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- 文献和实验
- 技术资料
- 规格:
YJ007
Anti-DYKDDDDK Magnetic Beads
本产品4℃运输;保存于4℃,禁止产品冻结,长期存放请保证试剂管竖立向上,保质期24个月。
货号规格
goodYJ007 1 mL
产品简介
goodAnti-DYKDDDDK 免疫磁珠采用先进的纳米表面生物技术,将高质量的鼠源单克隆 Anti-DYKDDDDK 抗体高密度共价偶联在超顺磁性纳米微球表面,是纯化 DYKDDDDK 标签蛋白的理想工具。与市场上同类产品相比,本产品具有更大的特异性表面区域,磁珠使用量更少,非特异性结合率低,使用起来简便高效,可有效避免长时间操作造成目标蛋白被水解,确保了目标蛋白的活性及蛋白复合物的完整性。
good本产品可应用于多种样品中抗原的免疫沉淀反应和少量蛋白质的纯化,细胞裂解液、细胞分泌液上清、血清、动物腹水以及其它免疫抗原等均可适用。
产品参数
操作步骤
good◆ 样本处理
good◆gg1. 根据样品种类选择相应的处理方法:
good◆ggggA.悬浮细胞:离心收集细胞(4℃,500×g,10min),弃上清后称重,按每毫克细胞50μL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每毫克细胞5~10μL的比例加入结合/洗涤缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10min;离心收集上清液(4℃,14,000×g,10min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
good◆ggggB.贴壁细胞:移去培养基,按每1.0×105个细胞150μL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤两次;用细胞刮刀刮落细胞,收集至1.5mL离心管内,按每1.0×105个细胞20~30μL的比例加入结合/洗涤缓冲液,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),混匀后置于冰上孵育10min;离心收集上清液(4℃,14,000×g,10 min),置于冰上备用(或置于-20℃长期保存);
good◆ggggC. 大肠杆菌:离心收集大肠杆菌(4℃,12,000×g,2min),弃上清后称重,按每克菌体(湿重)10mL的比例用1×PBS(货号:PS110)洗涤2次;按每克菌体(湿重)5~10mL的比例加入结合/洗涤缓冲液 ,同时加入蛋白酶抑制剂(货号:GRF101),重悬菌体,超声裂解细胞,离心收集上清(4℃,12,000×g,10min)。
good◆ 磁珠预处理
good◆gg2. 用移液器轻柔吹打Anti-DYKDDDDK 免疫磁珠,使其充分混悬,取25µL磁珠悬液置于1.5 mL 离心管中;
good◆gg3. 加入500 µL 结合 / 洗涤缓冲液,用移液器轻柔吹打重悬Anti-DYKDDDDK 免疫磁珠,接着在磁力架上静置1 min后,吸弃上清;
good◆gg4. 重复步骤3一次;
good◆gggg注意:面对多个样品时,可先将一共所需的磁珠预处理后再分装到各个反应管中。
good◆ 样品的结合
good◆gg5. 在预处理后的磁珠中加入500 μL 步骤 1 制备好的样品,置于翻转混合仪上孵育(常温 2 h,4℃ 过夜);
good◆gg6. 将上述混合液置于磁力架上静置1 min,然后把上清液转移到新的离心管中备用(上清液可用于检测DYKDDDDK标签蛋白是否存在残留),原离心管中剩余的即为 蛋白-磁珠复合物 ;
good◆gggg注意:结合过程中,磁珠可能会出现聚团或呈片状,属于正常现象,不会影响实验结果。
good◆ 洗涤
good◆gg7. 向步骤6所得的 蛋白-磁珠复合物 中加入500 µL 结合 / 洗涤缓冲液,用移液器轻柔吹打重悬,接着在磁力架上静置1 min后, 吸弃上清;
good◆gg8. 重复步骤7大约三次,直至洗涤后的上清液OD280小于0.05为止;
good◆gggg注意:如上清液的OD280仍大于0.05,则适当增加洗涤次数。
good◆ 蛋白洗脱
good◆gg9. 本操作说明书提供以下两种抗原洗脱方案,操作者可根据后期检测的需要选择不同的抗原洗脱方法。
good◆gggg变性洗脱:此方法洗脱的样品适用于SDS-PAGE检测。向步骤8洗涤后的蛋白-磁珠复合物中加入80~100μL 1×SDS-PAGE上样缓冲液(由5×稀释为1×)混合均匀,100℃加热10min。待冷却后,将离心管在磁力架上静置1min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,收集上清,进行SDS-PAGE检测。
good◆gggg非变性洗脱:此方法洗脱的样品保持原有的生物活性,可用于后期功能分析。向步骤8洗涤后的蛋白-磁珠复合物中加入50~100μL洗脱缓冲液,室温孵育5~10min;将离心管在磁力架上静置1min,待磁珠吸附到离心管侧壁上后,收集上清液至新的离心管,每100μL洗出液中加入10μL中和缓冲液将洗脱产物pH调节至中性,用于后期功能分析。
常见问题及对策
g如何避免磁珠在储存或使用过程中可能出现的聚集情况?
