利用基因编码的生物传感器揭示活细胞中β-TrCP活性动态

Revealing β-TrCP activity dynamics in live cells with a genetically encoded biosensor.

作者信息Debasish Paul, Stephen C Kales, James A Cornwell, Marwa M Afifi, Ganesha Rai, Alexey Zakharov, Anton Simeonov, Steven D Cappell
PMID36289220
发布时间2022-10-26
DOI10.1038/s41467-022-33762-3

实验完整度

高

构建荧光/发光生物传感器,结合活细胞成像、生化验证、高通量筛选及多种癌细胞系功能验证。

主要模型

HeLa细胞系 MCF-10A细胞系 MCF7与MDA-MB-231乳腺癌细胞系 HEK-293T细胞系

重点核对

β-TrCP1,2 siRNA敲低后报告基因荧光信号升高 过表达β-TrCP1而非ΔF-β-TrCP1突变体降低报告基因信号 MLN-4924(3 μM)处理增加报告基因水平,放线菌酮(100 μg/mL)处理导致报告基因几乎完全丢失 免疫共沉淀验证报告基因与β-TrCP特异性结合,且β-TrCP促进报告基因多聚泛素化 活细胞延时成像监测细胞周期各时相及静息/再进入过程中的β-TrCP活性变化

摘要

F-box蛋白β-转导重复包含蛋白(β-TrCP)作为SCF E3泛素连接酶复合物的底物适配器,在细胞生理中起关键作用,并在多种癌症中常失调。在此,我们开发了一种荧光生物传感器,可在活的单细胞中实时定量测量β-TrCP活性。我们发现β-TrCP在整个细胞周期中保持组成性活性,并发挥维持其底物离散稳态水平的功能。我们发现β-TrCP的表达水平与β-TrCP活性之间没有相关性,表明存在转录后调控。使用我们的报告基因进行小分子高通量筛选,确定受体酪氨酸激酶信号传导是调节β-TrCP活性的关键轴,通过抑制β-TrCP与核心SCF复合物之间的结合来实现。我们的研究引入了一种监测活细胞中β-TrCP活性的方法,并确定了一个在整个细胞周期中调节β-TrCP活性的关键信号网络。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何实时定量监测活单细胞中β-TrCP的活性,并揭示其在细胞周期和静息-再进入过程中的调控机制?
核心机制
β-TrCP活性主要通过其与核心SCF复合物(Skp1、Cullin1)的组装形成来调控,而非通过β-TrCP蛋白表达水平;受体酪氨酸激酶信号传导抑制β-TrCP与SCF复合物的结合,从而抑制β-TrCP活性。
主要证据
基于非经典降解子CDC25B片段构建的荧光报告基因在HeLa等细胞中特异性响应β-TrCP活性;活细胞成像显示β-TrCP在G0期活性高、G1期中等、S/G2期较低,且与β-TrCP蛋白水平无相关性;免疫共沉淀显示静息细胞和MDA-MB-231细胞中β-TrCP与Skp1/Cullin1结合增加;高通量筛选鉴定RTK抑制剂(如舒尼替尼)可增强β-TrCP活性并增加其与Skp1的结合。
研究意义
提供了一种监测活细胞中β-TrCP活性的方法,并确定了调控β-TrCP活性的关键信号网络,为未来理解β-TrCP生物学功能及开发β-TrCP抑制剂和激活剂提供了平台。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

β-TrCP报告基因的设计与构建

构建能特异性、灵敏地报告β-TrCP活性的基因编码荧光报告基因。

将人CDC25B不同片段(含非经典降解子DDGFVD,aa268–273,排除APC/C降解子和C端催化结构域)与mVenus融合,部分构建体加NLS,克隆至慢病毒载体EF1α启动子下;根据β-TrCP敲低或MLN-4924处理后荧光变化、动态范围、亚细胞定位及对细胞周期影响评分,筛选出NLS-CDC25B(aa198–338)-mVenus作为β-TrCP报告基因。

