- ￥40
- TBD
- 天津
- LBD2011
- 2025年07月18日
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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件：
4℃
- 英文名：
6 × Loading Buffer(DNA电泳用)
- 库存：
可大量供应
- 供应商：
上海研谨生物
- 规格：
10ml/瓶
产品编号：LBD2011
产品名称：6 × Loading Buffer(DNA电泳用)
产品规格：10ml/瓶
产品价格：￥40.00元
用途：DNA电泳上样缓冲液
浓度：30mM EDTA,36%(V/V) Glycerol,0.05%(W/V) Xylene Cyanol FF,0.05%(W/V) Bromophenol Blue
配制：500mL
- 称量下列试剂于500L烧杯中
Bromophenol Blue ┅┅┅┅┅ 250mg
Xylene Cyanol FF ┅┅┅┅┅┅ 250mg
B．向烧杯中加入约200ml去离子水后，加热充分搅拌溶解。
C．加去180ml的甘油（Glycerol）后，使用2N NaOH调节pH值至7.0。
D. 用去离子水定容至500ml。
保存：4℃
使用：按1：6稀释使用
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文献和实验【求助】提质粒后，跑电泳，用10乘Loading Buffer 还是6乘Loading Buffer？
ilovelc999 请问各位，提质粒后，用20微升TE溶解，然后进行电泳，应该用10乘Loading Buffer 还是用6乘Loading Buffer？另外Buffer与质粒溶液一般应以什么比例混合好呢？多谢各位啦！ 纯属菜鸟 10乘 5：1的比例 质粒5 肥宝 我是用6X的，1:5，质粒5，不过也没那么严格，一般也就点个小点估计1ul lihuijin017
问：新买了GelRed，比较贵，打算用节约的方法来使用，也就是把GelRed预混在上样缓冲液里，和样品混合后上样电泳。因此想请教一下有经验的站友： 1 假定使用6X上样缓冲液，应该以多大比例混合GelRed？ 2 预混GelRed的上样缓冲液与核酸样品混合后，需要孵育一段时间还是可以直接上样？ 3 预混在上样缓冲液中的GelRed是否稳定，是否可以长期存放，以及存放条件是室温，4度
电泳缓冲液 50×Tris-乙酸（TAE）缓冲液 成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 2mol/L Tris碱 1mol/L 乙酸 100 mmol/L EDTA 水 242g 57.1 ml的冰乙酸（17.4 mol/L） 200ml的0.5 mol/L EDTA（pH 8.0） 补足1L 5×Tris-硼酸（TBE）缓冲液 成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 445 mmol/L Tris碱 445
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