FISH)和免疫荧光(IF)检测临床OSCC组织和癌旁组织中Fn和巨噬细胞标志物。
评估Fn和巨噬细胞条件培养基对OSCC细胞增殖、迁移和侵袭的影响
用Fn感染和条件培养基处理cal27和SCC7细胞,通过EdU、CCK8、集落形成、划痕和Transwell实验检测增殖和迁移能力,并通过qRT-PCR、Western blot和IF检测相关标志物表达。
研究Fn和OSCC细胞条件培养基对巨噬细胞招募和M2极化的作用
使用Transwell实验检测巨噬细胞迁移,通过qRT-PCR、IF和流式细胞术分析M1/M2标志物表达。
验证CXCL2是否在Fn增强的肿瘤细胞-巨噬细胞串扰中起关键作用
用siRNA敲低cal27或THP-1细胞中的CXCL2,检测对OSCC细胞增殖、迁移、巨噬细胞招募和极化的影响。
阐明Fn上调CXCL2的上游信号通路
Western blot检测NF-κB通路蛋白(p-IKKα/β、p-p65、IκBα),IF检测p65核转位,并使用NF-κB抑制剂Bay11-7082验证对CXCL2表达的影响。
在体内验证Fn通过CXCL2促进OSCC进展和M2巨噬细胞浸润
C3H小鼠皮下接种SCC7细胞,肿瘤内多点注射Fn,并使用CXCR2抑制剂SB225002。通过肿瘤体积/重量、流式细胞术、IHC和IF检测。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细菌培养 | 脑心浸液肉汤 | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| RPMI 1640培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 细胞分化 | 佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯 | MCE | -- |
| 细胞活性检测 | CCK8试剂盒 | Dojindo | -- |
| 活/死细胞染色试剂盒 | Solaibao | -- | |
| 细胞增殖检测 | Cell-Light EdU细胞增殖试剂盒 | RiboBio | -- |
| 基因表达分析 | RNAiso Plus试剂 | Takara | -- |
| PrimeScript RT预混液 | Takara | -- | |
| SYBR Premix Ex Taq | Yeasen | -- | |
| 蛋白质检测 | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solaibao | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| Western blot | MMP9抗体 | Proteintech | 10375-2-AP |
| Vimentin抗体 | Cohesion Biosciences | CPA2228 | |
| CXCL2抗体 | Abcam | ab12473 | |
| CXCL2抗体 | Bioss | bs-1162R | |
| 磷酸化NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| 磷酸化IκBα抗体 | Cell Signaling Technology | 2859 | |
| IκB-α抗体 | Cell Signaling Technology | 4814 | |
| 磷酸化IKKα/β抗体 | Cell Signaling Technology | 2697 | |
| IKKα抗体 | Cell Signaling Technology | 11930 | |
| IKKβ抗体 | Cell Signaling Technology | 8943 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | HRP-60004 | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 81115-1-RR | |
| 免疫荧光 | Ki67抗体 | Proteintech | 28074-1-AP |
| CD86抗体 | Cell Signaling Technology | 91882 | |
| CD86抗体 | Cohesion | CQA1883 | |
| CD206抗体 | Abcam | ab64693 | |
| 流式细胞术 | 人Fc受体阻断剂 | Biolegend | 422301 |
| 抗小鼠CD16/32抗体 | Biolegend | 156603 | |
| 固定/破膜缓冲液试剂盒 | BioLegend | 426803 | |
| APC标记抗人CD86抗体 | Biolegend | 374207 | |
| FITC标记抗人CD206抗体 | Biolegend | 321103 | |
| APC标记抗小鼠CD206抗体 | Biolegend | 141707 | |
| PE标记抗小鼠CD86抗体 | Biolegend | 129203 | |
| ELISA | CXCL2 ELISA试剂盒 | Lianke Biotechnology | -- |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| opti-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 动物实验 | SB225002 | -- | -- |
| 抗小鼠F4/80抗体 | Biolegend | 123107 | |
| 免疫组化 | 免疫组织化学试剂盒 | Zhongshan Golden Bridge Biotechnology | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细菌感染 | MOI值:cal27和SCC7为100,THP-1为20,RAW264.7为10;E.coli对照MOI 10 阅读提示:Materials and methods: Fn infection and conditional medium collection |
| 条件培养基制备 | 无血清培养基中加或不加Fn孵育48小时 阅读提示:Materials and methods: Fn infection and conditional medium collection |
| 细胞培养 | DMEM含10% FBS和1%青霉素-链霉素;RPMI 1640含10% FBS和0.05 mM β-巯基乙醇 阅读提示:Materials and methods: Bacterial strain and cell culture |
| 巨噬细胞分化 | THP-1用PMA 100 ng/ml处理24小时 阅读提示:Materials and methods: Bacterial strain and cell culture |
| 基因沉默 | siRNA-CXCL2序列(siRNA-3)使用Lipofectamine 2000转染,转染后48小时 阅读提示:Materials and methods: Cell transfection |
| NF-κB抑制实验 | Bay11-7082预处理60分钟,随后加或不加Fn共培养48小时 阅读提示:Results: Fn regulates CXCL2 through the NF-κB signaling pathway |
| 小鼠模型 | 5周龄雄性C3H小鼠,皮下注射10^6 SCC7细胞;Fn瘤内注射每3天一次;SB225002剂量10 mg/kg,腹腔注射每2天一次 阅读提示:Materials and methods: OSCC mouse model |
| 统计分析 | 每个实验重复三次,三次重复;使用t检验或单因素方差分析 阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis |