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- 人肝癌7402、7721、HepG-2肝癌原位移植
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- 2026年02月05日
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北京永欣康泰科技发展有限公司
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人肝癌7402、7721、HepG-2肝癌原位移植
人肝癌7402、7721、HepG-2裸鼠原位移植模型
1、实验动物：
BALC/c裸小鼠，4-5周龄
2、细胞株准备：
细胞株以DMEM培养液、10%胎牛血清、1%双抗、10%MEM维生素溶液及MEM非必需氨基酸溶液常规培养。
3、原位移植手术：
使用小动物气体麻醉机（麻醉剂：异氟烷）将裸鼠麻醉,麻醉成功后，用75%酒精消毒裸小鼠的腹部皮肤,暴露肝脏,用微量加样器将制备好的细胞悬液或者组织微粒注射于裸鼠肝叶实质内,每只注射细胞1×106，缝合皮肤后置于SPF条件下继续饲养.
4、给药时间：术后第2日
5、给药周期：4周-6周
6、评价方法：小动物活体成像、取材时剥取肿瘤称重、计算抑瘤率、画出生存曲线. 
| 鼠源肿瘤模型（免疫健全大、小鼠） | ||||
| 类别 | 编号 | 模型 | 细胞系 | 动物品系 |
| 腹水型 | 1 | 白血病 | L1210 | DBA纯系小鼠 |
| 2 | 肝癌 | H22 | KM远交系小鼠 | |
| 3 | 宫颈癌 | U14 | KM远交系小鼠 | |
| 4 | 肉瘤 | S180 | KM远交系小鼠 | |
| 5 | 肉瘤 | WK256 | 大鼠 | |
| 皮下移植 | 6 | 肺癌 | LA795 | 739纯系小鼠 |
| 7 | 肺癌 | Lewis | C57纯系小鼠 | |
| 8 | 肝癌 | H22 | KM远交系小鼠 | |
| 9 | 肝癌 | Hep1-6 | C57纯系小鼠 | |
| 10 | 结肠癌 | Z38 | C57纯系小鼠 | |
| 11 | 前列腺癌 | RM-1 | C57纯系小鼠 | |
| 12 | 黑色素瘤 | B16 | C57纯系小鼠 | |
| 13 | 肉瘤 | S180 | KM远交系小鼠 | |
| 14 | 肉瘤 | WK256 | 大鼠 | |
| 15 | 脑瘤 | G-422 | KM远交系小鼠 | |
| 16 | 宫颈癌 | U14 | KM远交系小鼠 | |
| 17 | 乳腺癌 | EMT-6 | Balb/c纯系小鼠 | |
| 18 | 乳腺癌 | MA891（高转移） | C57纯系小鼠 | |
| 19 | 乳腺癌 | 4T1 | Balb/c纯系小鼠 | |
| 原位移植 | 20 | 肝癌 | Hep1-6 | C57/L小鼠 |
| 21 | 结肠癌 | C26 | Balb/c纯系小鼠 | |
| 19 | 乳腺癌 | 4T1 | Balb/c纯系小鼠 | |
| 人源癌细胞系移植模型（免疫缺陷鼠） | ||||
| 类别 | 编号 | 模型 | 细胞系 | 动物品系 |
| 皮下移植 | 1 | 人舌癌 | TCA | 裸鼠 |
| 2 | 人结肠癌 | HCT-8 | 裸鼠 | |
| 3 | 人乳腺癌 | MCF-7 | 裸鼠 | |
| 4 | 大细胞肺癌 | H460 | 裸鼠 | |
| 5 | 人胰腺癌 | JF305、panc-1 | 裸鼠 | |
| 6 | 人胃癌 | BGC803 | 裸鼠 | |
| 7 | 人胃癌 | BGC823 | 裸鼠 | |
| 8 | 人肝癌 | 7402 | 裸鼠 | |
| 9 | 人肝癌 | 7721 | 裸鼠 | |
| 10 | 人肝癌 | HepG-2 | 裸鼠 | |
| 11 | 人肺癌 | PG | 裸鼠 | |
| 12 | 人肺癌 | GLC-82 | 裸鼠 | |
| 13 | 人食管癌 | 9706 | 裸鼠 | |
| 14 | 人脑瘤 | SF-763 | 裸鼠 | |
| 15 | 人骨肉瘤 | OS-732 | 裸鼠 | |
| 16 | 人卵巢癌 | SKOV3 | 裸鼠 | |
| 17 | 人乳腺癌 | BT474、MDA-MB-231 | 裸鼠 | |
| 原位移植 | 18 | 人胰腺癌 | JF305、panc-1 | 裸鼠 |
