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问
双向免疫扩散实验怎么判断抗原蛋白相对浓度?
此用户已注销
当两者在最适当比例处相遇时,即形成一条清晰的沉淀线。根据有否出现沉淀线,可用已知的抗体鉴定未知的抗原,或用已知的抗原鉴定未知的抗体。沉淀线靠近抗原孔,则提示抗体含量大;靠近抗体孔,则提示抗原含量较多;不出现沉淀线则表明抗体或抗原的缺乏或抗原过剩;另外,如出现多条沉淀线,则说明抗原和抗体皆不是单一的成分。因此,可用于鉴定抗原或抗体的纯度。
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问
免疫荧光染色实验中,有时用甲醛进行固定时间较长可以得到更好的染色,有时较短染色效果更好,请问固定时间与蛋白质种类是否存在联系?
txs900416
取决于目的蛋白的性质,有时候固定时间太长,细胞膜表面分子容易变性脱落;有时候固定时间太短,固定不完全,染色效果不好
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问
免疫荧光共定位量化一般采用哪个系数?
简单最重要666
皮尔逊相关系数和及重叠系数。两者作用关系仍然有所不同
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问
染色细胞质不清晰的原因是什么?
颜渊溪桥
如果你说的是荧光染色,除了实验操作外,一个可能是抗体特异性不够,另一个可能是细胞比较圆,不是很适合做染色观察,实验目的允许的情况下可以换成比较铺展的细胞做。
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问
怎样减少非特意结合?抗体已定
今天摆烂了咩
抗体浓度过高也可能导致此问题降低抗体浓度,可以减少非特异性条带
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问
所有底物在孵育之前都要避光吗?
yfcwyh
ELISA实验中,在酶标抗体孵育,以及显色底物孵育这两步建议避光,其他步骤无需避光。避光可采用锡纸包裹,或将整个ELISA板子放入暗盒或抽屉等无光处即可。
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问
需要自己制备特异性抗体吗,得到抗体之后再怎么操作呢
小暮
一般自己做课题制备不了特异性抗体吧,特异性抗体不都是买文献介绍的吗?至于得到抗体后怎么操作看你要做什么实验吧,WB?ELASA?CHIP?都是看抗原和特异性抗体结合
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问
一抗过程中无法足够一和目标蛋白结合 ? 细胞核显色不明显,靶细胞中没有目标蛋白? 切片本身脱蜡不彻底,如何解决?
郭郭的郭郭
1、洗涤不充分,膜没有洗干净。2、封闭不充分,一抗可能直接结合到膜上,造成二抗孵育时在非特异性位点发生结合。3、一抗/二抗浓度太高,出现非特异性结合。要解决封闭不充分这个问题,可尝试延长封闭时间,也可更换封闭液。常用的封闭剂有 5% 脱脂奶粉、5% BSA、血清和明胶等,推荐室温封闭 1 小时以减少背景。另外,脱脂奶粉常含有酪蛋白,由于酪蛋白会结合磷酸化抗体而易产生高背景。因此,检测磷酸化蛋白时建
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问
二抗染坏了(非特结了),如何补救? 信号放大过度咋整? 染料和pbs在组织中互相作用的正确步骤?
dxywode
1) 石蜡切片脱蜡和水化后,用PBS(pH7.4)冲洗三次,每次3分钟(3×3’)。 2) 根据每一种抗体的要求,对组织抗原进行相应的修复。 3) 每张切片加1滴或50ul过氧化酶阻断溶液(试剂A),以阻断内源性过氧化物酶的活性,室温下孵育10分钟。 4) PBS冲洗3×3’。 5) 甩去PBS液,每张切片加1滴或50ul的非免疫性动物血清(试剂B),室温下孵育10分钟。 6) 甩去血清
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问
同一样品多次ELISA检测,测试结果差异大怎么解决?
