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CRISPR KI (Tag) 果蝇

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  • 江苏省启东市
  • 2025年07月30日
    • 详细信息
    • 文献和实验
    • 技术资料
    • 提供商

      芳景生物

    • 服务名称

      CRISPR KI

    CRISPR KI(Tag)

    通过CRISPR和donor质粒(同源臂+插入序列)的共同作用,实现对靶点进行切割的同时,通过HR介导的同源重组修复方式,精确插入外源序列的目的。多适用于内源基因N或C端插入标签基因(Tag),以分析和获取该基因的表达模式。

    提供两种技术方案,根据有无筛选标记(marker)区分:

      无marker 有marker
    获得阳性方式 分子鉴定 表型筛选(眼睛的RFP)
    效率 略高 略低
    筛选阳性通量 大部分F1代 全部F1代
    成功率 较高 较高
    编辑后序列 精确,无多余序列 移除后残留34bp的loxP
    周期 长(需要marker移除)
    价格 相对高(分子鉴定成本高) 相对低(阳性筛选方便)
    适用范围 广泛 仅针对C端插入

     

    CRISPR KI-tag(with marker)    
    实验步骤 内容 周期(周)
    target测序 1.方法:PCR测序
    2.目的:确定注射果蝇品系的靶序列,确保gRNA序列正确并进行有效切割
    1
    gRNA和cas9-mRNA合成制备 1.gRNA设计:一个靶位点设计两个gRNA
    2.gRNA合成:T7体外转录合成
    3.cas9-mRNA合成:优化的cas9-DNA质粒为模板,体外转录合成cas9-mRNA
    0
    donor质粒载体构建 1.arm载体构建:无缝克隆连接
    载体:Amp抗性常规载体
    片段:注射果蝇基因组DNA中克隆5'+3'同源臂
    2.Donor载体构建:无缝克隆连接
    载体:arm载体PCR线性化,并在gRNA识别位置引入点突变
    片段:插入序列 + loxP-3P3-RFP-loxP marker(LRL)
    3.Donor质粒去内毒素提取
    3~4
    显微注射 1.注射品系:w1118(或客户指定品系)                           
    2.注射样品:gRNA+cas9-mRNA+donor
    3.注射胚胎数量:400-500个
    2
    杂交和筛选 1.P0果蝇与平衡子杂交
    2.筛选F1阳性果蝇(3P3-RFP)
    2
    分子鉴定 插入序列和基因组插入位置PCR和测序鉴定 0
    marker移除和构建稳定品系 1.F1阳性果蝇杂交平衡子
    2.构建RFP稳定/纯合品系
    3.F2果蝇与CRE内源表达品系杂交
    4.子代F3挑选无RFP果蝇杂交平衡子,并进行PCR和测序鉴定确保RFP移除
    5.构建marker移除的稳定/纯合品系
    10~12
    合计   18~21
    CRISPR KI-tag(without marker)    
    实验步骤 内容 周期(周)
    target测序 1.方法:PCR测序
    2.目的:确定注射果蝇品系的靶序列,确保gRNA序列正确并进行有效切割
    1
    gRNA和cas9-mRNA合成制备 1.gRNA设计:一个靶位点设计两个gRNA
    2.gRNA合成:T7体外转录合成
    3.cas9-mRNA合成:优化的cas9-DNA质粒为模板,体外转录合成cas9-mRNA
    0
    donor质粒载体构建 1.arm载体构建:无缝克隆连接
    载体:Amp抗性常规载体
    片段:注射果蝇基因组DNA中克隆5'+3'同源臂
    2.Donor载体构建:无缝克隆连接
    载体:arm载体PCR线性化,并在gRNA识别位置引入点突变
    片段:插入序列
    3.Donor质粒去内毒素提取
    3~4
    显微注射 1.注射品系:w1118(或客户指定品系)                           
    2.注射样品:gRNA+cas9-mRNA+donor
    3.注射胚胎数量:400-500个
    2
    杂交鉴定和构建稳定品系 1.P0果蝇与平衡子杂交,并进行插入序列和基因组插入位置PCR鉴定
    2.阳性P0的子代F1果蝇与平衡子杂交,并进行插入序列和基因组插入位置PCR和测序鉴定
    3.阳性F1的子代F2果蝇与平衡子杂交,并进行插入序列和基因组插入位置PCR鉴定
    4.阳性F2的子代F3果蝇自交构建稳定/纯合品系
    8~10
    合计   14~17

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    图标文献和实验
    相关实验
    • Nature:哈佛大学董民团队利用昆虫细胞全基因组 CRISPR 筛选,揭示杀虫毒素受体

      。 与此同时,哈佛医学院 Norbert Perrimon 教授实验室于 2018 年开发了应用于果蝇 S2R+ 细胞全基因 CRISPR/Cas9 筛选的文库,利用整合酶介导的 gRNA 基因组定点整合的方法,不需要使用慢病毒转染。作者发现 pTc 毒素可以通过修饰细胞内肌动蛋白抑制 S2R+ 细胞分裂,但中毒 S2R+ 细胞基因组依然可以保持复制,进而导致中毒 S2R+ 细胞体积随着时间不断增大。 正是利用这一特征,在实际筛选中,作者巧妙地利用 30 微米孔径的细胞筛分离中毒细胞以及对毒素有耐性

    • Basic Methods of Culturing Drosophila(培养果蝇基本方法)

      . Writing the genotype on the vial or bottle at each transfer invites transcription errors and takes longer than moving a tag. Don"t use a stock center stock number or other potentially cryptic symbol as the only identifier of a stock. Stocks are often kept

    • 【共享】Science:CRISPR热潮(中文翻译,附英文原文)

      室也开始使用这种技术,对人类细胞、小鼠、大鼠、斑马鱼、细菌、果蝇、酵母细胞、线虫和多种农作物进行了大量的试验,成功地对基因进行了定向缺失、插入、活化或抑制等遗传改造操作,从各个方面证明了CRISPR技术的潜在应用价值。虽然生物学家们最近也开发出了几种新方法,可以对基因进行更加精确的操作,但是美国哈佛大学(HarvardUniversity)的 George Church认为,CRISPR技术的高效率和易用性还是其他技术无法匹敌的。Church的实验室是世界上首批使用CRISPR技术成功对人类细胞进行遗传

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