临床样本中FGF2表达分析
比较哮喘患者和正常人肺组织中FGF2的表达水平和定位。
收集哮喘和非哮喘患者的肺组织样本,通过免疫荧光染色检测FGF2在支气管上皮和肺泡区域的表达。
FGF2 is overexpressed in asthma and promotes airway inflammation through the FGFR/MAPK/NF-κB pathway in airway epithelial cells
包含临床样本分析、HDM慢性哮喘小鼠模型、细胞实验,并涵盖表达、功能验证和机制通路验证。
临床哮喘患者肺组织 HDM诱导的慢性哮喘小鼠模型 A549气道上皮细胞系
FGF2在哮喘患者及模型中的表达定位 rm-FGF2鼻内给药对炎症细胞浸润的影响 rh-FGF2对IL-1β诱导的IL-6/IL-8分泌的增强作用 FGFR抑制剂PD173074对信号通路和细胞因子的阻断
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较哮喘患者和正常人肺组织中FGF2的表达水平和定位。
收集哮喘和非哮喘患者的肺组织样本,通过免疫荧光染色检测FGF2在支气管上皮和肺泡区域的表达。
建立慢性哮喘小鼠模型,并验证其气道炎症和免疫特征。
用HDM致敏并慢性激发BALB/c小鼠,通过H&E染色评估炎症浸润,ELISA检测IgE,RT-qPCR检测细胞因子转录。
验证FGF2表达上调及其与IgE的相关性,并确定细胞来源。
Western blot检测FGF2蛋白,RT-qPCR检测mRNA,免疫荧光共染确定表达细胞类型和位置。
检测布地奈德是否抑制HDM诱导的急性模型中FGF2的上调。
在急性哮喘模型中,用布地奈德处理,Western blot检测FGF2蛋白丰度。
确定FGF2对气道炎症和中性粒细胞招募的影响。
在慢性模型中,每次HDM激发前30分钟鼻内给予rm-FGF2,通过H&E和Ly-6G/C免疫荧光评估炎症浸润和中性粒细胞数量。
探讨过敏原HDM是否上调气道上皮细胞中FGF2的表达。
A549细胞经HDM刺激,在不同时间点用Western blot检测FGF2蛋白丰度。
确定FGF2是否增强IL-1β诱导的A549细胞中IL-6和IL-8的产生。
A549细胞用rh-FGF2预处理,随后与IL-1β共刺激,收集上清用ELISA检测IL-6/IL-8,并用RT-qPCR检测mRNA。
确定FGF2增强炎症细胞因子产生的信号通路依赖。
在平行实验中,用PD173074抑制FGFR,然后进行rh-FGF2和IL-1β刺激,用Western blot检测MAPK和NF-κB磷酸化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 屋尘螨提取物 | Greer Laboratories | XPB820D3A25 |
| 氢氧化铝 | Sigma Aldrich | A1577 | |
| 药物处理 | 重组小鼠FGF2 | NovoProtein | C044 |
| 布地奈德 | MedChemExpress | Hy-13580 | |
| 动物麻醉 | 三溴乙醇 | Sigma Aldrich | T48402 |
| 样本保存 | RNA保存液 | Sigma Aldrich | R0901 |
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Gibco, Thermo Fisher Scientific | -- |
| 药物处理 | 重组人FGF2 | PeproTech | AF-100-18B |
| 人白细胞介素-1β | PeproTech | 200-01B | |
| 机制验证 | PD173074 | Selleckchem | S1264 |
| RNA提取 | RNeasy RNA提取试剂盒 | Qiagen | 74106 |
| TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | 15596018 | |
| RT-qPCR | 逆转录试剂盒 | NovoProtein | E047-01A |
| SYBR Green荧光定量PCR试剂盒 | NovoProtein | E096-01B | |
| CFX实时PCR检测系统 | Bio-Rad | CFX96 | |
| ELISA | BD OptEIA™ ELISA试剂盒(小鼠总IgE) | BD Biosciences | 555248 |
| 小鼠抗HDM IgE ELISA试剂盒 | Chondrex | 3037 | |
| 人IL-6 ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 人IL-8 ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 免疫荧光 | Image iT-FX信号增强剂 | Thermo Fisher Scientific | I36933 |
| 山羊血清 | Phygene | PH0424 | |
| 牛血清白蛋白 | Neobioscience | NBS-BSA | |
| 抗FGF2抗体(人) | Abmart | TD6038 | |
| 抗pro-SPC抗体 | Santa Cruz | sc-518029 | |
| 抗FGF2抗体(小鼠) | Santa Cruz | sc-74412 | |
| 抗Clara细胞分泌蛋白抗体 | Sigma | 07623 | |
| 抗pro-SPC抗体(小鼠) | Millipore | 3537117 | |
| 抗Ly-6G/C抗体 | Santa Cruz | sc-59338 | |
| Prolong Gold抗淬灭封片剂 | Phygene | PH0429 | |
| 免疫荧光成像 | 激光共聚焦显微镜 | Zeiss | -- |
| 荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | 89900 |
| 蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂 | Beyotime | P1045 | |
| BCA蛋白浓度测定试剂盒 | Phygene | PH0326 | |
| 抗FGF2抗体(小鼠) | Santa Cruz | sc-74412 | |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 5174 | |
| 抗FGF2抗体(人) | Cell Signaling Technology | 20102 | |
| 抗磷酸化p38MAPK抗体 | Cell Signaling Technology | 4511 | |
| 抗磷酸化ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4370 | |
| 抗p38MAPK抗体 | Cell Signaling Technology | 8690 | |
| 抗ERK1/2抗体 | Cell Signaling Technology | 4695 | |
| 抗磷酸化NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| 抗磷酸化IκBα抗体 | Cell Signaling Technology | 2859 | |
| 抗NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| HRP标记二抗 | -- | -- | |
| 增强化学发光试剂 | Bio-Rad | 1705060 | |
| 数据分析 | ImageJ | NIH | -- |
| SPSS软件 | SPSS, Inc. | 17.0 | |
| GraphPad Prism | GraphPad Software Inc. | 9.2.0 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本FGF2表达分析 | 样本量(n=5)、样本来源(肺叶切除或活检)、非肿瘤区域距离肿瘤至少5cm;FGF2抗体浓度与品牌 阅读提示:Methods: Subjects; 图2图注 |
| HDM慢性哮喘模型 | 小鼠品系、性别、周龄、各组数量;HDM剂量和给药途径(20μg i.p.致敏,10μg i.n.激发);氢氧化铝剂量;激发频率和持续时间;采样时间点 阅读提示:Methods: HDM-induced mouse asthma model; 图1 |
| rm-FGF2给药 | rm-FGF2剂量(100 ng/30μl)、给药途径(i.n.)、给药时间(HDM前30分钟)、频率(每周3次) 阅读提示:Methods: HDM-induced mouse asthma model; 图5 |
| A549细胞实验 | 细胞系来源(ATCC)、培养条件(DMEM+10%FBS);HDM浓度(10 μg/ml)、刺激时间点;rh-FGF2浓度(5或100 ng/ml)、预处理时间(1小时);IL-1β浓度(1 ng/ml);检测时间点(48小时收集上清) 阅读提示:Methods: Cell culture; 图6 |
| 信号通路机制验证 | PD173074浓度(50 nM)、预处理时间(1小时);rh-FGF2浓度(5 ng/ml);IL-1β浓度(1 ng/ml);检测时间点(15分钟) 阅读提示:Methods: Cell culture; 图6d |