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上海达为科生物科技有限公司
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TRAP染色实验
一、定义与原理
TRAP(抗酒石酸酸性磷酸酶)染色是一种特异性检测破骨细胞的组织化学染色技术。其核心原理基于破骨细胞高表达的TRAP酶活性:在含酒石酸的酸性条件下,TRAP能水解底物萘酚AS-BI磷酸盐,生成的萘酚AS-BI与显色剂(如六偶氮副品红或Fast Red)结合形成不溶性红色沉淀,从而在显微镜下定位破骨细胞。该酶对酒石酸抑制具有抗性,可排除其他酸性磷酸酶的干扰,提高检测特异性。
二、实验步骤(以石蜡切片为例)
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样本预处理
- 脱蜡至水:依次用二甲苯Ⅰ(20分钟)、二甲苯Ⅱ(20分钟)、梯度乙醇(无水乙醇→95%→85%→75%)处理,最后流水冲洗。
- 固定:使用4%多ju甲醛或TRAP固定液(2-8℃固定30秒至3分钟)。
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TRAP工作液配制
- 按比例混合醋酸缓冲液、六偶氮副品红、萘酚AS-BI磷酸盐溶液,过滤后避光保存(需现配现用)。
- 示例配方:50 μL副品红溶液 + 50 μL亚xiao酸钠溶液 → 加入100 μL AS-BI磷酸盐底物液 → 混合1.8 mL反应缓冲液 → 过滤。
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染色与孵育
- 预孵育:切片在湿盒中37℃纯水孵育2小时,去除内源性磷酸酶干扰。
- 显色:滴加TRAP工作液,37℃避光反应20-60分钟(时间依样本活性调整)。
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复染与脱水
- 核染色:苏木素染液(1-2分钟)或甲基绿(5-15分钟)复染,分化液处理后再水洗返蓝。
- 脱水封片:梯度乙醇脱水→二甲苯透明→中性树胶封固。
三、试剂与仪器
| 主要试剂 | 功能 | 保存条件 |
|---|---|---|
| TRAP固定液 | 固定样本 | 2-8℃避光 |
| 萘酚AS-BI磷酸盐 | 酶反应底物 | -20℃避光 |
| 六偶氮副品红 | 显色剂 | 室温避光 |
| 苏木素/甲基绿 | 核复染 | 2-8℃避光 |
仪器:湿盒、37℃温箱、光学显微镜、切片机、滤膜(0.45 μm)
四、结果判读
- 阳性信号:破骨细胞胞浆呈酒红色或紫红色颗粒,细胞核为浅蓝色(苏木素)或绿色(甲基绿)。
- 定量分析:可通过阳性细胞计数或半定量评分(如染色强度分级:0-3分;阳性细胞比例:0-3分)评估破骨细胞活性。
- 特异性验证:需设置阴性对照(如未诱导的RAW264细胞)以排除非特异性染色。

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文献和实验实验流程:多靶点免疫荧光染色的实验操作与普通单标记免疫组化流程相似。试剂盒中的荧光染料可以在HRP酶的作用下将信号共价结合到抗原上,随后即可衔接下一轮单标染色,直至全部标记完成,即可复染DAPI后封片观察。1.脱蜡水合:1)新鲜二甲苯浸片10min,重复3次。2)梯度乙醇浸片,100% 5min;95% 5min;70% 2min。3)灭菌水洗片1min,重复3次。4)10%中性福尔马林浸片10min,灭菌水洗片1min,重复3次。2.微波修复:1)将脱蜡水合后的玻片置于修复杯中,用抗原
大家在实验过程中,是不是经常会用到各种染色法?但是染色方法如此之多,其具体方法与步骤又有什么区别?学霸君非常的贴心,帮大家整理了各种染色方法,并作了汇总。以下是从 A 至 V 的染色大法一览表
水质对免疫组化染色结果的影响显著: 在免疫组化染色过程中,实验用水一般用来配制两种试剂: 01 抗原修复液 包括柠檬酸(pH6.0) 、EGTA(pH 9.0) 和EDTA(pH9.0) 等种类,主要用于抗原修复。在免疫组化染色前,必须进行抗原修复,使抗原决定簇充分暴露,以便完全彻底地与抗体结合。未进行抗原修复的抗体即使阳性,其阳性细胞数量及染色强度要明显比进行过抗原修复的少、弱。电导率高的水因杂质存在容易影响溶液pH值,pH值或高或低都会造成抗原修复不佳,抗原决定簇不能完全彻底暴露
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