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- 详细信息
- 文献和实验
- 技术资料
- 库存:
65
- 英文名:
NMY51 Chemically Competent Cell
- 保质期:
12个月
- 供应商:
江西江蓝纯生物试剂有限公司
- 保存条件:
避光保存
- 规格:
10×100ul/50×100ul
| 规格: | 10×100ul | 产品价格: | ¥240.0 |
|---|---|---|---|
| 规格: | 50×100ul | 产品价格: | ¥1020.0 |
NMY51 Chemically Competent Cell
产品货号: JLC-G041
保存条件: -80℃
产品规格:10×100μl 50×100μl
产品介绍:
基因型 :
MATahis3200trp1-901leu2-3,112ade2LYS2::(lexAop)4-HIS3ura3::(lexAop)8-lacZade2::(lexAop) 8-ADE2 GAL4
简单说明 :
DUALmembrane系统是DUALsystems BioTech公司开发的专门筛选跨膜蛋白间相互作用的检测技术,它利用分离的泛素系统(split-ubiquitin)直接检测天然状态下膜蛋白间的相互作用,是目前市面上检测膜蛋白间相互作用的酵母双杂系统。此系统采用 NMY51酵母菌株,可直接转化质粒进行蛋白互作验证或筛库试验;此菌株Transformation marker为: trp1, leu2-3,报告基因为:HIS3, ADE2 和lacZ,步通过营养缺陷型报告基因(HIS3, ADE2)进行选择性生长筛选,进一步通过 LacZ 报告基因进行β-半乳糖分析显色的定量或半定量筛选,三个独立的报告基因,受不同启动子的调控,降低假阳性几率。
原理:泛素(ubiquitin)分子量很小,由 76aa 残基组成;泛素作为降解信号分子,可以连接另外一种蛋白质的 N 端,然后被泛素专一性蛋白酶(UBPs)识别,从而导致与泛素相连的蛋白被酶解。泛素可以人为分成两部分:N 端(Nub),C 端(Cub)。首先,人为地将泛素 Nub 的 3 位异亮氨酸突变为甘氨酸(NubI 突变为NubG)。这样与 Cub 的亲合力大大降低,避免了 Cub 和 Nub 自我结合或接近的可能性。其次,将Cub 部分与人工合成的 LexA-VP16 转录激活因子融合成一个融合蛋白Cub-LexA-VP16。正常条件下 NubG不与Cub 结合,UBPs 也不能识别分离的泛素,转录激活因子也不会被切下来。后,将要检测的蛋白质分别与NubG和Cub融合,形成 bait 融合蛋(bait-cub-LexA -VP16)和 prey 融合蛋白(prey-NubG)。
如果 bait 和 prey发生相互作用,就会促使 NubG 和 Cub 的相互接近,被 UBPs 识别,导致 LexA-VP16 的解离,进入核内,从而激活报告基因的转录。 此系统可使用四种Bait质粒:pBT3-N,pBT3-SUC,pBT3-STE,pBT3-C,筛选标志均为LEU;三种Prey质粒:pPR3-C ,pPR3-SUC,pPR3-STE,筛选标志均为TRP。 High5TM系列NMY51感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,经PGADT7质粒检测转化效率>104cfu/μg DNA 。
操作说明 :
1. 取100 µl冰上融化的NMY51感受态细胞,依次加入预冷的目的质粒2-5 µg,Carrier DNA (95-100度5 min,快速冰浴,重复一次) 10 µl,PEG/LiAc 500µl并吸打几次混匀,30度水浴30 min (15 min时翻转6-8次混匀)。
2. 将管放42℃水浴15 min (7.5 min时翻转6-8次混匀)。
3. 5000 rpm离心 40 s弃上清,ddH2O 400 µl 重悬,离心 30s弃上清。
4. ddH2O 50 µl重悬,涂板,29℃培养48-96 h。
Preparation of Media:
YPDA (1L):
Tryptone 20g
yeast extract 10g
0.2% adenine 15ml
补水到 950ml, 用盐酸调PH到 6.5
Agar 20g (for plates only)
121度,15分钟高压灭菌,待培养基温度降到55度时,加入已过滤的40% 葡萄糖 50 ml0.2% adenine(1L)Adenine 2g补水到1L,溶解后高压灭菌或0.22um滤膜过滤除菌
注意事项 :
1. 感受态细胞在冰上融化。
2. 转化高浓度的质粒可相应减少终用于涂板的菌量。
3. 同时转化2-3种质粒时可增加质粒的用量。
4. NMY51酵母菌株对高温敏感,适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率呈指数下降。
5. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢,以转化涂板为例:涂YPDA平板29℃,48h培养可见直径1mm克隆;涂SD单缺平板29℃,48-60h培养可见直径1mm克隆,涂SD双缺平板29℃,60-80h培养可见直径1mm克隆,涂SD三缺或四缺平板平板29℃,80-90h培养可见直径1mm克隆。
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文献和实验相关专题 酵母感受态细胞制备可以:(1)用于建立酵母转化体系;(2)用于酵母表达系统 构建;(3)用于酵母其他分子生物学研究。 一、试剂与耗材 1. 试剂 细菌用-酵母提取物(Fisher)、 细菌用-蛋白胨(Fisher)、葡萄糖(Fisher)、细菌用-琼脂粉、去离子水、甘油(Sigma)、二甲基亚砜(Sigma)、聚乙二醇3350(Sigma)、醋酸锂(Sigma)、鲑鱼精子细胞DNA
1.5ml缓冲液B,彻底混匀; 30℃水浴孵育1h; 室温下2000g离心10min,去除上清液,菌体沉淀重悬于1.5ml缓冲液C中; 离心样品,去除上清液,轻微操作将样品重悬于0.2ml缓冲液C中; 将所有转化液铺于选择性平板,于30℃孵育3~4天后,鉴定; 3、毕氏酵母电转化法 (1)E.coli TOP10F’感受态细胞的制备 取10ul TOP10F’菌液,接种于200ml LB液体培养基中活化培养,37℃,200 rpm,16~18小时。取100ul菌液接种于200ml液体LB
酿酒酵母感受态细胞的制备 (1)从YPD平板上挑取一个新鲜的酿酒酵母EBY100单克隆至10 ml YPD液体培养基,30℃,250 rpm 培养过夜。 (2)测定过夜培养物的OD600值为3.0~5.0之间。 (3)将10 ml YPD过夜培养物稀释至OD600值为0.2~0.4。 (4)在28~30℃摇床中继续培养3~6 hr,使其OD600值达到0.6~1.0。 (5)于室温1500 g 离心5 min 收集酵母细胞,弃上清。 (6)用10 ml 洗液洗酵母










