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- 文献和实验
- 技术资料
- 保存条件:
负20度
- 保质期:
2年
- 供应商:
钦诚生物
- 规格:
5ug
pSPYCE-35S植物双分子荧光质粒
基本信息
原核抗性: 卡那霉素Kan
筛选标记: G418
克隆菌株: 大肠杆菌DH5α
培养条件: LB/37℃
质粒图谱
pSPYCE-35S植物双分子荧光质粒使用说明:
1、收到质粒干粉后请先5000rpm离心1min,再加入20μl无菌水溶解质粒,室温放置1min;
2、从-80℃冰箱中取出相应的感受态,置于冰盒上解冻,并做好标记;
3、取2μl质粒加至100μl感受态中,冰浴30min;
4、42℃热激90s,再冰浴2min;
5、加入900μl无抗的LB液体培养基,180rpm震荡培养45min;
6、6000rpm离心5min,仅留100ul上清混匀菌体沉淀;
7、混匀后的菌液加至对应抗性的LB平板上,倒入适量玻璃珠,涂匀液体;
8、将平板正向培养1h,再倒置培养12h~16h;
9、挑取单克隆菌落至对应抗性的LB液体培养基中,震荡培养12h~16h,根据实验需要提取质粒。
pSPYCE-35S植物双分子荧光质粒注意事项:
1、如果您收到的是甘油菌种,请先四区划线,挑取单克隆培养。
2、如果第二天转化平板长的过多,请将质粒按比例稀释后再转化。
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文献和实验在蛋白-蛋白互作研究中,荧光互补技术因其直观、原位、无需裂解细胞等优势,成为越来越多科研人员的首-选。 但面对BiFC(双分子荧光互补) 和LCA(萤光素酶互补实验) 这两项技术,很多人会有疑问:它们有什么区别?我的实验该选哪一个? 今天,我们结合金开瑞荧光系列实验服务的实际经验,把这两种技术讲清楚。 一、BIFC技术 01 BiFC:看蛋白互作发生的“位置” 技术原理 双分子荧光互补(BiFC)技术将荧光蛋白(如YFP)切成N端和C端
的,为此政府已建立了检测食品中转基因成分的体制。其中,最重要的是转基因检测方法的可靠性和有效性。所以我们利用分子生物学技术建立起一套基于PCR反应的实验方案,用于食品质控实验室的工作。最要害的是第一步:DNA提取,我们做了很严格的监控 。我们依据植物基因组和质粒DNA的提取效率来选择DNA提取试剂盒。整个提取过程包括破坏细胞壁、去除RNA和利用沉淀去除蛋白质,然后将DNA吸附在层析柱上,经过洗涤后再洗脱下来。类似的方法已经用于从其他一些植物和病毒中提取DNA。PCR反应的过程分为三个阶段:(1)通过加热
三篇顶刊论文,同一个技术选择——BiFC如何破解植物蛋白互作难题?
酸)、生物与非生物胁迫响应等过程,都离不开对蛋白互作的深入理解。 今天,我们要介绍的双分子荧光互补技术(Bimolecular Fluorescence Complementation, BiFC),就是研究植物蛋白互作的得力工具。 什么是BIFC技术? BiFC技术的原理十分巧妙:将一个完整的荧光蛋白(如YFP)在特定位置切割成两个不发光的片段(N端片段和C端片段),分别与待研究的两个目标蛋白(蛋白A和蛋白B)融合表达。 核心机制: ●如果蛋白A和蛋白B能够发生
技术资料暂无技术资料 索取技术资料






