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- 库存:
266
- 英文名:
HiFi PCR PreMix
- 保质期:
长期
- 供应商:
北京百奥莱博科技有限公司
- 保存条件:
-25~-15℃
- 规格:
1ml|5ml
特别提示:包括超高保真PCR反应预混液在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:超高保真PCR反应预混液
英文名称:HiFi PCR PreMix
产品货号:WH0173
产品规格:1ml|5ml
本制品是一种新型高保真PCR扩增预混液,适用于高通量测序文库的PCR扩增和其他PCR相关的克隆和检测。
扩增预混液中的Ultra HiFi DNA Polymerase是通过定向分子进化技术开发得到的新型快速高保真DNA聚合酶,增强了DNA聚合酶对模板的亲和力,使得此酶在扩增速度和延伸能力上得到了提升,增加了PCR成功率和产物量。同时,此酶具有优良的3"- 5"外切酶活性(Proofreading活性),保真性可达市场上主流产品水平,保证了基因和文库扩增过程中的真实性。此外,本产品中的DNA聚合酶具有热启动(Hot Start)功能,可有效的控制低温情况下的非特异扩增和酶活损耗,进而保证了PCR扩增的特异性和稳定性。
本产品为一管式预混Mix形式,内含热启动型的Ultra HiFi DNA Polymerase、超纯dNTPs、MgCl2、反应缓冲液等PCR反应所需组分,只需加入模板和引物即可进行PCR扩增反应,操作简便。除此之外,预混Mix中还整合了PCR反应增强系统,不但提高了预混Mix的稳定性,使得聚合酶对PCR反应抑制剂的耐受能力增强,还提高了Ultra HiFi DNA Polymerase对不同GC含量模板的适应能力,使得本产品具有广泛的样品普适性和模板投入范围,将PCR反应的偏好性降至zuì低。
本产品的PCR产物为平末端,可加A处理再与T载体连接或直接使用平末端克隆载体进行基因克隆,如我公司的零背景快速连接试剂盒(目录号:WH0191)。
产品特点:
·扩增快速:延伸速度可达10-15 sec/kb;延伸力强:可扩增长至15 kb的DNA片段;
·特异性好:具有热启动功能,可用于多重PCR;
·灵敏度高:模板用量可低至10pg;
·偏好性低:针对不同GC含量的模板都有均衡的扩增效果;
·应用广泛:可用于高通量测序文库的PCR扩增和其他PCR相关的克隆和检测。
适用范围:
用于DNA的高保真快速扩增,如基因表达克隆、基因定点突变、基因组点突变的分析(SNP)等;更可用于高通量测序中,如高保真基因组DNA文库的富集。
产品组成:
| 组分 | WH0173-1 | WH0173-2 | WH0173-3 | WH0173-4 |
| HiFi PCR PreMix | 1ml | 5×1ml | 1ml | 5×1ml |
| Nuclease-Free ddH2O | 1ml | 5×1ml | 1ml | 5×1ml |
| Loading dye in Mix | Yes | Yes | No | No |
保存条件:-25~-15℃保存,避免反复冻融。保质期为一年。
操作步骤:
一、高通量测序文库的PCR扩增
注:进行文库扩增实验时,请选用不带Loading dye(WH0173-3或WH0173-4)
1.将2×HiFi PCR PreMix、P5/P7 Primers(客户自备)和ddH2O于室温条件下(15-25°C)融化,混匀,简短离心后于冰盒上备用。
2.按照下表体系进行PCR反应体系的配制(50μl体系):
| 成分 | 使用量 | 反应浓度 |
| 2×HiFi PCR PreMix | 25μl | 1× |
| P5 Primer (10μM) | 5 μl | 1μM |
| P7 Primer (10μM) | 5 μl | 1μM |
| 纯化过的接头连接产物 | Variable | <1μg |
| Nuclease-Free ddH2O | 至50 μl | - |
注:配制反应体系时,请全程将反应管置于冰上进行操作。对于多个样品,请计算所需试剂的总体积并在此基础上额外添加10%,以避免分装过程中枪头挂壁损失而导致试剂体积不足。
3.按下表设置PCR仪反应程序,开启热盖,温度设置于105℃。
