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科研学霸天团,48小时有问必答
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问
WB的泛抗体实验中,为什么总是出现只有一条带的情况?
bamboopiggy
你说是泛素化抗体么?如果是的话,可能因为你那个泛素化的蛋白,在出条带的大小表达的最多,所以曝光浅的时候,能看到一条带,而不是多条带
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问
如何避免荧光定量pcr检测技术的实验误差?
迟C迟
可以从以下几个方面考虑:1、样品的处理及选取处理样品时,必须确保样品都得到了充分的处理。选取实验样品时,要保证选取的组织尽可能的纯,不要污染其他组织,样品选好后,即可放入液氮或超低温冰箱保存。2、核酸提取加入液氮研磨要彻底,蛋白、多糖、多酚类物质要去除干净,确保得到高质量的核酸,分光光度计检测核酸质量,RNA OD260/280=2.0左右,DNA OD260/280=1.8左右,最好再做电泳检测
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问
同样的抗体同样的稀释比例,前一次可以敷出正常的条带,但是用于不同批次的相同处理的样品时敷出了反白的条带,是什么原因?如何解决?
bamboopiggy
反白条带出现,大概率是你蛋白浓度太高,出现了烧心现象,还来不及拍照,大量的辣根过氧化物酶就反应了,把发光试剂消耗掉了,从而没有光了。
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问
跑出来的胶,杂带太多,怎么回事儿?目的条带都看不清,被杂带覆盖了。
whilt-shirt
可能是抗体浓度过高导致的,建议稀释抗体试试
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问
请问外泌体的生物标志物如何选择,如何鉴定啊?
vae1476
正好最近在做,外泌体膜上富含参与外泌体运输的四跨膜蛋白家族(CD63、CD81和CD9))、热休克蛋白家族((HSP60、HSP70、HSPA5、CCT2和HSP90)以及一些细胞特异性的蛋白包括A33(结肠上皮细胞来源)、MHC-II(抗原提呈细胞来源)、CD86(抗原提呈细胞来源)以及乳凝集素(不成熟的树突状细胞)。其中CD63、CD9、CD81以及TSG101、HSP70、ALIX等,是最常
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问
蛋白质样品可以反复冻融吗?
迟C迟
蛋白样品不建议久存,也不要反复冻融。 下游做WB实验,建议蛋白浓度测定后,加入loading buffer煮样,煮后根据实验需要分装成小管在-80℃,下次使用前拿出小管再次煮样即可。
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问
请问有做磷酸化的蛋白,造模时间不同,做出来结果完全相反的吗?
whilt-shirt
首先得确定造模是成功的,建议重复试试
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问
如何确定WB结果中目的蛋白位置高于预测位置的原因
whilt-shirt
可以通过更换不同的marker来确定
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问
银染和WB哪个灵敏度更高?
迟C迟
银染的灵敏度高,但是有时候操作不好胶就变成大花脸了。
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问
WB条带周围总是黑黑的一团,不知道怎么回事
未来9
可能的原因①膜封闭不够,建议延长封闭的时间;选择合适的封闭液。②一抗稀释度不适宜,太高,选择最适宜的抗体稀释度。③ 一抗孵育的温度偏高,建议4℃过夜孵育。④选择的膜容易产生高背景,一般NC膜的背景会比PVDF膜低,但是NC膜吸附力也就差了一点。⑤膜在整个实验过程中干过或手套反复接触过,实验过程中要注意保持膜的湿润,使用镊子夹取膜。⑥检测时曝光时间过长,可减少曝光时间。
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问
为什么WB条带一个位置总是有两条,只敷了一种蛋白?
whilt-shirt
可能是抗体的特异性不好,也有可能是抗体浓度过高
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问
跑出来的带总是弯弯曲曲的怎么处理?
bamboopiggy
灌胶匀一些,或者低电压跑慢点,或者用软件拉直。
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问
跑出来的带总是很弯曲是哪里出了问题?
whilt-shirt
配胶没混匀,或者电泳液有问题。
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问
请问大分子目的蛋白,本底表达低,每次跑出来都只能看见maker,目的条带都很若,有什么解决的办法嘛?
迟C迟
推荐使用Tris-Acetate 凝胶跑大分子蛋白,会呈现更高的分辨率。凝胶浓度与孔径成反比,即凝胶浓度越小,孔越大,较大分子量的蛋白质更容易通过,所以建议使用6-8%浓度的分离胶,当然也可以使用梯度凝胶。
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问
WB条带白色背景黑色是什么原因?
dxy_yjs8h877
很多时候是因为封闭的不好,或者洗膜洗的不干净的原因导致的。
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问
跑蛋白胶的maker用多少合适呢?
dxy_yjs8h877
一般为了节省都用5ul左右就够了,怕不好点样的话可以适当稀释一下然后加大用量也可以。
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问
两块胶一起转膜,为什么一个成功一个失败?
天一湖医者
考虑到会不会是封闭时间不足或者膜有没有出现干了的现象。
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问
做WB的时候用商品化封闭液封闭结束是否需要用TBST洗脱后再加一抗孵育?用脱脂奶粉的时候是洗脱的,不知道这种成品是否仍需要?
vae1476
每个商品化封闭液都有自己的Protocol,所以要按照说明书来做,其优点是封闭时间很快。
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问
求解:WB提取蛋白时,什么情况要加DTT?作用是什么?比例多少?
未来9
如果是本来就有正确结构的蛋白是不需要加DTT的,如果是变性的蛋白,并且其一级结构中含半胱氨酸,那么缓冲液中加DTT,并且逐渐减少DTT浓度。DTT是防止错误的二硫桥形成的,蛋白会先向正确结构形成二硫键,但是这个过程较为缓慢,如果直接不加还原剂,那么正确的和错误的二硫键都会形成。所以慢慢的降低DTT,使蛋白形成正确的结构而不至于形成错误的二硫键。如果4xloading buffer中不含有DTT就按
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问
WB实验做完了,所有条带颜色都很浅怎么回事呀?
fenfen1110
还有一种可能:是不夹板夹的不够严实,导致转膜不完整
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