| 19 | 人胃癌 | BGC803 | 裸鼠 | |
| 20 | 人胃癌 | BGC823 | 裸鼠 | |
| 21 | 人乳腺癌 | BT474、231 | 裸鼠 | |
| 22 | 人肝癌 | 7402 | 裸鼠 | |
| 23 | 人肝癌 | 7721 | 裸鼠 | |
| 24 | 人肝癌 | HepG-2 | 裸鼠 | |
| 25 | 人结肠癌 | HCT-8 | 裸鼠 | |
实验室可构建的动物模型 ：
| 构建动物模型名称 | 适用范围 |
| 1、裸鼠肿瘤（皮下、原位）动物实验 | 胰腺、肝、胃原位接种、皮下接种 |
| 2、兔 腹主动脉、颈动脉硬化（球囊法）模型 | 稳定制备 颈动脉、腹主动脉硬化模型 |
| 3、心肌缺血、大、小鼠、兔、小型猪心电图、心脏超声、病理评价 | 心肌缺血及再灌注、心梗、血压测定（麻醉及清醒状态下）等 |
| 4、Ⅰ、Ⅱ型糖尿病大小鼠、兔动物模型 | 高脂诱导+STZ制备糖尿病模型及糖尿病并发症研究，药效评价 |
| 5、骨质疏松大鼠、小鼠实验（去势） | 老年性骨质疏松相关疾病临床前药效评价 |
| 6、股骨头坏死、骨缺损、鼠、兔模型 | 镇静、镇痛动物模型，行为学模型制作及药物筛选 |
| 7、Apoe小鼠动脉粥样硬化整体实验 | 高脂饲养、取材、病理实验、大体染色等 |
| 8、急性粒细胞白血病动物实验 | |
| 9、肾结石快速成模大鼠模型 | 乙二醇致大鼠肾脏草酸钙结石模型 |
| 10、眼科大小鼠模型、视网膜铺片、 玻璃体腔内注射 |
眼科疾病模型及相关检测方法 |
| 11、脑缺血、帕金森、脑出血动物模型 | 脑病实验、颅内注射、技术成熟稳定 |
| 12、肾脏缺血、肾移植、肾衰动物模型 | 肾脏缺血、肾移植、肾衰竭实验及检测平台 |
检测平台
| 服务项目 | 服务承诺 | 服务周期 | 样本种类 |
| 病理切片、免疫组化 | 染色结果照片 | 2-3周 | 组织 |
| Western blotting | 胶片 | 1-2周 | 蛋白样本或组织 |
| 流式细胞服务 | 散点图、分析数据、设备信息等 | 1-2周 | 血样、骨髓等 |
| 细胞凋亡检测 | 凋亡图、数据分析 | 细胞 | |
| RT-PCR | 扩增图 | 1-2周 | RNA或组织 |
| 血压监测（无创式） | 实时血压数据 | 大、小鼠 |
备注：以上只是常规制备的动物模型种类，如果有其他动物模型制备的需求，也可以按照方案进行定制
永欣康泰坚持：
上门取样、客服专人跟进项目进度、随时汇报实验进展、为您有效降低科研成本、缩短实验周期。
秉承工匠精神 保持严谨态度、专业技术
拓宽思路和眼界 积极探索新的模型构建方法
不断积累经验 完成客户的每一项托付
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文献和实验AbstractAIM:To study the effect of a varying concentrations of ars enic trioxide on human hepatoma cell line BEL-7402 cultured in vitro and its mechanism of action.METHODS:The BEL-7402 cells were treated with arsenic trioxide (at the concentrations
肝刺激因子对人肝癌细胞BEL-7402 p21ras表达的影响
介导下游信号传导的调节作用, 本实验观察了HSS对人肝癌细胞系BEL-7402 p21ras表达的影响, 以进一步探讨HSS作用的可能机制。1.材料和方法1.1 实验动物[17] 雄性初断乳SD大鼠(60～90 g), 节律光照饲养1周(7∶00～19∶00光照, 19∶00～次日7∶00避光), 自由饮食。1.2 HSS的提取及部分纯化［18］将上述SD大鼠于第8日7∶00～9∶00之间断颈处死, 剖腹摘取肝脏, 制备HSS。将HSS浓缩(CT60, 丹麦Heto生产)至2 ml
恶性肿瘤的主要生物学特性之一是转移性，建立与临床表现相近的动物模型是研究的关键环节。人体肿瘤移植于裸小鼠建立人癌异种移植动物模型为深入研究提供了可能。原位移植可为人体肿瘤生长提供相似的微环境，更利于肿瘤恶性行为的表现，因此，大多采用原位移植的方法建立肿瘤转移动物模型。 根据我们多年的肿瘤模型构建经验，为大家介绍几种我们常遇到的几种肿瘤模型构建方法，以供参考。 一、人肝癌原位移植模型 将人肝癌细胞株（如：HepG2等）传代培养后，收集对数生长期的细胞制成
