KDM2B通过Brg1介导的染色质重塑促进IL-6产生和炎症反应

KDM2B promotes IL-6 production and inflammatory responses through Brg1-mediated chromatin remodeling

作者信息Qingqing Zhou, Yunkai Zhang, Bo Wang, Wenhui Zhou, Yong Bi, Wanwan Huai, Xi Chen, Yihan Chen, Zhongmin Liu, Xingguang Liu, Zhenzhen Zhan
PMID31197256
发布时间2020-08
DOI10.1038/s41423-019-0251-z

实验完整度

包含KDM2B敲除小鼠模型、原代巨噬细胞和树突状细胞、体内内毒素休克和结肠炎模型、体外siRNA敲低及过表达回补,以及ChIP、DNase I、FAIRE、LC-MS等机制验证。

主要模型

小鼠原代腹腔巨噬细胞 骨髓来源巨噬细胞(BMDM) 骨髓来源树突状细胞(BMDC) Kdm2b基因敲除小鼠内毒素休克和结肠炎模型

重点核对

KDM2B在巨噬细胞和树突状细胞中对IL-6而非TNF-α、IFN-β等的诱导是必需的 KDM2B选择性结合Il6启动子但不改变H3K4me3和H3K36me2水平 KDM2B通过其LRR结构域与Brg1相互作用 KDM2B缺陷减少Brg1和RNA Pol II在Il6启动子的招募 Brg1敲低降低Il6启动子染色质可及性并抑制IL-6产生

摘要

IL-6在感染和炎症性疾病中发挥重要且多效性的作用,其产生需要被严格调控。然而,Il6基因转录的表观遗传机制尚未被完全阐明。在此,我们报道了赖氨酸特异性去甲基化酶2b(KDM2B),它能去甲基化H3K4me3和H3K36me2,在巨噬细胞和树突状细胞中对于IL-6的诱导是必需的,但对TNF-α、IL-1和IFN-β并非必需。与野生型小鼠相比,KDM2B缺陷小鼠对内毒素休克和结肠炎更具抵抗力,炎症病理表型较轻,血清中IL-6产生减少。KDM2B选择性结合Il6启动子,但不改变组蛋白去甲基化;相反,KDM2B与Brahma相关基因1(Brg1)相互作用,后者是SWI/SNF染色质重塑复合物的核心ATP酶亚基,以促进Il6启动子的染色质可及性。此外,KDM2B直接招募RNA聚合酶II,进一步启动和促进Il6转录。因此,我们的发现确定了KDM2B在基因特异性转录起始和增强Il6中的一种新的非经典功能,该功能不依赖于其去甲基化酶活性,并为炎症免疫反应的特异性表观遗传修饰机制增添了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
KDM2B是否以及如何通过表观遗传机制调控炎症反应中的IL-6产生?
核心机制
KDM2B不依赖其去甲基化酶活性,通过其LRR结构域与Brg1相互作用,将Brg1招募到Il6启动子,促进染色质开放,并进一步招募RNA聚合酶II,从而增强Il6转录。
主要证据
KDM2B缺陷小鼠在LPS或poly(I:C)刺激下血清IL-6减少,且对内毒素休克和DSS诱导的结肠炎更具抵抗力;在巨噬细胞和树突状细胞中,KDM2B缺乏或敲低选择性地降低IL-6产生;ChIP、Re-ChIP、DNase I敏感性和FAIRE实验证明KDM2B与Brg1结合并促进Il6启动子染色质可及性;过表达KDM2B但非ΔLRR突变体可回补IL-6产生。
研究意义
该研究确定了KDM2B作为炎症的正调控因子,为IL-6的基因特异性表观遗传调控提供了新机制,提示选择性KDM2B抑制剂可能有效抑制炎症组织中的IL-6产生。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内炎症模型验证KDM2B对IL-6产生的影响

评估KDM2B在全身炎症反应和结肠炎中对IL-6产生及组织损伤的作用

利用CRISPR-Cas9生成的Kdm2b基因敲除小鼠,腹腔注射LPS或poly(I:C)建立内毒素休克模型,或给予3% DSS诱导结肠炎,检测血清细胞因子水平,并通过HE染色评估肺和结肠组织病理变化。

2

体外细胞模型验证KDM2B对IL-6产生的选择性

确定KDM2B是否选择性调控巨噬细胞和树突状细胞中IL-6的表达

分离Kdm2b+/+和Kdm2b-/-小鼠的腹腔巨噬细胞、BMDM和BMDC,用LPS、poly(I:C)或病毒感染刺激,检测Il6 mRNA和IL-6蛋白水平;同时用siRNA敲低KDM2B,验证其对IL-6产生的必要性。

3

KDM2B对Il6启动子结合及组蛋白修饰的影响

验证KDM2B是否选择性结合Il6启动子并改变其组蛋白甲基化状态

通过ChIP-qPCR检测KDM2B在Il6、Tnf和Ifnb1启动子的占有率,并检测H3K4me3和H3K36me2的水平;利用Il6启动子荧光素酶报告基因实验检测KDM2B及其去甲基化酶失活突变体对Il6转录活性的影响。

