益气导滞方通过靶向TLR4/NF-κB/MAPK信号通路改善术后肠梗阻的机制研究

Mechanism Study of Yi-Qi-Dao-Zhi Formula in Improving Postoperative Ileus by Targeting the TLR4/NF-κB/MAPK Signaling Pathways.

作者信息Jing Yu, Xuan Zhao, Liuchuang Zhang, Yanlin Chen, Tianle Zhang, Ye Wang, Chen Yi, Huafeng Pan, Haifeng Wang, Miaomiao Ge, Zhiwei Jiang, Gang Wang
PMID41789416
发布时间2026-02-28
DOI10.2147/JIR.S589449

实验完整度

包含体内小鼠模型(POI模型、炭墨推进、HE、免疫荧光、免疫组化、Western blot、RT-qPCR、ELISA)和体外细胞实验(LPS诱导RAW264.7、CCK-8、流式、转录组、Western blot),并进行了功能验证和机制验证。

主要模型

POI小鼠模型(C57小鼠,手术诱导) RAW264.7小鼠巨噬细胞系(LPS诱导M1型炎症模型)

重点核对

YQDZ剂量:体内低剂量7.965 g/kg、高剂量15.93 g/kg,体外浓度200 μg/mL LPS刺激浓度和时长:1 μg/mL,体内模型1小时,体外6小时 POI模型建立:腹部切口,小肠操作,盐水洗涤三周期 检测指标:肠道推进率、炎症因子(TNF-α, IL-1β, IL-6)水平、巨噬细胞标志物(F4/80, CD86)表达 信号通路:TLR4/NF-κB/MAPK相关蛋白(p-p65, p-p38, p-ERK, p-JNK)的磷酸化水平

摘要

目的:术后肠梗阻(POI)常妨碍手术后的恢复。虽然益气导滞方(YQDZ)在临床治疗早发性卵巢功能不全方面已证明其价值,但其确切的作用机制仍未被充分了解。方法:本研究采用超高效液相色谱-四极杆飞行时间质谱(UPLC-Q-TOF-MS/MS)来确定YQDZ中的关键生物活性化合物。对于体内实验,通过手术干预建立POI小鼠模型,并通过炭墨实验评估胃肠传输功能。使用HE染色检查肠道组织病理学。通过一系列先进的实验技术,包括免疫荧光染色、免疫组织化学分析、Western blot、实时定量PCR和ELISA检测,全面评估YQDZ对POI的治疗效果。体外实验通过LPS诱导小鼠单核巨噬细胞RAW264.7细胞建立M1型炎症模型。其他评估包括CCK-8检测、流式细胞术、转录组分析、实时PCR和蛋白质水平检测,旨在探究YQDZ的作用方式。结果:YQDZ通过TLR4/NF-κB/MAPK信号通路引导M1巨噬细胞分化。该作用有效降低了包括TNF-α、IL-1β和IL-6在内的关键炎症介质的水平。因此,它作为术后肠梗阻小鼠肠道炎症的治疗剂,帮助恢复其胃肠功能。结论:YQDZ治疗POI的方法可能与调节TLR4/NF-κB/MAPK信号通路以及抑制巨噬细胞极化有关。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
YQDZ是否通过调节TLR4/NF-κB/MAPK信号通路和巨噬细胞极化来改善术后肠梗阻?
核心机制
YQDZ通过抑制TLR4/NF-κB/MAPK信号通路的激活,从而抑制M1巨噬细胞极化,减少促炎细胞因子(TNF-α、IL-1β、IL-6)的产生,减轻肠道炎症并恢复胃肠运动功能。
主要证据
在POI小鼠模型中,YQDZ显著提高肠道推进率,减轻肠道组织病理损伤,降低炎症因子表达,并抑制巨噬细胞浸润;在LPS诱导的RAW264.7细胞中,YQDZ抑制M1极化标志物CD86和iNOS表达,降低炎症因子分泌,并抑制TLR4/NF-κB/MAPK通路蛋白磷酸化。
研究意义
研究为YQDZ在术后胃肠功能障碍中的临床应用提供了机制依据,并突显了中药复方多靶点治疗的特点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

