病理进展特征引导的双相药物递送超分子水凝胶用于骨关节炎协同软骨保护

Pathological progression features-guided biphasic drug delivery supramolecular hydrogel for synergistic cartilage protection in osteoarthritis

作者信息Juntao Lin, Rulong Cai, Shaobing Li, Zhixiang Peng, Yupeng Wang, Yan Chen, Dongfang Zhou
PMID42979080
发布时间2026-11
DOI10.1016/j.apsb.2026.03.032

实验完整度

高

包含生物信息学分析、体外细胞实验、共培养体系及大鼠OA模型体内验证,并进行了功能与机制验证

主要模型

RAW264.7巨噬细胞 原代软骨细胞 Transwell共培养体系 胶原酶诱导的大鼠OA模型

重点核对

大鼠OA模型:30只雄性SD大鼠,随机分为5组,每组6只, collagenase VII注射造模,第1周和第4周关节腔注射50 μL PBS、DS@cLip(DS: 2.5 μg/kg)、SP Gel(SP: 0.05 mg/kg)或SP Gel/DS@cLip(SP: 0.05 mg/kg; DS: 2.5 μg/kg) 体外巨噬细胞极化:RAW264.7细胞经100 ng/mL LPS预孵育6 h,水凝胶提取物处理12 h,流式检测iNOS和CD206 体外软骨细胞焦亡:原代软骨细胞经LPS/NIG诱导焦亡,透析液干预,检测GSDMD-N和LDH 水凝胶表征:流变学测试频率0.1–100 rpm、应变1%;自愈合交替应变1%和500%;摩擦测试振幅4 mm、频率1 Hz、时间600 s 药物释放:透析袋(MWCO 3500 Da)在PBS或1 mmol/L H2O2中37 °C振荡,HPLC检测DS,茚三酮法检测SP

摘要

骨关节炎(OA)由于其复杂的发病机制以及目前缺乏能够阻止软骨进行性退化的有效疗法,仍然是主要的临床挑战。我们的生物信息学分析显示,在早期OA中滑膜炎症先于软骨退变,而软骨细胞焦亡在早期和晚期均存在,进一步促进软骨退化。基于这些发现,我们开发了一种新型病理进展引导的双相药物递送超分子水凝胶(SP Gel/DS@cLip),其特征是双交联,其中亚精胺(SP)和负载双硫仑(DS)的阳离子脂质体(DS@cLip)均积极参与水凝胶网络形成。SP Gel/DS@cLip表现出良好的可注射性、自愈合能力、润滑性能和生物相容性。值得注意的是,该水凝胶系统能够快速释放SP以靶向早期滑膜炎症,并持续释放DS以抑制软骨细胞焦亡,在体外和体内均发挥显著的软骨保护作用。这种病理进展特征引导的双相药物递送系统为OA治疗提供了一种有前景的治疗方法,具有强大的临床转化潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
OA进展中滑膜炎症与软骨细胞焦亡的时序关系如何,能否据此设计阶段特异性双相药物递送系统以实现协同软骨保护?
核心机制
SP Gel/DS@cLip通过ROS响应快速释放SP靶向早期滑膜炎症,促进巨噬细胞M1向M2极化并抑制NF-κB信号;同时通过脂质体包裹和凝胶基质缓释DS持续抑制软骨细胞NLRP3/caspase-1/GSDMD焦亡通路,两者协同保护软骨。
主要证据
生物信息学分析显示滑膜炎症早于软骨退变且焦亡在早晚期均激活;体外实验证实SP Gel/DS@cLip提取物促进巨噬细胞M2极化、抑制软骨细胞焦亡相关蛋白表达;共培养体系显示协同抗炎和抗焦亡作用;大鼠CIOA模型显示SP Gel/DS@cLip组OARSI评分最低、GAG含量最高、滑膜炎症和焦亡标志物表达最低。
研究意义
该病理进展特征引导的双相药物递送系统为OA治疗提供了一种有前景的策略,具有强大的临床转化潜力,并建立了将生物材料工程与OA动态病理生理相结合的理性治疗范式。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

