STING依赖的旁分泌塑造抗有丝分裂治疗中乳腺肿瘤的凋亡启动

STING-dependent paracriny shapes apoptotic priming of breast tumors in response to anti-mitotic treatment.

作者信息Steven Lohard, Nathalie Bourgeois, Laurent Maillet, Fabien Gautier, Aurélie Fétiveau, Hamza Lasla, Frédérique Nguyen, Céline Vuillier, Alison Dumont, Agnès Moreau-Aubry, Morgane Frapin, Laurent David, Delphine Loussouarn, Olivier Kerdraon, Mario Campone, Pascal Jézéquel, Philippe P Juin, Sophie Barillé-Nion
PMID31937780
发布时间2020-01-14
DOI10.1038/s41467-019-13689-y

实验完整度

高

包含细胞系、原代肿瘤器官型培养、PDO、PDX及体内异种移植模型,并通过基因敲除和功能实验验证STING/cGAS/NOXA机制。

主要模型

人乳腺癌细胞系MDA-MB-468、MDA-MB-231、A549、SK-OV-3 患者来源乳腺癌器官型培养及类器官(PDO) 患者来源异种移植瘤(PDX #248、#249、#306) MDA-MB-231原位异种移植瘤模型(免疫缺陷NSG小鼠)

重点核对

细胞系及PDX中STING、cGAS、TNF、LMNB2、NOXA等基因敲除或过表达验证 紫杉醇处理浓度3.5 nM(细胞系)或700 nM(肿瘤切片),处理24 h或48 h 条件培养基制备:供体细胞1×10^6,紫杉醇处理24 h后洗涤,无血清培养48 h BH3模拟物WEHI-539、ABT-737、ABT-199、S63845浓度均为1 μM 体内紫杉醇10 mg/kg、ABT-263 100 mg/kg腹腔注射,diABZI 1.5 mg/kg静脉注射

摘要

抗有丝分裂化疗一个有趣但尚未被表征的作用是,它集体性地使癌细胞对凋亡性线粒体外膜透化(MOMP)敏感,同时仅影响增殖中的细胞亚群。在这里,我们展示,在受到抗有丝分裂治疗打击、积累微核并在内在凋亡压力下维持线粒体完整性的癌细胞中,cGAS/STING的激活诱导了一种促凋亡分泌表型。对紫杉醇敏感的原代人类乳腺肿瘤的器官型培养物和患者来源异种移植瘤表现出典型的I型IFN和TNFα暴露基因表达特征。这些由cGAS/STING激活诱导的细胞因子触发邻近细胞中NOXA的表达,并使它们对BCL-xL抑制急性敏感。cGAS/STING依赖的凋亡效应是紫杉醇体内反应所必需的,并且它们被序贯而非同步给予BH3模拟物所放大。因此,抗有丝分裂药物通过胞质DNA传感通路依赖的细胞外信号,在异质性敏感的癌细胞间传播凋亡启动,可通过延迟MOMP靶向加以利用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
抗有丝分裂治疗如何仅在影响增殖细胞亚群的同时,集体性地增强乳腺癌细胞群体的凋亡启动?cGAS/STING通路在其中起什么作用?
核心机制
紫杉醇诱导增殖癌细胞产生微核,微核DNA激活cGAS/STING通路,诱导I型IFN和TNFα分泌;这些细胞因子通过旁分泌作用于邻近细胞,上调NOXA并降低MCL-1,从而增强BCL-xL依赖的凋亡启动。
主要证据
在乳腺癌细胞系、患者来源器官型培养、PDO和PDX中,STING或cGAS敲除、LMNB2过表达、TNF敲除或IFNAR1敲除均减弱紫杉醇诱导的旁分泌凋亡启动;NOXA敲除阻断该效应;体内STING、cGAS或TNF敲除削弱紫杉醇抗肿瘤疗效,序贯给予BH3模拟物ABT-263增强疗效。
研究意义
揭示抗有丝分裂药物通过胞质DNA传感通路依赖的细胞外信号在异质性癌细胞间传播凋亡启动,为序贯联合BH3模拟物提高化疗疗效提供机制依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

紫杉醇诱导cGAS/STING激活

验证抗有丝分裂治疗是否通过微核激活cGAS/STING通路

乳腺癌细胞系经紫杉醇处理,检测STING下游STAT1和NF-κB磷酸化;用CRISPR敲除STING或cGAS,或用LMNB2过表达抑制微核DNA暴露;免疫荧光检测cGAS阳性微核;PDX体内紫杉醇处理后IHC检测cGAS阳性微核。

2

条件培养基诱导旁分泌凋亡启动

检测紫杉醇处理细胞的分泌产物是否增强未处理细胞的凋亡启动

供体细胞紫杉醇处理24 h后洗涤,无血清培养48 h收集条件培养基(CM),加入受体细胞48 h,联合BH3模拟物WEHI-539(BCL-xL)、ABT-199(BCL-2)或S63845(MCL-1),Annexin-V检测凋亡。

3

STING/cGAS依赖的旁分泌效应验证

验证供体细胞中STING/cGAS及微核DNA暴露对旁分泌凋亡启动的必要性

使用STING敲除、cGAS敲除或LMNB2过表达的供体细胞制备CM,检测对受体细胞BCL-xL凋亡启动的影响;同时检测受体细胞STING敲除的影响。

4

患者来源样本中验证紫杉醇与BH3模拟物协同

在临床相关模型中验证STING依赖的旁分泌效应对BH3模拟物敏感性的影响

PDX来源类器官和患者来源类器官(PDO)经紫杉醇处理4天,后2天加入ABT-737或ABT-199;部分PDO用cGAMP或diABZI处理联合ABT-737;检测细胞活力。

