神经干动作电位，神经传导速度测定

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神经干动作电位，神经传导速度测定

 

目的原理 了解单相、双相动作电位的形成和波形，理解其产生的原因，熟悉电生理仪器 的使用方法。动作电位是神经兴奋的客观标志，表现为正处于兴奋的部位相对于静息部位来说呈负电性质，因此兴奋区和静息区之间存在电位差。若将两个记录电极置于完整的神经干表面，当动作电位先后流过二电极时，可记录到双相的曲线，叫做双相动作电位；若将两个记录电极置于神经干损伤部位的两侧，因神经纤维的完整性被破坏，动作电位传导受阻后，只能记录到单相的曲线，叫做单相动作电位。神经纤维的动作电位是“全或无”的，神经干是由许多神经纤维组成的，由于不同神经纤维的兴奋性不同，故神经干的动作电位与神经纤维的不同。神经干动作电位的幅度在一定范围内可随刺激强度的变化而变化，而不是全或无的。

了解神经干动作电位传导速度测定的基本原理和方法。神经纤维的生理特性之一是具有高度的传导性。不同类型的神经纤维传导速度不同，其传导速度主要受神经纤维的粗细、内阻及有无髓鞘的影响。如测得神经冲动在神经干上传导的距离与时间，可根据距离(s)、时间(t)、速度(v)三者之间的关系式求出神经冲动传导速度，即v=s/t。

实验对象与用品 蟾蜍或蛙。示波器、生理实验 多用仪、神经标本屏蔽盒、蛙板、小烧杯、滴管、蛙手术器械(套)、滤纸、竹夹，任氏液。

方法步骤

(一)坐骨神经干标本制备

参照实验二。并在坐骨神经游离至膝关节处后再继续向下剥离，在腓肠肌两侧肌沟中找到胫神经和腓神经，任剪断一支而保留另一支，直到足趾，用线结扎后剪断。

 

(二)仪器连接(见图21-1，图21-2)

(1)将示波器、生理实验多用仪、神经屏蔽盒等连接好。用刺激器激发示波器，使扫描同步。

(2)将神经屏蔽盒内所有电极用浸有任氏液的棉球擦净，保持盒内一定湿度，以免神经标本干燥。

(3)用竹夹夹住已制备好的标本一端，将其平放于记录电极r1、r2上，用滤纸片吸去标本上过多的任氏液。

(4)示波器的调节：灵敏度为100mV/cm，扫描速度为10ms/cm，整机灵敏度调至0.5mV/s。生理多用仪刺激输出强度1.0V左右，刺激波宽0.1-1.0ms。

(三)神经干动作电位观察(图21-1)

(1)双向动作电位 当神经未受刺激时，两电极A、B之间无电位差，示波器扫描光点为一水平基线。当神经C处受到一次适宜强度的刺激即产生一个动作电位(即负电变化)，当动作电位传到电极A下方时，A、B间出现电位差，示波器上扫描光点向上偏转(电生理 实验中，习惯规定负波向上)，当动作电位移到A、B间，A、B两点又无电位差，动作电位继续右移到B下时，A、B间又有电位差出现，且倒置，引起示波器光点向下偏转。所以示波器上显示了一个双相动作电位。

(2)单相动作电位 用药物阻断或机械损伤神经干的D处。此时冲动则本能由A点传至B点，静息时A、B间电位相等。当刺激神经时，产生的动作电位只能传到损伤处，所以只能引起光点向上偏转一次，示波器上仅显示出一个单相动作电位。

(3)增强刺激强度时可见动作电位在一定范围内随强度变化而变化。

(四)神经传导速度测定(图21-2)

(1)将神经标本平直地置于用任氏液拭擦过的屏蔽盒内的刺激电极sl、s2，记录电极r1、r2及接地电极r3上，使之接触良好，注意勿使电极间短路。

(2)调节整机灵敏度达0.5-1mV/cm。

(3)先将r1、r3电极插入放大器输入端，调节刺激器强度和频率，以适宜强度刺激神经，使之在荧光屏上显示出一个合适的动作电位。

调节扫描频率，使出现的动作电位波形清晰并稳定在荧光屏上，呈同步状态。根据屏上的时间标记测量、记录刺激伪迹与动作电位起始点之间的时间。

(4)取下r1电极，换上r2电极，用相同的刺激强度和频率刺激，测出r2的刺激伪迹与动作电位起始点之间的时间。

(5)计算：由r1、r2引导到的动作电位的时间间隔为t(s)。神经干上r1、r2之间的距离为s(m)。

动作电位传导速度v＝s/t.

要求与思考题

1.神经干复合电位是否遵循“全成无”定律?为什么?

2.记录神经干动作电位和传导速度时，可能出现哪些问题?如何解决?

注意事项

1.标本应平直地放在电极上与电极密切接触。经常湿润，但要用滤纸吸去过多的任氏液，以防短路。

2.动作电位如果先下后上时，可将示波器输入导线端口对调。

3.一定要将神经干粗端放于刺激电极一侧。