| 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 1 | 98℃ | 2min | 1 |
| 2 | 98℃ | 20sec | 6-12* |
| 3 | 60℃ | 30sec | |
| 4 | 72℃ | 30sec | |
| 5 | 72℃ | 1min | 1 |
| 6 | 4℃ | Hold | 1 |
注:请根据DNA的质量和上样量确定PCR循环数。一般而言,对于100ng、10 ng、1 ng文库起始DNA,在进行PCR富集时分别需要扩增6、10、12个循环。如果在PCR富集之前经过片段大小筛选步骤(size-selection),则建议在原有基础上再增加2-4个循环;如果DNA质量较差(比如提取于FFPE样品),则建议在原有基础上再增加1-3个循环。
4.PCR样品温度降至4℃后,可将PCR产物取出并纯化回收。纯化过程可参考BaiSeq NGS文库富集试剂(目录号:WH0210)相关步骤。
5.上机测序前可使用凝胶电泳、qPCR定量或者Agilent生物分析仪对DNA文库质量进行鉴定。纯化后得到的DNA文库可保存于-20℃。
二、常规PCR扩增
(一)PCR反应液的配制:
1.将2×HiFi PCR PreMix、引物、模板和ddH2O于室温条件下(15-25°C)融化,混匀,简短离心后于冰盒上备用。
2.按照下表体系进行PCR反应体系的配制:(50μl反应体系)
| 成分 | 使用量 | 反应浓度 |
| DNA Template | Variable | - |
| Primer F* (10μM) | 1.25μl | 0.25 μM |
| Primer R* (10μM) | 1.25μl | 0.25 μM |
| 2×HiFi PCR PreMix | 25μl | 1× |
| Nuclease-Free ddH2O | To 50 μl | - |
注意1:配制反应体系时,请全程将反应管置于冰上进行操作。对于多个样品,请计算所需试剂的总体积并在此基础上额外添加10%,以避免分装过程中枪头挂壁损失而导致试剂体积不足。
注意2:引物终浓度为0.25 μM时可以在大多数体系中获得良好的扩增结果。扩增效率不高时,可增加PCR反应体系中的引物浓度;适当减少PCR反应体系中的引物浓度则可以增加PCR反应特异性。如有必要,可以在0.2-1.0 μM间进行优化选择。
注意3:模板DNA用量请参照如下表(50 μl PCR反应体系)
| 模板类型 | 模板用量范围 | 推荐模板用量 |
| 基因组DNA | 1-1000ng | 100-500ng |
| 质粒DNA | 0.01-100ng | 1-10ng |
| cDNA | 1-200ng | 50-100ng |
| λDNA | 0.01-100ng | 1-10ng |
3.按步骤2中建议模板及引物用量加入模板、引物和ddH2O,混匀后上机进行PCR反应。
(二)PCR反应条件:
1.使用2×HiFi PCR PreMix进行扩增反应时,请先使用三步法。
注:进行三步法扩增时,按延伸速度按照10-15 sec/kb进行设定。对于DNA长度≥10 kb的模板或复杂模板,可将延伸时间延长至30 sec/kb。下述反应程序仅供参考,实际情况下,客户可按照自身情况进行更改和调整。
三步法反应程序参考如下:
| 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 1 | 94℃ | 2min | 1 |
| 2 | 98℃ | 10sec | 35 |
| 3 | 60℃* | 30sec | |
| 4 | 68℃ | 10-15sec/kb | |
| 5 | 68℃ | 5min | 1 |
| 6 | 4℃ | Hold | 1 |
注意:退火温度为60℃可以在大多数体系中获得良好的扩增结果。PCR反应特异性不高时,可以在55-68℃范围内适当增加退火温度;如果引物Tm值小于63℃,可以将退火温度按Tm值进行设定。
2.当扩增产物出现杂带或弥散时,请尝试两步法或降落PCR(Step down PCR)。
两步法反应程序参考如下:
| 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 1 | 94℃ | 2min | 1 |
| 2 | 98℃ | 10sec | 35 |