peaceful13
样本的保存会影响蛋白的含量,尽量减少样本的反复冻融,并且测试时间间隔不可过长;其次elisa实验其实很多的是看样品含量趋势比较,如果要测试多次elisa实验的检测结果,那么最好有个校准的标品,再每次elisa实验时,校准产品检测出来的值差异需要在控制范围,这样确保实验间的差异变化也不过多影响最终样品值的确定
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问
用血清孵育过的细菌,不孵一抗,只用FITC标记的抗鼠的二抗孵育,当做阴性对照,阴性值特别高,请问是血清中的什么东西能与二抗反应吗
dxywode
免疫组化中的封闭血清,不能选择和一抗同源的,否则会出现假阳性;因为二抗会和血清中的Ig反应。而免疫组化的替代对照里,用的也是和实验一抗同源的血清,出来的结果理论上却应该是阴性的——说明阳性结果是与特异性抗体结合产生的,而不是血清中存在的。
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问
如果是做多克隆抗体,是免疫兔子好还是免疫老鼠好呢?如果是免疫老鼠,对小白鼠的品种有要求吗?
郭郭的郭郭
多克隆抗体一般通过免疫接种合适的哺乳类动物而产生,例如小鼠、兔子或者山羊。通常更倾向于采用大型哺乳类动物,因为可以采集更多的血清。一般选择兔子比较多,如果是老鼠的话,对种类一般没有要求。
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问
石蜡切片抗体结合是否需要温箱孵育?
c_Yeats
1.一般一抗4℃过夜,二抗室温2.可以脱色后复染看看
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问
流式细胞术检测NK细胞杀伤功能,如何精确检测杀伤效率。
txs900416
NK92细胞的杀伤功能取决于NK细胞的细胞状态及靶细胞的细胞状态,建议将细胞状态调整到一致再做重复实验。此外,合理标记靶细胞(例如使用CTV或CFSE染料)进行合理的靶细胞圈门可以区分效应细胞和靶细胞。杀伤时间和效靶比都需要预实验探索
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问
Western blot 中背景强
颜渊溪桥
1%t tween+5%peptone tbst/pbst 配置,室温封闭1h,铅笔标记下marker,会洗没的;含0.1%tween上抗体。
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问
ELIISA全菌包被检某个蛋白的时候,阴性对照特别高,怎么办
郭郭的郭郭
ELISA的前带效应。前带效应(或后带效应)其实是由测量程序的固有属性产生。对于所有测量程序而言,都有分析测量区间(analytical measurement interval,AMI)这一个重要属性。两个思路:1. 优化测量程序,拓宽AMI,通过提高原料用量或者改进包被工艺,使目标浓度进入AMI以内;2. 建立稀释方案,通过稀释使目标浓度降至分析测量区间以内,再对其进行检测。第二种思路其实是在
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问
做COIP实验,互作的两个蛋白在目标位置有条带,但是阴性对照(NC)在相同蛋白分子量的位置也出现了浅条带,是什么原因?怎么改善?
小暮
阴性不应该有条带,有条带就是有结合,这个说明抗体有非特异结合的可能:1.抗体特异性不够,如果反复多次阴性对照出现条带考虑,更换抗体。2.上样错误,仅表现一次阴性对照阳性,重复实验就行
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问
免疫荧光中DAPI 信号过强甚至看不清细胞核轮廓和核仁是什么情况?
dxywode
1.组织切片太厚:这种情况下可以选择将组织切片变薄试试。2.封闭不佳:封闭的目的就是为了减少非特异性的结合,减少背景染色。如果背景太强,可以考虑换种封闭液或者增加封闭孵育的时间。
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问
Western Blot转膜失败是为什么
小暮
(1) 膜没有完全均匀湿透使用 100% methanol 浸透膜。(2) 靶蛋白分子量小于 10 000选择小孔径的膜,缩短转移时间。(3) 靶蛋白等电点等于或接近转移缓冲液 pH 值可尝试使用其他缓冲液如 CAPS 缓冲液(pH 10.5) 或使用低 pH 值缓冲液如乙酸缓冲液。(4) 甲醇浓度过高过高甲醇浓度会导致蛋白质与 SDS 分离,从而沉淀在凝胶中,同时会使凝胶收缩或变硬,从而抑制高分
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问
流式细胞术单细胞悬液制备如何获得更明显的分群?
txs900416
T细胞染色要看T细胞的富集程度,例如淋巴器官中,若不分群,主要考虑细胞量过大抗体量不足;若TIL或者其他组织中来源T细胞,还需要考虑细胞分离不好、T细胞丰度较低的因素,建议去除实质细胞背景,加染白细胞标志CD45,圈出cd45阳性细胞群再分析。
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