鉴定NCAPG的下游转录因子
通过整合ATAC-Seq和RNA-Seq数据,确定NCAPG敲低后染色质可及性改变的转录因子。
对HEC-1-A细胞进行NCAPG敲低(KD-NCAPG)和对照(KD-NC),进行ATAC-Seq(每个样本两个生物学重复)和既往RNA-Seq分析。使用HOMER进行基序注释,TRRUST预测上游转录因子,KEGG富集分析。
NCAPG promotes the malignant progression of endometrioid cancer through LEF1/SEMA7A/PI3K-AKT.
包含细胞实验(增殖、迁移、侵袭、细胞周期)、机制验证(ATAC-Seq、ChIP、CoIP、荧光素酶)、体内异种移植模型及临床样本相关性分析。
HEC-1-A细胞系 HEC-1-B细胞系 Ishikawa细胞系 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型
NCAPG敲低和过表达的稳定细胞系构建(慢病毒转染,嘌呤霉素筛选) ATAC-Seq和RNA-Seq的整合分析条件 LEF1与SEMA7A启动子结合的ChIP-qPCR和荧光素酶报告基因验证 SEMA7A与PI3K p85亚基的CoIP和免疫荧光共定位 裸鼠异种移植瘤实验中NCAPG敲低和LEF1过表达对肿瘤生长的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过整合ATAC-Seq和RNA-Seq数据,确定NCAPG敲低后染色质可及性改变的转录因子。
对HEC-1-A细胞进行NCAPG敲低(KD-NCAPG)和对照(KD-NC),进行ATAC-Seq(每个样本两个生物学重复)和既往RNA-Seq分析。使用HOMER进行基序注释,TRRUST预测上游转录因子,KEGG富集分析。
验证LEF1在NCAPG调控的细胞增殖、迁移、侵袭和细胞周期中的作用。
在NCAPG敲低细胞中过表达LEF1(OE-LEF1),检测LEF1 mRNA和蛋白水平(核和质),并用CCK8、Transwell和流式细胞术检测细胞功能。
验证LEF1是否直接结合SEMA7A启动子并激活其转录。
利用JASPAR预测结合位点,ChIP-qPCR检测LEF1与SEMA7A启动子结合;构建野生型和突变型SEMA7A启动子荧光素酶报告载体,在293T细胞中进行双荧光素酶实验。此外,在NCAPG敲低细胞中过表达LEF1观察SEMA7A表达变化,以及NCAPG过表达细胞中敲低SEMA7A观察功能逆转。
验证SEMA7A与PI3K调节亚基p85的相互作用及其对PI3K-AKT通路的激活。
在HEC-1-A细胞中过表达SEMA7A,进行CoIP验证SEMA7A与p85结合;免疫荧光检测共定位;Western blot检测SEMA7A敲低或过表达后p-PI3K、p-AKT等表达变化。
验证LEF1过表达能否逆转NCAPG敲低引起的体内肿瘤生长抑制。
将HEC-1-A细胞(KD-NC、KD-NCAPG、KD-NCAPG+OE-LEF1)皮下注射到裸鼠,21天后处死,测量肿瘤体积和重量,IHC检测NCAPG、Ki-67、LEF1、SEMA7A、p-PI3K和p-AKT表达。
分析LEF1和SEMA7A表达与EC患者临床病理特征的相关性及与NCAPG表达的一致性。
对84例子宫内膜样癌患者组织进行IHC染色,评估LEF1、SEMA7A表达水平,使用卡方检验和McNemar检验分析相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| IHC染色 | 抗NCAPG抗体 | Proteintech | 24563-1-AP |
| 抗LEF1抗体 | HUABIO | HA500273 | |
| 抗SEMA7A抗体 | HUABIO | ER1905-75 | |
| 全景扫描仪 | 3DHISTECH | -- | |
| 细胞培养与转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Takara | -- |
| HiScript II Q逆转录预混液 | Vazyme Biotech | -- | |
| SYBR qPCR预混液 | Vazyme Biotech | -- | |
| 罗氏Light Cycler 96实时荧光定量PCR仪 | Roche Diagnostics | -- | |
| Western blotting | 细胞蛋白提取试剂盒 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Pierce | -- | |