| 3 | 68℃ | 10-15sec/kb | |
| 4 | 68℃ | 5min | 1 |
| 5 | 4℃ | Hold | 1 |
3.结果检测:反应结束后取5 μl反应产物,进行琼脂糖凝胶电泳检测。注:使用WH0173-1/WH0173-2时,PCR产物可直接进行电泳检测;使用WH0173-3/WH0173-4时,请加入Loading dye(客户自备)至1×,混匀后进行电泳检测。
(三)扩增模板类型及长片段扩增举例:
1.有记录的样品适用范围和扩增长度如下表所示:
| 模板类型 | 有记录的长片段扩增 |
| 人基因组DNA | -8kb |
| 大鼠基因组DNA | -8kb |
| 水稻基因组DNA | -8kb |
| 麦基因组DNA | -8kb |
| 玉米基因组DNA | -8kb |
| 大肠杆菌基因组DNA | -8kb |
| cDNA | -6kb |
| λDNA | -15kb |
2.具体扩增效果举例:
常见问题分析:
1.无扩增产物或扩增产物很少
| 可能原因 | 解决办法 |
| 循环条件不合适 | 将延伸时间延长至15-30sec/kb |
| 增加2-5个循环 | |
| 使用Step down PCR(针对8kb 以上扩增片段效果明显) |
|
| 模板DNA在质量或 数量上不满足要求 |
增加模板加入量 |
| 减少模板加入量(降低过量模板的 抑制作用或者降低不纯 净模板中PCR抑制物的干扰) |
|
| 尽量用经过纯化的模板 | |
| 模板中RNA要去除干净 | |
| 引物问题 | 引物浓度不适合,当扩增片段较长时尽 量选择相对较低的引物浓度(0.2-0.3μM); 当模板浓度较低时,尽量选择相对较高的 引物浓度(0.3-0.5 μM) |
| 尽量使用新配制的引物 | |
| 引物设计不合理,重新优化引物 |
2.出现杂带或弥散
| 可能原因 | 解决办法 |
| 循环条件不合适 | 提升退火温度或尝试两步法 |
| 使用Step down PCR | |
| 减少2-5个循环 | |
| 引物降解或设计不合理 | 重新配制或设计引物(适当的增加引物长 度可提高引物和模板间的特异性) |
| 模板过量 | 按照说明书中推荐模板用量添加 |
除了超高保真PCR反应预混液,,我公司还供应以下相关产品:
名称:PCR级甲酰胺
货号:BTN100839
规格:250mg
本产品为PCR级的甲酰胺,其可以促进某些引物、模板退火,降低带有二级结构的DNA的变性温度,是一种常用的PCR增强剂。
储存条件:低温运输、-20℃保存,有效期一年。
名称:Oligo dT12-18引物(0.5μg/μL)
货号:BTN100814
规格:5μg
Oligo(dT)12-18为长度在12到18之间的Oligo(dT)混合物,可以用于以带polyA尾巴的RNA为模板的第一链cDNA合成。建议每20μL反应体系使用0.5μg oligo(dT)。
储存条件:低温运输和-20℃保存,有效期一年。
名称:PCR Master Mix (含蓝色电泳染料)
货号:YT382
规格:400次|2000次|10000次
本品是含有蓝色染料(电泳位置约300-500bp)的2倍浓度的PCR预混液,含有2X Taq DNA Polymerase、2X PCR Buffer、2X dNTP和2X Loading Buffer,只需加入模板DNA、引物和水即可进行PCR扩增,并且扩增完毕后可以直接上样电泳。主要适用于cDNA或基因组DNA等的常规PCR扩增,特别适合于定性或半定量的PCR扩增,也可用于长度小于2kb的DNA片段的扩增和克隆。
本品中已经含有所有的通用组分,用户只需自备引物、模板DNA和水即可进行PCR扩增。大大简化了PCR操作,使操作更加快捷,也减少了PCR操作过程中可能导致的污染,使PCR的重复性更好。可以扩增出长达8kb的片段,但通常更适合用于扩增2kb以下的DNA片段。
本产品中加入了蓝色的电泳示踪染料,其在浓度为1%琼脂糖胶中的迁移位置大约位于300bp和500bp之间。PCR结束后可直接进行电泳检测,无需再添加上样缓冲液。蓝色示踪染料不会影响对相应DNA条带的观察和检测。
本产品稳定性高,经测试,反复冻融15次后对PCR的扩增效果无显著影响。反复冻融15次前后,使用不同引物扩增100-1500bp间不同长度目的片段的效果如下图所示。