生物信息学分析及动物模型验证OA病理进展特征

探究OA进展中滑膜炎症与软骨细胞焦亡的时序关系

分析scRNA-seq数据集GSE220243、GSE176308、GSE152805和bulk RNA-seq数据集GSE114007,进行UMAP聚类、伪时间分析、GO/KEGG富集、PPI网络分析;构建大鼠CIOA模型,在Day 7和Day 28进行组织学染色验证

2

双相药物递送超分子水凝胶的制备与表征

构建具有可注射性、自愈合、润滑和ROS响应释放性能的水凝胶系统

制备DS@cLip阳离子脂质体,与HA-PBA和SP混合形成B–N配位交联水凝胶;检测zeta电位、粒径、TEM形态、流变学、SEM、可注射性、自愈合、摩擦系数、ROS响应降解和药物释放

3

体外早期滑膜抗炎效果评价

验证SP Gel/DS@cLip快速释放SP对巨噬细胞极化的调控作用

RAW264.7巨噬细胞经LPS刺激后,用水凝胶提取物(Day 1、4、7)处理,流式检测M1/M2标志物,Western blot检测CD86、ARG1、p-P65,ELISA检测炎症因子

4

体外持续抗软骨细胞焦亡效果评价

验证SP Gel/DS@cLip持续释放DS对软骨细胞焦亡的抑制作用

原代软骨细胞经LPS/NIG诱导焦亡,用DS@cLip或SP Gel/DS@cLip透析液(Day 1、4、7、14、21、28)干预,检测GSDMD-N活性、LDH释放、焦亡相关蛋白表达

5

共培养体系评价协同软骨保护效果

验证双相释放SP和DS对巨噬细胞和软骨细胞的协同调控作用

LPS刺激的巨噬细胞与LPS/NIG诱导的软骨细胞在Transwell体系中共培养,用水凝胶提取物(Day 1、4、21)处理,检测M1比例、GSDMD-N活性、焦亡蛋白、COL II/MMP3/MMP13表达及ECM分泌

6

大鼠OA模型体内药效评价

验证SP Gel/DS@cLip在体内的双相释放行为和软骨保护效果

大鼠CIOA模型造模后第1周和第4周关节腔注射PBS、DS@cLip、SP Gel或SP Gel/DS@cLip,第7周处死,进行组织学染色、OARSI评分、GAG含量测定、免疫组化和免疫荧光分析

7

体内双相释放行为可视化

验证SP和DS在体内的双相释放动力学

将Cy5(模拟SP)和IR780(模拟DS)标记的水凝胶注射到大鼠关节腔,用IVIS Spectrum进行4周活体成像

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胆固醇AladdinC476640
卵磷脂AladdinL426059
十八胺AladdinO108436
双硫仑Sigma–Aldrich97-77-8
硫酸链霉素Sigma–Aldrich3810-74-0
胶原酶VIISigma–Aldrich9001-12-1
脂多糖Sigma–Aldrich93572-42-0
尼日利亚菌素Sigma–Aldrich28380-24-7
透明质酸BidepharmH131007
亚精胺BidepharmS107071
1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺MredaM042869
羟基苯并三唑MredaM109756
磷酸盐缓冲液Gibco10010023
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco11965092
胎牛血清GibcoA5256701
2′,7′-二氯荧光素二乙酸酯SolarbioD6470
胶原酶IISolarbioC8150
活/死细胞染色试剂盒BeyotimeC1070S-2
细胞计数试剂盒-8BeyotimeC0041
PE-iNOS抗体BioLegend696805
APC-CD206抗体BioLegend321109
RIPA裂解液BeyotimeP0038-1
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0012S
抗CD86抗体Proteintech13395-1-AP
抗ARG1抗体Santa Cruzsc-271430
抗磷酸化P65抗体Cell Signaling Technology3033
抗P65抗体AbmartT55034
抗GAPDH抗体ProteintechCL594-60004
IL-6检测试剂盒mmbio1011M1
TNF-α检测试剂盒BeyotimePT512
TGF-β检测试剂盒mmbio46344M2
IL-10检测试剂盒NJBYBIOBYGR500005
GSDMD-N ELISA试剂盒MMBIO45633M2
抗NLRP3抗体affinityDF7438
抗Cleaved caspase 1抗体affinityAF4005
抗Cleaved GSDMD抗体affinityAF4012
抗COL II抗体Proteintech28459-1-AP
抗MMP13抗体Proteintech18165-1-AP
抗TUBULIN抗体affinityAF7011
蛋白分子量标准(10–180 kDa)BiosharpBL712A
抗TNF-α抗体Cell Signaling Technology3707
TUNEL检测试剂盒BeyotimeC1176S
透析袋(截留分子量3500 Da)Sigma–Aldrich--
茚三酮试剂AladdinN100253
聚乙烯球(直径8 mm)Nanjing Qunlong GlassQP008
旋转流变仪Anton PaarMCR 302
扫描电子显微镜HitachiSU8220
通用材料试验机Bruker-CETRUMT-2
高效液相色谱仪WookinglabK2025
酶标仪Thermo Fisher Scientific--
IVIS Spectrum活体成像系统PerkinElmer--
荧光显微镜--LSM 880

