体内炎症模型验证KDM2B对IL-6产生的影响
评估KDM2B在全身炎症反应和结肠炎中对IL-6产生及组织损伤的作用
利用CRISPR-Cas9生成的Kdm2b基因敲除小鼠,腹腔注射LPS或poly(I:C)建立内毒素休克模型,或给予3% DSS诱导结肠炎,检测血清细胞因子水平,并通过HE染色评估肺和结肠组织病理变化。
KDM2B promotes IL-6 production and inflammatory responses through Brg1-mediated chromatin remodeling
包含KDM2B敲除小鼠模型、原代巨噬细胞和树突状细胞、体内内毒素休克和结肠炎模型、体外siRNA敲低及过表达回补,以及ChIP、DNase I、FAIRE、LC-MS等机制验证。
小鼠原代腹腔巨噬细胞 骨髓来源巨噬细胞(BMDM) 骨髓来源树突状细胞(BMDC) Kdm2b基因敲除小鼠内毒素休克和结肠炎模型
KDM2B在巨噬细胞和树突状细胞中对IL-6而非TNF-α、IFN-β等的诱导是必需的 KDM2B选择性结合Il6启动子但不改变H3K4me3和H3K36me2水平 KDM2B通过其LRR结构域与Brg1相互作用 KDM2B缺陷减少Brg1和RNA Pol II在Il6启动子的招募 Brg1敲低降低Il6启动子染色质可及性并抑制IL-6产生
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估KDM2B在全身炎症反应和结肠炎中对IL-6产生及组织损伤的作用
利用CRISPR-Cas9生成的Kdm2b基因敲除小鼠,腹腔注射LPS或poly(I:C)建立内毒素休克模型,或给予3% DSS诱导结肠炎,检测血清细胞因子水平,并通过HE染色评估肺和结肠组织病理变化。
确定KDM2B是否选择性调控巨噬细胞和树突状细胞中IL-6的表达
分离Kdm2b+/+和Kdm2b-/-小鼠的腹腔巨噬细胞、BMDM和BMDC,用LPS、poly(I:C)或病毒感染刺激,检测Il6 mRNA和IL-6蛋白水平;同时用siRNA敲低KDM2B,验证其对IL-6产生的必要性。
验证KDM2B是否选择性结合Il6启动子并改变其组蛋白甲基化状态
通过ChIP-qPCR检测KDM2B在Il6、Tnf和Ifnb1启动子的占有率,并检测H3K4me3和H3K36me2的水平;利用Il6启动子荧光素酶报告基因实验检测KDM2B及其去甲基化酶失活突变体对Il6转录活性的影响。
检验KDM2B是否通过影响染色质开放性来调控Il6转录
采用DNase I敏感性分析和FAIRE实验比较Kdm2b+/+和Kdm2b-/-巨噬细胞中Il6、Tnf和Ifnb1启动子的染色质可及性。
鉴定KDM2B的相互作用蛋白并验证其介导Brg1招募至Il6启动子的机制
通过免疫沉淀结合质谱分析鉴定KDM2B相互作用蛋白,发现Brg1;通过免疫共沉淀验证内源相互作用并定位结合域;通过Re-ChIP和ChIP检测KDM2B和Brg1在Il6启动子的共定位以及KDM2B对Brg1招募的影响;通过siRNA敲低Brg1检测染色质可及性和IL-6产生。
确定KDM2B是否通过招募RNA Pol II促进Il6转录
通过免疫共沉淀检测KDM2B与RNA Pol II的相互作用,并通过ChIP检测KDM2B缺陷对RNA Pol II在Il6启动子占位的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞刺激 | 脂多糖(大肠杆菌0111:B4) | Merck Millipore | -- |
| 聚肌胞苷酸 | Merck Millipore | -- | |
| 免疫印迹 | 抗KDM2B抗体 | Merck Millipore | 09-864 |
| 染色质免疫沉淀 | 抗KDM2B抗体 | Novus Biologicals | NBP2-14954 |
| 免疫沉淀 | 抗Brg1抗体 | Abcam | ab110641 |
| 免疫印迹 | 抗ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9102 |
| 抗磷酸化ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 9106 | |
| 抗JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 9258 | |
| 抗磷酸化JNK抗体 | Cell Signaling Technology | 4668 | |
| 抗p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9212 | |
| 抗磷酸化p38抗体 | Cell Signaling Technology | 9211 | |
| 抗p65抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| 抗磷酸化p65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| 抗IKKβ抗体 | Cell Signaling Technology | 8943 | |
| 抗磷酸化IKKα/β抗体 | Cell Signaling Technology | 2697 | |
| 抗TBK1抗体 | Cell Signaling Technology | 3013 | |
| 抗磷酸化TBK1抗体 | Cell Signaling Technology | 5483 | |