答:磁珠应保存在 2~8℃,使用时应避免由于污染或干燥而导致的聚集。不过,磁珠在低 pH 值的缓冲液中发生聚集 属于正常现象,不影响磁珠的正常使用。在 结合 / 洗涤缓冲液 中添加o终浓度为 0.1%(V/V) 的非离子型去垢剂 ( 如 Triton X-100、Tween-20 或 NP-40) 可有效防止磁珠聚集。经过低 pH 值洗脱操作的磁珠可以用 结合 / 洗涤缓 冲液 洗涤至中性,然后用含有 0.1%(V/V)Tween-20 的 Tris 缓冲液 (pH 7.5) 振荡重悬磁珠,并用超声波水浴处理 2 min,即可使磁珠恢复均匀状态,以上处理均不影响磁珠的抗体结合效率。
g如何解决磁珠易粘附管壁的现象?
答:建议使用低吸附率的耗材进行磁珠操作。另外,在缓冲液中添加 0.01%~0.1%(V/V) 的非离子型去垢剂 ( 如 Triton X-100、Tween-20 或 NP-40) 可以有效降低耗材对磁珠的粘附。
g抗原为何没有免疫沉淀下来?
答:① 样品中抗原含量过少,不足以被检测到
good◆gg 建议:通过 SDS-PAGE 或 Western Blot 验证裂解液中蛋白的表达和裂解效率;如有必要,可加大样品用量;
② 结合 / 洗涤缓冲液 中的成分干扰了抗原与抗体的结合
good◆gg 建议:使用其它缓冲液进行免疫沉淀和漂洗 ( 比如可选用含有 0.5% CHAPS 的 TBS 缓冲液 )。
g为何获得的蛋白量过低?
答:① 蛋白质被降解
good◆gg 建议:加入蛋白酶抑制剂;
② 所用的 Anti-DYKDDDDK免疫磁珠 量不够
good◆gg 建议:提高 Anti-DYKDDDDK免疫磁珠 用量。
g为何有多条非特异条带?
答:有非特异性的蛋白结合在磁珠上
good◆gg 建议:在 结合 / 洗涤缓冲液 中加入 50~350 mM NaCl,并加大洗脱力度和次数。
注意事项
good1. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作;
good2. 本产品仅限科研使用。
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文献和实验后通过金属螯和亲和层析去除杂蛋白,使复性不受其它蛋白的干扰,或进行金属螯和亲和层析复性;3.His标签融合蛋白也被用于蛋白质-蛋白质、蛋白质-DNA相互作用研究;4.His标签免疫原性相对较低,可将纯化的蛋白直接注射动物进行免疫制备抗体;5.可应用于多种表达系统,纯化的条件温和;6.可以和其它的亲和标签一起构建双亲和标签。 Flag:Flag标签蛋白为编码8个氨基酸的亲水性多肽(DYKDDDDK),同时载体中构建的Kozak序列使得带有FLAG的融合蛋白在真核表达系统中表达效率更高。FLAG作为标签
需求,包括各种最新型的标签,如:SNAP-Tag™、Halo Tag™、AviTag™、Sumo等;也提供齐全的各种常用标签,如eGFP、His、Flag等等标签。 以下是部分蛋白标签的特性介绍,更加详细的介绍可在查询克隆产品的结果列表里面看到各种推荐的蛋白标签和载体 。 TrxHIS His6是指六个组氨酸残基组成的融合标签,可插入在目的蛋白的C末端或N末端。当某一个标签的使用,一是能构成表位利于纯化和检测;二是构成独特的结构特征(结合配体
基因对框克隆到含有标签的载体 上,以便下游通过抗体或荧光检测。同时,标签的存在也方便了蛋白纯化。 Sigma-Aldrich和安捷伦(原Stratagene)都提供带有FLAG、c-Myc或CBP(钙调蛋白结合肽段)的载体 系统。此外,它们还提供编码“串联亲和标签”的载体,即利用两个肽段序列进行两步法纯化,以产生高纯蛋白。例如,Sigma-Aldrich的TAP系统将FLAG和HA(血凝素)标签与目的蛋白偶联,先通过FLAG抗体柱分离蛋白,再通过HA抗体柱纯化,可获得比一步法更纯的蛋白
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YJ007【29O28】Anti-DYKDDDDK免疫磁珠(原FLAG Tag).pdf 附 (下载 0 次)
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