| 抗NCAPG抗体 | Abcam | ab226805 | |
| 抗LEF1抗体 | Proteintech | 14927-1-AP | |
| 抗SEMA7A抗体 | Proteintech | 18070-1-AP | |
| 抗CDK6抗体 | Proteintech | 14052-1-AP | |
| 抗Cyclin E1抗体 | Proteintech | 11554-1-AP | |
| 抗Cyclin D1抗体 | Proteintech | 26939-1-AP | |
| 抗磷酸化PI3激酶抗体 | Cell Signaling Technology | 4228T | |
| 抗PI3激酶抗体 | Proteintech | 67071-1-Ig | |
| 抗磷酸化AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060T | |
| 抗AKT抗体 | Proteintech | 10176-2-AP | |
| 抗β-微管蛋白抗体 | Proteintech | 10094-1-AP | |
| 抗PCNA抗体 | Proteintech | 10205-2-AP | |
| 抗ATP1A1抗体 | Proteintech | 14418-1-AP | |
| ChemiScope6100化学发光检测系统 | -- | -- | |
| IP实验 | 裂解缓冲液 | abiowell | AWB0144 |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | -- | -- | |
| 细胞增殖实验 | CCK8检测试剂盒 | Abmole Bioscience | -- |
| ATAC-seq | ATAC-Seq文库制备试剂盒 | ApexBio | -- |
| 细胞周期分析 | CytoFLEX流式细胞仪 | BECKMAN COULTER | A00-1-1102 |
| ChIP实验 | Pierce琼脂糖ChIP试剂盒 | Abcam | ab500 |
| 荧光素酶实验 | pGL3-Basic荧光素酶报告载体 | HonorGene | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| 免疫荧光 | 荧光显微镜 | Motic | BA210T |
| 动物实验 | BALB/c裸鼠 | Weitong Lihua Limited Company | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与转染 | 细胞系来源(Procell),NCAPG敲低和过表达慢病毒(Genechem),LEF1/SEMA7A shRNA(HonorGene),转染试剂(Lipofectamine 2000),筛选浓度(嘌呤霉素2.5 µg/µl,7天) 阅读提示:参见Materials and Methods中的'Cell culture and transfection' |
| ATAC-seq与RNA-seq分析 | NCAPG敲低细胞(KD-NCAPG)和对照(KD-NC),每组两个生物学重复,参考基因组hg38,HOMER基序分析,KEGG富集分析 阅读提示:参见Materials and Methods中的'ATAC-seq and RNA-seq'及Figure 1 |
| ChIP-qPCR与荧光素酶实验 | LEF1结合SEMA7A启动子位点,ChIP试剂盒(ab500;Abcam),IgG阴性对照,引物序列,293T细胞双荧光素酶实验,突变型启动子 阅读提示:参见Materials and Methods中的'Chromatin immunoprecipitation-qPCR'和'Luciferase assay',以及Figure 3 |
| SEMA7A与p85相互作用验证 | CoIP使用SEMA7A抗体和p85抗体,免疫荧光共定位,SEMA7A敲低或过表达后Western blot检测p-PI3K/p-AKT 阅读提示:参见Materials and Methods中的'Western blotting and CoIP'和'Immunofluorescence',以及Figure 4 |
| 裸鼠异种移植瘤实验 | 动物:雌性BALB/c裸鼠(4-5周龄),细胞数(2×10^6细胞/100 µL PBS),注射部位(右腋窝),肿瘤体积公式,观察时间(21天) 阅读提示:参见Materials and Methods中的'Xenografts in nude mice'和Figure 5 |