本产品反复冻融15次前后扩增不同长度产物的效果图。A. 反复冻融前本产品进行PCR的扩增结果。B.反复冻融15次后的本产品进行PCR的扩增结果。除本产品是否反复冻融15次外,A和B的反应体系完全相同,电泳的上样量也相同。
储存条件:-20℃,有效期一年。
名称:血液直接PCR扩增试剂盒
货号:WE0120
规格:50μl×40次|50μl×200次
本试剂盒是由热启动酶、PCR Buffer、dNTPs、Mg2+以及PCR稳定剂和增强剂等组成的预混体系,本产品使用简便,无需事先提纯可直接用血液为模板扩增目的基因,可有效扩增高GC含量的模板和引物。
试剂盒组成:
| 组份 | 50μl×40次 | 50μl×200次 |
| 2×Blood Direct PCR Mix | 1ml | 5×1ml |
| ddH2O | 1ml | 5×1ml |
注意事项:建议使用时添加≤10%的全血为模板,加上血液后用涡旋器将管中各组分轻轻混匀。
使用方法:
以下举例为常规PCR反应体系和反应条件,实际操作中应根据模板、引物结构和目的片段大小不同进行相应的改进和优化。
1、PCR反应体系
| 试剂 | 50μl反应体系 | 20μl反应体系 |
| 2×Blood Direct PCR Mix | 25μl | 10μl |
| Forward Primer,10μM | 1μl | 0.4μl |
| Reverse Primer,10μM | 1μl | 0.4μl |
| Template Blood | 0.5-5μl | 0.25-2μl |
| ddH2O | up to 50μl | up to 20μl |
注意:引物浓度请以终浓度0.1-1.0μM作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下,可提高引物的浓度;发生非特异性反应时,可降低引物浓度,由此优化反应体系。
2、PCR反应条件
| 步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
| 预变性 | 94℃ | 2 min | |
| 变性 | 94℃ | 30 s | 35-40个循环 |
| 退火 | 55-60℃ | 30 s | |
| 延伸 | 72℃ | 30-60 s | |
| 终延伸 | 72℃ | 5 min |
注意:
1)一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度Tm低5℃,无法得到理想的扩增效率时,适当降低退火温度;发生非特异性反应时,提高退火温度,由此优化反应条件。
2)延伸时间应根据所扩增片段大小设定,本产品中所含热启动酶的扩增效率为1-2 kb/min。
3)可根据扩增产物的下游应用设定循环数。如果循环次数太少,扩增量不足;如果循环次数太多,错配机率会增加,非特异性背景严重。所以在保证产物得率的前提下应尽量减少循环次数。
储存条件:-20℃,避免反复冻融。
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文献和实验PCR 新手指南——手把手教您如何正确选择合适的 PCR 酶
酶。 图 1.非特异性扩增(左图)与使用热启动 DNA 聚合酶进行的特异性扩增(右图)。 如何为您的 DNA 聚合酶选择正确的形式 还有更多需要考虑的因素。选择可以简化您工作流程的聚合酶形式。PCR 聚合酶形式的选择包括即用型预混液、用于直接凝胶上样的含染料缓冲液以及用于直接 PCR 分析的所有必要成分的完整试剂盒。 使用预混液,您只需添加模板和引物,然后,开始 PCR 实验。如果您想进一步减少操作步骤,使用含染料缓冲液的聚合酶允许 PCR 产物直接凝胶上样(注意:确保染料与下游应用兼容)。直接
,扩增目标片段 扩增片段与线性化载体、组装预混酶混合反应 转化感受态细胞 · Step 1 · 如果载体上正好有合适插入目标片段的酶切位点,酶切载体使之线性化。为了降低单酶切载体不完全的几率,减少载体自连和提高筛选成功率,强烈建议双酶切——后面一个切点只要距离第一个切点 5 个碱基以上就行(主要是给两个酶留出结合空间)。如果没有合适的酶切位点,根据选定插入位点设计引物,用反向 PCR 来获得线性化载体。在多片段组装克隆的世界里,凡是酶切搞不定的,统统 PCR 引物设计搞定。简单粗暴有效。 ·
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