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
大鼠OA模型构建与给药
大鼠品系、性别、周龄、样本量(30只雄性SD大鼠,6–7周龄,随机分5组每组6只);造模方式(胶原酶VII注射第1天和第3天);给药时间(第1周和第4周);给药剂量(DS@cLip: DS 2.5 μg/kg;SP Gel: SP 0.05 mg/kg;SP Gel/DS@cLip: SP 0.05 mg/kg + DS 2.5 μg/kg);给药体积(50 μL关节腔注射);观察终点(第7周处死)
阅读提示:Methods 2.7节和Figure 6A
体外巨噬细胞极化实验
细胞系(RAW264.7);刺激条件(100 ng/mL LPS预孵育6 h);水凝胶提取物处理时间(12 h);提取物浓度(DS@cLip: DS 10 μg/mL;SP Gel: SP 0.2 mg/mL;SP Gel/DS@cLip: SP 0.2 mg/mL + DS 10 μg/mL);检测指标(iNOS/CD206流式、CD86/ARG1/p-P65 Western blot、IL-6/TNF-α/NO/TGF-β/IL-10 ELISA)
阅读提示:Methods 2.4节和Figure 3
体外软骨细胞焦亡实验
细胞类型(原代软骨细胞);焦亡诱导条件(LPS/NIG);透析液收集时间点(DS@cLip: Day 1、4、7;SP Gel/DS@cLip: Day 1、4、7、14、21、28);干预时间(24 h);检测指标(GSDMD-N ELISA、LDH释放、NLRP3/cleaved caspase 1/cleaved GSDMD/IL-18蛋白表达)
阅读提示:Methods 2.5节和Figure 4
共培养体系实验
共培养方式(Transwell体系);细胞刺激条件(巨噬细胞LPS刺激12 h,软骨细胞LPS/NIG刺激12 h);共培养时间(12 h);水凝胶提取物处理时间(24 h);提取物时间点(Day 1、4、21);检测指标(M1比例、GSDMD-N活性、焦亡蛋白、COL II/MMP3/MMP13、番红O染色、CCK-8、PI染色)
阅读提示:Methods 2.6节和Figure 5
水凝胶制备与表征
HA-PBA和SP浓度(50 mg HA-PBA + 60 mg SP溶于1 mL PBS);混合比例(5:1 v:v);凝胶化条件(3 min at 25 °C);流变学测试参数(频率0.1–100 rpm,应变1%);自愈合测试(交替应变1%和500%,各60 s);摩擦测试参数(振幅4 mm,频率1 Hz,时间600 s)
阅读提示:Methods 2.3节和Figure 2
体内双相释放成像
动物数量(3只雄性SD大鼠,6–7周龄);标记物(Cy5模拟SP,IR780模拟DS);成像时间点(Day 1、3、7、14、21、28)
阅读提示:Methods 2.8节和Figure 6B–C