4

KDM2B对Il6启动子染色质可及性的影响

检验KDM2B是否通过影响染色质开放性来调控Il6转录

采用DNase I敏感性分析和FAIRE实验比较Kdm2b+/+和Kdm2b-/-巨噬细胞中Il6、Tnf和Ifnb1启动子的染色质可及性。

5

KDM2B与Brg1相互作用及对Il6启动子染色质重塑的作用

鉴定KDM2B的相互作用蛋白并验证其介导Brg1招募至Il6启动子的机制

通过免疫沉淀结合质谱分析鉴定KDM2B相互作用蛋白,发现Brg1;通过免疫共沉淀验证内源相互作用并定位结合域;通过Re-ChIP和ChIP检测KDM2B和Brg1在Il6启动子的共定位以及KDM2B对Brg1招募的影响;通过siRNA敲低Brg1检测染色质可及性和IL-6产生。

6

KDM2B对RNA聚合酶II招募的影响

确定KDM2B是否通过招募RNA Pol II促进Il6转录

通过免疫共沉淀检测KDM2B与RNA Pol II的相互作用,并通过ChIP检测KDM2B缺陷对RNA Pol II在Il6启动子占位的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
脂多糖(大肠杆菌0111:B4)Merck Millipore--
聚肌胞苷酸Merck Millipore--
抗KDM2B抗体Merck Millipore09-864
抗KDM2B抗体Novus BiologicalsNBP2-14954
抗Brg1抗体Abcamab110641
抗ERK抗体Cell Signaling Technology9102
抗磷酸化ERK抗体Cell Signaling Technology9106
抗JNK抗体Cell Signaling Technology9258
抗磷酸化JNK抗体Cell Signaling Technology4668
抗p38抗体Cell Signaling Technology9212
抗磷酸化p38抗体Cell Signaling Technology9211
抗p65抗体Cell Signaling Technology8242
抗磷酸化p65抗体Cell Signaling Technology3033
抗IKKβ抗体Cell Signaling Technology8943
抗磷酸化IKKα/β抗体Cell Signaling Technology2697
抗TBK1抗体Cell Signaling Technology3013
抗磷酸化TBK1抗体Cell Signaling Technology5483
抗IRF3抗体Cell Signaling Technology4302
抗磷酸化IRF3抗体Cell Signaling Technology4947
抗β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology4967
抗Flag标签抗体Cell Signaling Technology2044
抗V5标签抗体Cell Signaling Technology13202
ELISA试剂盒R&D Systems--
葡聚糖硫酸钠MP Biomedicals--
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher--
TRIzol试剂Thermo Fisher--
LightCycler 480实时荧光定量PCR仪Roche--
SYBR RT-PCR试剂盒Takara--
RNeasy微型试剂盒Qiagen--
TruSeq RNA样品制备试剂盒Illumina--
HiSeq 2500测序仪Illumina--
细胞裂解液Cell Signaling Technology--
蛋白酶抑制剂混合物Calbiochem--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher--
pcDNA3.1 V5-His真核表达载体Invitrogen--
p3xFLAG-CMV-14载体Sigma--
巨噬细胞核转染试剂盒Lonza--
4D核转染系统Lonza--
NE-PER核和胞质蛋白提取试剂盒Thermo Fisher--
ChIP试剂盒Millipore--
Re-ChIP-IT试剂盒Active Motif--
DNase IPromega--
QIAamp DNA微型试剂盒QIAGEN--
JetPEI转染试剂Polyplus Transfection--
双荧光素酶报告基因检测系统Promega--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
内毒素休克模型
Kdm2b+/+和Kdm2b-/-小鼠的周龄(6-8周)、LPS剂量(12 mg/kg)和poly(I:C)剂量(10 mg/kg)腹腔注射,血清采集时间(注射后2小时)
阅读提示:Materials and methods, Endotoxin shock model and colitis model; 图1a
结肠炎模型
DSS浓度(3% w/v)、分子量(36,000-50,000)、处理时间(7天)、小鼠周龄(6-8周)
阅读提示:Materials and methods, Endotoxin shock model and colitis model; 图1c-e
细胞培养和刺激
细胞类型(腹腔巨噬细胞、BMDM、BMDC)、刺激物(LPS、poly(I:C)、VSV、HSV-1)、刺激时间(如4小时)
阅读提示:Materials and methods, Cell culture and RNA interference; 图2b-e
siRNA敲低
siRNA靶序列和来源(Dharmacon M-065655-01 for Kdm2b siRNA-1, Santa Cruz sc-75006 for Kdm2b siRNA-2)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、敲低效率验证
阅读提示:Materials and methods, Cell culture and RNA interference; 图2c
ChIP和Re-ChIP
抗体(KDM2B NBP2-14954, Brg1 ab110641, RNA Pol II)、交联时间(10分钟)、甲醛浓度(1%)、检测的启动子区域(Il6、Tnf、Ifnb1)
阅读提示:Materials and methods, Chromatin immunoprecipitation (ChIP) and Re-ChIP assays; 图3a-c, 图5e-f, 图6b
染色质可及性分析
DNase I浓度(0.1 U/μl)、消化时间(30分钟)、FAIRE实验的甲醛交联和超声条件
阅读提示:Materials and methods, DNase I sensitivity analysis and FAIRE assay; 图4