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        cDNA文库组标准流程三:cDNA双链合成

        互联网

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        一. Superscipt II―RT 合成第一链 :

        1. 在一RNase-free的0.2ml PCR管中,加入

        xul mRNA(大约500ng)

        1ul Xho I Primer(1.4ug/ul)

        (5’ GAGAGAGAGAGAGAGAGAGAACTAGTCTCGAG TTTTTTTTTTTTTTTTTT…3’)

        11-x ul RNase-free water

        (大于500ng mRNA 分n管(500ng/tube)合成第一链, 第一链合成完毕后将n管合成一管进行第二链合成.)

        2. 混匀后,70℃反应10分钟;

        3. 反应完成后,立刻将反应体系置于冰上5min;

        4. 稍微离心一下,顺序加入以下试剂:

        4ul 5×first strand buffer

        2ul 0.1M DTT

        1ul 10mM dNTP(自己配制)

        5. 混匀,稍微离心反应物之后,42℃放置2分钟;

        6. 反应完成,趁热加入1 ul Superscipt II―RT,混匀;

        7. 42℃反应50分钟,然后70℃,15分钟灭活反转录酶.

        二. cDNA 第二链的合成 :

        1. 第一链反应完成后,取2ul一链产物-20℃冰箱中保存,待电泳检测。其余的产物合并,混匀,然后顺序加入下列试剂(promega):

        20ul 10×DNA Polymerase I buffer

        6ul 10mM dNTP(自己配制)

        xul dd H2 O

        1ul RNase H(2U/ul)

        10ul DNA Polymerase I(10U/ul)

        总体系为200ul;

        2. 混匀后,16℃反应2.5小时;

        3. 70℃灭活10分钟;

        4. 反应完成后,得到200ul cDNA第二链反应体系,将此体系置于冰上;

        5.取2ul二链产物,同保存的一链产物一起电泳鉴定。同时上1kb ladder,确定双链的大小范围。

        注:一链,二链的电泳图是smear,且二链稍比一链大一些。

        三. 双链 cDNA 末端补平 :

        1. 在第二链反应体系中,顺序加入下列试剂(promega):

        6ul 10mM dNTP

        2ul T4 DNA Polymerase(8.7U/ul)

        2ul BSA(10mg/ml)

        2. 稍微离心混匀反应物, 37℃反应至少30分钟,然后75℃灭活10分钟;

        3. 加入等体积酚/氯仿/异戊醇,剧烈振荡后,常温下13000g离心5分钟;

        4. 离心后,吸取上清于另一1.5ml eppendof管中,加入等体积氯仿,上下颠倒几次混匀后,常温下13000g离心5分钟;

        5. 吸取上清至另一eppendof管,加入1/10V3M NaAc(PH5.2)和2.5V预冷的无水乙醇,混匀,-20℃放置过夜以沉淀双链cDNA;

        6. 第二日,将昨日沉淀物在4℃,13000g离心60分钟以充分沉淀双链cDNA;

        7.离心完毕,弃上清,加入1ml 70%乙醇洗涤沉淀,常温下13000g离心5分钟;

        8.离心完毕,弃上清,干燥沉淀至无乙醇气味.

        注:第3,第4步可以用PCR 纯化试剂盒代替。

        四、PCR纯化试剂盒操作流程:

        1.溶液PE使用前应加入适量体积95%-100%的乙醇,混匀。

        2.向200ul二链补平产物中加入5倍体积的buffer PB,混匀。

        3.加入spin column中,13000rpm离心1min。

        4.加入0.75ml buffer PE,13000rpm离心1min。

        5.13000rpm,再离心1min。

        6.将spin column放入一新的离心管中,加入50ul buffer EB,静置10min。

        7.13000rpm离心2min。

        8.加入30ul buffer EB,静置10min。

        9.13000rpm离心2min。

        10.加入1/10体积3M的NaAc,2.5倍体积无水乙醇,混匀,-20℃沉淀过夜。

        五、 EcoR I adaptor 加接 :

        1. 往双链cDNA沉淀中加入9ul EcoR I adaptor(400ng/ul),4℃至少放置30分钟以充分溶解cDNA沉淀;

        2. 溶解完成后,顺序加入下列试剂:

        1.2ul 10×Ligase Buffer

        1ul 10mM rATP

        1 ul T4 DNA Ligase(4U/ul)

        3. 混匀后,4℃连接3days,或者8℃过夜连接;

        六、双链 cDNA 末端的磷酸化及 Xho I 酶切 :

        1. 连接反应完成后,将反应体系70℃放置15分钟灭活T4 DNA Ligase;

        2. 稍微离心使反应物集中至管底,室温下放置5分钟,然后加入下列试剂:

        1ul 10×Ligase Buffer

        1ul 10mM rATP

        6ul dd H2 O

        1ul T4 PNK(10U/ul)

        3. 37℃反应30分钟,然后70℃灭活15分钟;

        4. 稍微离心使反应物集中至管底;

        5. 室温放置5分钟;然后加入下列试剂:

        4ul Xho 10×Buffer

        2ul BSA

        5ul ddH2O

        8ul Xho I (10U/ul)

        6. 37℃反应1.5小时,然后65℃灭活酶10分钟;

        7. 反应完成,双链cDNA合成完毕。置于4℃准备回收。

        七、 胶回收 cDNA(QIAEXII GEL Extraction Kit 回收试剂盒 )

        1.配制小胶数板(每个样品一板):1%琼脂糖凝胶,2ul EB/300ml 胶

        2.取4℃保存样品上样,40ul/孔。

        3.电泳50V;1hr

        4.紫外灯下分别切下500~1kb、1.0-2.0kb及2.0-4.0kb cDNA 片段.,分别放入已做标记的1.5ml离心管中。

        5.称取胶重,加入三倍体积buffer QXI(例如,100mg胶中加入300ul buffer QXI)

        6.50℃ 水浴数分钟,至胶完全融化。用手指弹 QIAEX II 使重悬,每管中加入5ul QIAEXII

        7.50℃ 水浴10min,每隔2min 取出颠倒混匀数次,使QIAEX II 保持悬浮

        8.4℃,13000rpm,30sec。(弃上清,离心机中甩一下,吸取上清)

        9.加入500ul buffer QXI,轻弹管底使QIAEX II 重悬

        10. 离心并去上清(同操作8)

        11. 加入500ul buffer PE,重悬QIAEX II,离心30sec,去上清

        12. 再加入500ul buffer PE,重悬QIAEX II,离心30sec,弃上清,离心机中甩一下,吸去上清

        13. 超净台上吹干(至无乙醇味),加入10ul elution buffer,重悬QIAEX II,静置5min,13000rpm,30sec。吸上清,冰上放置。

        14. 取1ul上清上样电泳,同时做分子量标准(1kb ladder)及DNA含量标准(10ng,20ng)作对照。

        15. 将收回的cDNA置于-20℃内保存,据电泳结果,取适量DNA进行连接。

        注意事项:

        1.胶回收前电泳槽,电泳板,梳子等都要用1%的HCl浸泡过夜。

        2.胶回收时电压要稳定。

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