| 抗IRF3抗体 | Cell Signaling Technology | 4302 | |
| 抗磷酸化IRF3抗体 | Cell Signaling Technology | 4947 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Cell Signaling Technology | 4967 | |
| 抗Flag标签抗体 | Cell Signaling Technology | 2044 | |
| 抗V5标签抗体 | Cell Signaling Technology | 13202 | |
| 细胞因子检测 | ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- |
| 结肠炎模型 | 葡聚糖硫酸钠 | MP Biomedicals | -- |
| 细胞转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher | -- |
| 定量PCR | LightCycler 480实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- |
| SYBR RT-PCR试剂盒 | Takara | -- | |
| RNA测序 | RNeasy微型试剂盒 | Qiagen | -- |
| TruSeq RNA样品制备试剂盒 | Illumina | -- | |
| HiSeq 2500测序仪 | Illumina | -- | |
| 免疫沉淀和免疫印迹 | 细胞裂解液 | Cell Signaling Technology | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Calbiochem | -- | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher | -- |
| 质粒构建 | pcDNA3.1 V5-His真核表达载体 | Invitrogen | -- |
| p3xFLAG-CMV-14载体 | Sigma | -- | |
| 细胞转染 | 巨噬细胞核转染试剂盒 | Lonza | -- |
| 4D核转染系统 | Lonza | -- | |
| 质谱分析 | NE-PER核和胞质蛋白提取试剂盒 | Thermo Fisher | -- |
| ChIP | ChIP试剂盒 | Millipore | -- |
| Re-ChIP | Re-ChIP-IT试剂盒 | Active Motif | -- |
| DNase I敏感性分析 | DNase I | Promega | -- |
| DNA纯化 | QIAamp DNA微型试剂盒 | QIAGEN | -- |
| 荧光素酶报告基因实验 | JetPEI转染试剂 | Polyplus Transfection | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 内毒素休克模型 | Kdm2b+/+和Kdm2b-/-小鼠的周龄(6-8周)、LPS剂量(12 mg/kg)和poly(I:C)剂量(10 mg/kg)腹腔注射,血清采集时间(注射后2小时) 阅读提示:Materials and methods, Endotoxin shock model and colitis model; 图1a |
| 结肠炎模型 | DSS浓度(3% w/v)、分子量(36,000-50,000)、处理时间(7天)、小鼠周龄(6-8周) 阅读提示:Materials and methods, Endotoxin shock model and colitis model; 图1c-e |
| 细胞培养和刺激 | 细胞类型(腹腔巨噬细胞、BMDM、BMDC)、刺激物(LPS、poly(I:C)、VSV、HSV-1)、刺激时间(如4小时) 阅读提示:Materials and methods, Cell culture and RNA interference; 图2b-e |
| siRNA敲低 | siRNA靶序列和来源(Dharmacon M-065655-01 for Kdm2b siRNA-1, Santa Cruz sc-75006 for Kdm2b siRNA-2)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、敲低效率验证 阅读提示:Materials and methods, Cell culture and RNA interference; 图2c |
| ChIP和Re-ChIP | 抗体(KDM2B NBP2-14954, Brg1 ab110641, RNA Pol II)、交联时间(10分钟)、甲醛浓度(1%)、检测的启动子区域(Il6、Tnf、Ifnb1) 阅读提示:Materials and methods, Chromatin immunoprecipitation (ChIP) and Re-ChIP assays; 图3a-c, 图5e-f, 图6b |
| 染色质可及性分析 | DNase I浓度(0.1 U/μl)、消化时间(30分钟)、FAIRE实验的甲醛交联和超声条件 阅读提示:Materials and methods, DNase I sensitivity analysis and FAIRE assay; 图4 |