2×CTAB提取液

中文名:2×CTAB提取液

英文名:2×CTAB Solution

CAS:N/A

级别:N/A

分子量:N/A

分子式:N/A

纯度:N/A

储存条件:RT
产品简介

储存条件：常温保存，保质期2年。
 

产品说明：

CTAB(hexadecyltrimethylammonium bromide,十六烷基三甲基溴化铵)，是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性。在高离子强度的溶液中(0.7mol/L NaCl),CTAB与蛋白质和多聚糖形成复合物，只是不能沉淀核酸.通过有机溶剂抽提，去除蛋白、多糖、酚类等杂质后加入乙醇沉淀即可使核酸分离出来。

使用方法：

一、试剂准备

1、氯仿-异戊混合液(24:1)。96mL氯仿加4mL异戊混匀。

2、65℃预热CTAB溶液后将1mL β－巯基乙醇加入CTAB溶液中。

二、操作步骤

1、液氮研磨0.1ｇ左右植物组织，转移到1.5mL离心管中，加入700uL 2×CTAB提取液（已加入β－巯基乙醇）。或者液氮研磨之后，在研钵中加入700uL 2×CTAB提取液，然后吸取到1.5mL的离心管中(建议总体积不要超过1mL)。

2、将离心管置于65℃水浴30min-1h，期间每隔10min左右轻轻晃动离心管。

3、水浴完成后冷却2min，加入0.5mL的氯仿-异戊混合液，剧烈震荡混匀。10000-12000rmp离心5-10min。

4、取上步离心管中上清液到新的离心管中。

注意：上步离心后应该会分三层：上层为水相，中间为蛋白和植物碎片，下层为有机相。吸取时避免触及蛋白和有机相。如不小心吸取到中下层，或者中间层较厚，建议少吸取水相，或吸取之后再加入500uL氯仿-异戊混合液，重新混匀离心取上清。

5、在上清中加入等体积的异丙醇，颠倒混匀。(或加入2倍体积的无水乙醇和1/10体积的3M pH5.2的乙酸钠) 。置于-20℃沉淀30min以上，12000rmp离心10min，弃上清。

 

6、 沉淀用75%乙醇洗涤1次，12000 r/min离心3-5 min，弃上清，沉淀自然干燥后溶于50uL去离子水或者TE中,加入1 uL RNase（20 ug/mL），37摄氏度温育30 min。

5、置于-20℃保存。

备选方案：

1、可以加入适量PVP去除多糖多酚污染。PVP)是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，有效去除多酚，减少DNA中酚的污染；同时它也能和多糖结合，有效去除多糖。

2、可以在加入CTAB提取液之后震荡混匀，5000rmp离心2min取上清，沉淀为未研磨充分的碎片或者不溶物。然后在上清中加入氯仿-异戊混合液纯化，可以有效去除未裂解的植物碎片。

3、可以在加氯仿-异戊混合液之前，加入tris酚(pH>7.8)-氯仿混合液震荡离心取上清后，再用氯仿-混合液纯化。可以有效去除蛋白污染。

常见问题：

问题一：DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反应。

     原因：1.DNA中含有蛋白、多糖、多酚类杂质

2.DNA在溶解前，有酒精残留，酒精抑制后续酶解反应

3.DNA中残留有金属离子

     对策：1.重新纯化DNA，去除蛋白、多糖、多酚等杂质（具体方法见前）

2.重新沉淀DNA，让酒精充分挥发

3.增加70％乙醇洗涤的次数（2-3次）

 问题二：DNA降解，DNA提取量少。

     原因：1.实验材料不佳或量少

2.破壁或裂解不充分

3.沉淀不完全

4.洗涤时DNA丢失

      对策： 1.尽量选用新鲜（幼嫩）的材料

2.动植物要匀浆研磨充分；G＋菌、酵母裂解前先用生物酶或机械方式破壁

3.高温裂解时，时间适当延长（对于动物细胞、细菌可增加裂解液的用量）

4.低温沉淀，延长沉淀时间

5.加辅助物，促进沉淀

6.洗涤时，最好用枪头将洗涤液吸出，勿倾倒

特别提示：本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！