2

报告基因对β-TrCP响应的验证

验证报告基因的荧光变化是否由β-TrCP活性介导。

在HeLa细胞中使用siRNA敲低β-TrCP1,2、过表达β-TrCP1或ΔF-β-TrCP1,并用MLN-4924、放线菌酮处理,通过活细胞显微成像和定量图像分析测量单细胞报告基因荧光。

3

报告基因与β-TrCP结合及泛素化的生化验证

验证报告基因是否被β-TrCP特异性结合并多聚泛素化。

在HEK-293T细胞中共转染报告基因或突变报告基因(DDGFVD突变为AAGFVA)与β-TrCP、ΔF-β-TrCP、His-泛素,进行免疫共沉淀和Ni-NTA pull-down,免疫印迹检测mVenus和泛素;在稳定表达报告基因的HeLa细胞中敲低β-TrCP1,2或Cullin1后检测多聚泛素化。

4

活细胞中β-TrCP活性的动态监测

研究β-TrCP活性在细胞周期进程及静息-再进入过程中的动态变化。

对表达β-TrCP报告基因和H2B-mTurquoise的HeLa细胞进行延时成像,比较APC/C和SCFSkp2报告基因;在MCF-10A细胞中进行有丝分裂原撤除和刺激实验;使用MLN-4924和放线菌酮处理确定合成和降解速率。

5

单细胞水平β-TrCP活性与蛋白水平相关性分析

探究β-TrCP蛋白水平是否决定其活性。

对表达β-TrCP报告基因的MCF-10A、MCF7、MDA-MB-231细胞先进行活细胞成像测量活性,固定后免疫荧光染色β-TrCP,分析单细胞活性与蛋白水平相关性;并在多种细胞系中比较蛋白水平与活性。

6

β-TrCP与SCF复合物结合的分析

验证β-TrCP活性调控是否发生在SCF复合物组装水平。

在静息与有丝分裂原刺激的MCF-10A细胞以及MCF7和MDA-MB-231细胞中,用抗β-TrCP抗体免疫共沉淀,免疫印迹检测Skp1和Cullin1,评估β-TrCP与SCF核心组分的相对结合量。

7

β-TrCP活性对癌细胞存活和化疗敏感性的影响

评估不同癌细胞对β-TrCP活性的依赖及其功能后果。

在MCF7和MDA-MB-231细胞中敲低β-TrCP1,2,进行克隆形成实验、Annexin V/PI流式凋亡检测、NF-κB靶基因免疫印迹,以及多柔比星剂量反应CCK-8实验。

