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        核提取物的制备

        相关实验:核提取物的制备实验

        最新修订时间:

        原理

        通过向某些蛋白质溶液中加入某些无机盐溶液后,可以降低蛋白质的溶解度,使蛋白质凝聚而从溶液中析出,这种作用叫作盐析,是物理变化,可复原。对于特定的蛋白质,影响蛋白质盐析的主要因素:无机盐的种类、浓度、温度和PH值。

        材料与仪器

        步骤

        1a.  收集转瓶培养的细胞:将浓度为5~10x108细胞/l 的培养液用1 L 的塑料瓶1 850 g 离心20 min,将细胞收入50 ml 锥形离心管中(每管收2~3 L 培养液中的细胞)。进行步骤2。
         
        1b.  收集单层培养的细胞:单层细胞长满后去掉培养液。用PBS洗1次。将细胞刮入新鲜PBS液里,倒进锥形离心管中。进行步骤2。

        2.  1 850 g 离心10 min。
         
        3a.  转瓶培养细胞:测量压紧后细胞的体积。将细胞重悬于约5倍于其pcv的PBS液中,1 850 g 离心10 min。进行步骤4。

        3b.  单层培养细胞:测量pcv,进行步骤4。

        4.  快速地将沉淀的细胞重悬于5倍体积的低渗缓冲液中,1 850 g 离心10 min。将细胞沉淀重悬于3倍于原pcv的低渗缓冲液中,放置在冰上10 min,让细胞肿胀。
         
        5.  在Dounce氏玻璃匀浆器中用B号研杵缓馒上下抽提10次以上。用台盼蓝染色排斥法在显微镜下检査细胞裂解滑况(应大于80%~90%)。

        6.  3 300 g 离心15 min,保留上清用来制备S-100细胞质提取物。

        7.  测量第6步离心沉淀的压紧后的细胞核体积。用1/2 pnv体积的低盐缓冲液重悬细胞核(必要时用Dounce氏玻璃匀浆器匀浆一次)。

        8.  在轻轻搅拌的同时,逐滴加入1/2 pnv体积的高盐缓冲液。终浓度应约为300 mmol/l。
         
        9.  25 000 g 离心30 min,测量核提取物的电导率(用上请,见步骤10)。

        10.  将核提取物加入透析管中,在50倍体积的透析液中进行透析,直到提取物的电导率和透析液一致为止(当提取物的KCl浓度达到100 mmol/l 时)。尽量缩短透析时间。
         
        11.  将提取物从透析袋中移出45 000 g 离心20 min。
         
        12.  用Bradford分析法测定上清中蛋白质的浓度。分装,浸入液氮中速冻,- 80℃保存。

        注意事项

        所有步骤的操作均在0〜4℃进行,在冷室内操作更好。缓冲液和设备要预冷。所有离心均在4℃进行,转子要预冷。

        常见问题

        细胞核提取方法的优化:

        1.  按基本方案中歩骤1~7操作。

         

        2.  将细胞核悬液分成5等份。在冷室内不断搅拌,按如下方法在每份悬液中加入1/3体积髙盐缓冲液,在第1份中加浓度最低(0.8 mol/l)的高盐缓冲液,其余各份中依次加入KCl浓度逐渐增髙(直到1.6 mol/l)的高盐缓冲液。轻轻混合30 min。

        来源:丁香实验

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