YQDZ成分鉴定

鉴定YQDZ中的主要生物活性成分

采用UPLC-Q-TOF-MS/MS对YQDZ冻干粉进行正负离子模式扫描,鉴定化学成分。

2

POI小鼠模型建立与药效评估

建立POI小鼠模型,评估YQDZ对肠道运动功能和炎症的影响

通过手术建立POI小鼠模型,分为Sham、POI、YQDZ低剂量、YQDZ高剂量和莫沙必利组。术后给药,通过炭墨推进实验评估肠道运动,HE染色观察组织病理,RT-qPCR和ELISA检测炎症因子。

3

巨噬细胞浸润检测

评估YQDZ对POI小鼠肠道巨噬细胞浸润的影响

通过免疫荧光染色检测肠道组织中F4/80阳性巨噬细胞。

4

体外RAW264.7细胞M1极化模型

研究YQDZ对LPS诱导的RAW264.7细胞M1极化和炎症的影响

用LPS诱导RAW264.7细胞M1型极化,给予YQDZ处理,检测细胞活力、CD86表达、炎症因子分泌和mRNA表达。

5

转录组分析

探究YQDZ对LPS诱导的巨噬细胞基因表达谱的影响

对Control、LPS和YQDZ处理组细胞进行RNA-seq,分析差异表达基因、KEGG通路富集和GSEA。

6

通路蛋白验证

验证YQDZ对TLR4/NF-κB/MAPK通路蛋白表达的影响

通过Western blot和免疫组化检测体内外样本中TLR4、p-p65、p-p38、p-ERK、p-JNK及iNOS的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
p-ERK抗体Cell Signaling Technology#4370
ERK抗体Cell Signaling Technology#4695
p-p38抗体Cell Signaling Technology#4511
p38抗体Cell Signaling Technology#8690
p-p65抗体Cell Signaling Technology#3033
p65抗体Cell Signaling Technology#8242
p-JNK抗体AbmartT40074
iNOS抗体AbmartT55993
TLR4抗体Proteintech Group, Inc.66,350-1-Ig
JNK抗体Proteintech Group, Inc.24164-1-AP
GAPDH抗体Proteintech Group, Inc.60004-1-Ig
小鼠二抗Proteintech Group, Inc.RGAM001
兔二抗Proteintech Group, Inc.RGAR001
IL-1β ELISA试剂盒Epizyme Biomedical Technology Co.,Ltd.--
TNF-α ELISA试剂盒Epizyme Biomedical Technology Co.,Ltd.--
IL-6 ELISA试剂盒Elabscience Biotechnology Co.,Ltd.--
FITC-CD86抗体BD Biosciences--
Vanquish超高效液相色谱系统Thermo Fisher Scientific--
Kinetex C18色谱柱Phenomenex--
Q Exactive HFX质谱仪Thermo Fisher Scientific--
RAW 264.7细胞系Stem Cell Bank of the Chinese Academy of Sciences--
脂多糖----
益气导滞方提取物Jiangsu Province Hospital of Chinese Medicine--
莫沙必利----
异氟烷----
TRIzol试剂----
FastPure细胞/组织总RNA提取试剂盒Vazyme--
BCA蛋白定量试剂盒Epizyme--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
POI模型建立
小鼠品系(C57)、性别(雄性)、年龄(6-8周)、体重(20-22g)、禁食时间(24小时)、手术步骤(腹部切口、小肠操作、盐水洗涤三次各4分钟)
阅读提示:Methods: Animals and Models
给药方案
YQDZ剂量(低7.965 g/kg,高15.93 g/kg)、给药方式(灌胃)、给药频率(每12小时)、给药起始时间(术后1小时)
阅读提示:Methods: Animals and Models
肠道运动功能评估
炭墨浓度(5%)、活性炭与阿拉伯胶比例(0.5g:0.25g在10mL生理盐水中)、给药体积(0.1mL/10g)、检测时间(术后48小时,灌胃后15分钟)
阅读提示:Methods: Evaluation of the Intestinal Motility
体外细胞实验
RAW264.7细胞培养条件(10% FBS, 1%青霉素-链霉素,37°C, 5% CO2)、LPS浓度(1 μg/mL)和刺激时间(6小时,用于YQDZ治疗组)、YQDZ浓度(200 μg/mL)、处理时间(18小时)
阅读提示:Methods: Cell Culture and Cell Viability Assay, Cell Grouping
流式细胞术检测M1极化
固定液(4%多聚甲醛)、透化液(0.3% Triton X-100)、封闭液(1% BSA)、CD86抗体用量(0.25 μg)、孵育温度和时间(40°C, 30分钟)
阅读提示:Methods: Flow Cytometry Analysis