8

高通量筛选β-TrCP活性调节剂

利用报告基因筛选调节β-TrCP活性小分子并鉴定关键信号通路。

构建NanoLuc发光报告基因稳定表达MDA-MB-231细胞,在1536孔板中筛选MIPE 5.0和NPC 2.0库约5000种化合物,以MLN-4924和放线菌酮为对照,检测发光强度;对候选化合物进行剂量反应验证,并验证舒尼替尼对β-TrCP与Skp1结合及化疗敏感性的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco, Life Technologies--
胎牛血清Gibco--
无酚红DMEM/F12培养基Invitrogen--
马血清----
表皮生长因子----
胰岛素----
氢化可的松----
霍乱毒素----
L-谷氨酰胺Gibco--
链霉素Gibco--
青霉素Gibco--
MLN-4924Calbiochem--
MG132Calbiochem--
苹果酸舒尼替尼----
Dharmafect 1转染试剂Horizon Discovery, Ltd--
On-Target plus对照siRNADharmacon--
β-TrCP1 siRNADharmaconL-003463-00-0005
β-TrCP2 siRNADharmaconL-003490-00-0005
FBXW7 siRNADharmaconL-004264-00-0005
细胞计数试剂盒-8Dojindo--
微孔板读数仪Tecan--
Annexin V FITC/PI死细胞凋亡检测试剂盒Thermo FisherV13242
BD FACSCanto II流式细胞仪BD Biosciences--
NanoGlo荧光素酶检测试剂Promega--
PHERAstar FSX微孔板读数仪BMG Labtech--
1536孔实底组织培养板Greiner--
BioRaptr 2 FRD分液器Let’s Go Robotics--
RLT RNeasy 96 Qiacube HT试剂盒Qiagen74171
柱上DNA消化试剂Qiagen79254
抗β-TrCP抗体--sc366369
Alexa Fluor-647标记二抗----
BCA蛋白定量试剂Thermo Scientific23225
Tris-Glycine电泳缓冲液Bio-Rad--
turbo转膜缓冲液Bio-Rad--
HRP标记抗兔IgG二抗CST7074
HRP标记抗小鼠IgG二抗CST7076
HRP标记小鼠抗山羊IgG二抗SCBTsc2354
SuperSignal West Pico和Femto PLUS化学发光试剂Thermo Scientific--
抗mVenus抗体MyBioSourceMBS448126
抗β-TrCP抗体Abcamab71753
抗β-TrCP抗体SCBTsc390629
抗β-TrCP抗体CST4394
抗β-连环蛋白抗体BD610153
抗Vinculin抗体SigmaV9131
抗FBXW7抗体Abcamab109617
抗FLAG抗体SigmaF3165
抗泛素抗体SCBTsc8017
抗Cullin1抗体SCBTsc17775
抗SKP1抗体SCBTsc5281
抗CDC25B抗体CST9525
抗Emi1抗体SCBTsc365212
抗HSP90抗体CST4877
抗Bcl-XL抗体CST2764
抗Bcl2抗体CST3498
抗p65抗体CST8242
抗IκBα抗体CST4812
抗caspase 3抗体CST14220
抗Cullin1抗体CST4995
抗cleaved PARP抗体CST5625
抗NEDD8抗体CST2745
抗FBXO31抗体BethylA302-047A
抗小鼠IgG抗体SCBTsc2025
抗DYRK1A抗体SCBTsc100376
抗PFKFB3抗体MyBioSourceMBS9604769
抗FBXW5抗体MyBioSourceMBS9611762
抗FBXO25抗体MyBioSourceMBS3017705
抗FBXW11抗体Thermo scientificPA5-109715
抗cMyc抗体Abcamab32072
抗β-肌动蛋白抗体Abcamab6276
Ni-NTA珠----
96孔板Ibidi89626
胶原蛋白----
Nikon Ti2-E倒置显微镜Nikon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
报告基因构建与验证
报告基因片段:CDC25B aa198–338,NLS序列,mVenus标签;突变报告基因DDGFVD突变为AAGFVA;启动子为EF1α;慢病毒载体CSII-pEF1a
阅读提示:Methods中Constructs and stable cell lines;Fig. 1c;Supplementary Fig. 1a–c
活细胞延时成像
细胞接种密度、成像间隔12分钟、物镜10×/20×、曝光时间<150 ms、37°C 5% CO2;HeLa和MCF-10A细胞;H2B-mTurquoise标记细胞核
阅读提示:Methods中Time-lapse microscopy;Fig. 3a–c;Supplementary Fig. 3a–c
抑制剂处理
MLN-4924 3 μM、放线菌酮100 μg/mL、MG132 5 μM、舒尼替尼5 μM的处理时间(如图注6小时或4小时),溶剂DMSO对照
阅读提示:Methods中Inhibitors;Fig. 1f,g;Fig. 2b–f;Fig. 5g–i
siRNA敲低
β-TrCP1,2、FBXW7、Cullin1 siRNA终浓度20 nM(凋亡实验用2 nM),转染试剂Dharmafect 1,转染后18小时开始成像
阅读提示:Methods中siRNA transfection/shRNA;Fig. 1d,e;Fig. 3d;Supplementary Fig. 3d–g
高通量筛选
MDA-MB-231细胞密度2.75×10^5 cells/mL,1536孔板,化合物终浓度13 μM初筛,DMSO终浓度0.46%,处理6小时,NanoGlo检测发光
阅读提示:Methods中High-throughput SCF-β-TrCP-NLuc reporter assay;Fig. 5b–d
免疫共沉淀检测β-TrCP与SCF结合
抗β-TrCP抗体用量2 μg,细胞裂解液成分,蛋白上样量400–800 μg,孵育12–16小时,protein G-agarose beads孵育2小时
阅读提示:Methods中Immunoprecipitation;Fig. 3l;Fig. 4e;Fig. 5i