5

I型IFN和TNFα信号通路验证

确定紫杉醇诱导的旁分泌效应是否由I型IFN和TNFα介导

检测紫杉醇处理后细胞和PDX中IFNB1和TNF mRNA表达;使用IFNAR1敲除受体细胞、TNF敲除或IκBαSR供体细胞、抗TNFα中和抗体;重组IFNα和TNFα处理细胞。

6

NOXA介导凋亡启动的机制验证

验证NOXA在旁分泌凋亡启动中的关键作用及其上游调控

检测CM或重组细胞因子处理后受体细胞中BCL-2家族蛋白表达;敲除NOXA、BIM或BID;ChIP检测IRF3在PMAIP1启动子的招募;RNAi敲低IRF3。

7

体内验证STING/cGAS/TNF对紫杉醇疗效的必要性

确定旁分泌信号在体内紫杉醇抗肿瘤疗效中的作用

将对照、STING敲除、cGAS敲除或TNF敲除的MDA-MB-231细胞原位接种NSG小鼠,成瘤后给予紫杉醇,监测肿瘤体积;检测肿瘤中STAT1/NF-κB和TNF/IFNB1/NOXA表达。

8

序贯与同步BH3模拟物给药方案比较

比较同步与序贯联合BH3模拟物对紫杉醇疗效的放大作用

在MDA-MB-231原位异种移植瘤模型中,比较紫杉醇与ABT-263同步或序贯给药的肿瘤生长抑制效果;并测试STING激动剂diABZI联合Navitoclax的疗效。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Dulbecco改良Eagle培养基Gibco--
胎牛血清Eurobio--
青霉素/链霉素Gibco--
谷氨酰胺Gibco--
WEHI-539ApexBio--
ABT-737Selleckchem--
ABT-199Selleckchem--
S63845Selleckchem--
紫杉醇Sigma-Aldrich--
Q-VD-OPhR&D Systems--
莫能霉素Biolegend--
肿瘤坏死因子αBiolegend--
干扰素αSigma-Aldrich--
依托泊苷Sigma-Aldrich--
AZD1152Sigma-Aldrich--
环鸟苷酸-腺苷酸Sigma-Aldrich--
diABZI STING激动剂Clinisciences--
肌动蛋白抗体MilliporeMAB1501
BIM抗体MilliporeAB17003
STAT1抗体Cell Signaling Technology9176
磷酸化STAT1抗体Cell Signaling Technology9167
p65抗体Cell Signaling Technology8242
磷酸化p65抗体Cell Signaling Technology3033
cGAS抗体Cell Signaling Technology15102
IRF3抗体Cell Signaling Technology11904
STING抗体Cell Signaling Technology13647
TNFα抗体Cell Signaling Technology3707
cleaved Caspase-3抗体Cell Signaling Technology9662
PUMA抗体Cell Signaling Technology4976
BID抗体Cell Signaling Technology2002
BAK抗体Cell Signaling Technology3814
IκBα抗体Cell Signaling Technology4814
BAX抗体DakoA3533
BCL-2抗体DakoM0887
BCL-xL抗体Abcamab32370
NOXA抗体Abcamab13654
MCL-1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-819
Clarity Western ECL化学发光试剂盒Bio-Rad--
cGAS抗体Cell Signaling Technology--
含DAPI的抗淬灭封片剂Invitrogen--
抗ER兔单克隆抗体Abcam--
抗PR兔单克隆抗体Ventana Medical Systems--
抗cGAS兔单克隆抗体Cell Signaling Technology--
Ventana iView DAB免疫组化检测试剂盒Ventana Medical Systems--
多克隆山羊抗兔免疫球蛋白二抗DakoE0433
活性caspase-3抗体Ozyme--
Ki-67抗体Roche Diagnostics--
Annexin V-FITCMiltenyi Biotec--
Annexin-V-APCBD Pharmingen--
碘化丙啶----
RNA提取试剂盒Macherey Nagel--
Maxima第一链cDNA合成试剂盒Thermo Scientific--
qPCR预混液Eurobio--
基底膜提取物Biotechne--
CellTiter-Glo 3D细胞活力检测试剂Promega--
基质胶BD Biosciences--
ABT-263Selleckchem--
diABZI STING激动剂-1Clinisciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
紫杉醇诱导cGAS/STING激活
紫杉醇浓度3.5 nM、处理时间24 h;STING/cGAS敲除或LMNB2过表达验证;微核检测时间点24 h
阅读提示:Methods细胞系和试剂部分及Fig. 1a–e图注
条件培养基诱导旁分泌凋亡启动
供体细胞数量1×10^6、紫杉醇处理24 h、洗涤3次、无血清培养48 h;CM孵育受体细胞48 h;BH3模拟物浓度1 μM
阅读提示:Methods中条件培养基制备段落及Fig. 1f–i图注
患者来源样本外植体培养
肿瘤切片厚度250 μm;紫杉醇700 nM处理48 h;ABT-737 1 μM;活性caspase-3 IHC检测
阅读提示:Methods临床前乳腺癌外植体实验部分及Fig. 2a、b图注
体内紫杉醇疗效及STING依赖性
细胞接种量4×10^6;紫杉醇10 mg/kg腹腔注射,D0和D9各一次;每组n=5只小鼠;肿瘤体积测量频率
阅读提示:Methods体内实验部分及Fig. 7a–d图注
序贯与同步BH3模拟物给药
紫杉醇10 mg/kg和ABT-263 100 mg/kg腹腔注射;给药时序(同步 vs 序贯);每组n=6只小鼠;diABZI 1.5 mg/kg静脉注射,2次/周
阅读提示:Methods体内实验部分及Fig. 7e、k图注