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NMY51酵母感受态细胞

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  • 2025年07月14日
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    • 英文名

      NMY51 Chemically Competent Cell

    • 保质期

      三个月

    • 供应商

      北京百奥莱博科技有限公司

    • 保存条件

      -80℃

    • 规格

      10×100μl/50×100μl

    特别提示:包括NMY51酵母感受态细胞在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!


    产品名称:NMY51酵母感受态细胞
    英文名称:NMY51 Chemically Competent Cell
    产品规格:10×100μl/50×100μl

    DUALmembrane系统是专门筛选跨膜蛋白间相互作用的检测技术,它利用分离的泛素系统(split-ubiquitin)直接检测天然状态下膜蛋白间的相互作用,是目前市面上唯*(代"一")检测膜蛋白间相互作用的酵母双杂系统。
    此系统采用NMY51酵母菌株,可直接转化质粒进行蛋白互作验证或筛库试验;此菌株Transformation marker为:trp1,leu2-3,报告基因为:HIS3,ADE2和lacZ,第一步通过营养缺陷型报告基因(HIS3,ADE2)进行选择性生长筛选,进一步通过LacZ报告基因进行β-半乳糖分析显色的定量或半定量筛选,三个独立的报告基因,受不同启动子的调控,降低假阳性几率。
    原理:泛素(ubiquitin)分子量很小,由76aa 残基组成;泛素作为降解信号分子,可以连接另外一种蛋白质的N端,然后被泛素专一性蛋白酶(UBPs)识别,从而导致与泛素相连的蛋白被酶解。
    泛素可以人为分成两部分:N端(Nub),C端(Cub)。首先,人为地将泛素Nub的3位异亮*酸突变为甘*酸(NubI突变为NubG)。这样与Cub的亲合力大大降低,避免了Cub和Nub自我结合或接近的可能性。其次,将Cub部分与人工合成的LexA-VP16转录激活因子融合成一个融合蛋白Cub-LexA-VP16。
    正常条件下NubG不与Cub结合,UBPs也不能识别分离的泛素,转录激活因子也不会被切下来。最后,将要检测的蛋白质分别与NubG和Cub融合,形成bait融合蛋(bait-cub-LexA-VP16)和prey融合蛋白(prey-NubG)。
    如果bait和prey发生相互作用,就会促使NubG和Cub的相互接近,被 UBPs识别,导致LexA-VP16的解离,进入核内,从而激活报告基因的转录。
    此系统可使用四种Bait质粒:pBT3-N,pBT3-SUC,pBT3-STE,pBT3-C,筛选标志均为LEU;三种Prey质粒:pPR3-C,pPR3-SUC,pPR3-STE,筛选标志均为TRP。NMY51感受态细胞经特殊工艺制作,-80℃可保存三个月,经PGADT7质粒检测转化效率>104cfu/μg DNA。
    保存条件:-80℃
    基因型:
    MATahis3200trp1-901leu2-3,112ade2LYS2::(lexAop)4-HIS3ura3::(lexAop)8-lacZade2::(lexAop)8-ADE2 GAL4
    操作说明:
    1.取100 μl冰上融化的NMY51感受态细胞,依次加入预冷的目的质粒2-5μg,Carrier DNA(95-100度5min 快速冰浴,重复一次)10 μl,PEG/liAC 500μl并吸打几次混匀,30度水浴30分钟(15 min时翻转6-8次混匀)。
    2.将管放42度水浴15min(7.5 min时翻转6-8次混匀)。
    3.5000 rpm离心40s弃上清,ddH2O 400μl重悬,离心30s弃上清。
    4.ddH2O 50μl重悬,涂板,29℃培养48-80h。
    注意事项:
    1.感受态细胞最好在冰上融化。
    2.转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。
    3.同时转化2-3种质粒时可增加质粒的用量。
    4.NMY51酵母菌株对高温敏感,最适生长温度为27-30℃;高于31℃,生长速度和转化效率呈指数下降。
    5.酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢,以转化涂板为例:涂YPDA平板29℃,48h培养可见直径1mm克隆;涂SD单缺平板29℃,48-60h培养可见直径1mm克隆,涂SD双缺平板29℃,60-80h培养可见直径1mm克隆,涂SD三缺或四缺平板平板29℃,80-90h培养可见直径1mm克隆。

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      相关专题   酵母感受态细胞制备可以:(1)用于建立酵母转化体系;(2)用于酵母表达系统 构建;(3)用于酵母其他分子生物学研究。 一、试剂与耗材 1. 试剂 细菌用-酵母提取物(Fisher)、 细菌用-蛋白胨(Fisher)、葡萄糖(Fisher)、细菌用-琼脂粉、去离子水、甘油(Sigma)、二甲基亚砜(Sigma)、聚乙二醇3350(Sigma)、醋酸锂(Sigma)、鲑鱼精子细胞DNA

    • 毕氏酵母感受态细胞制备及转化

      1.5ml缓冲液B,彻底混匀; 30℃水浴孵育1h; 室温下2000g离心10min,去除上清液,菌体沉淀重悬于1.5ml缓冲液C中; 离心样品,去除上清液,轻微操作将样品重悬于0.2ml缓冲液C中; 将所有转化液铺于选择性平板,于30℃孵育3~4天后,鉴定; 3、毕氏酵母电转化法 (1)E.coli TOP10F’感受态细胞的制备 取10ul TOP10F’菌液,接种于200ml LB液体培养基中活化培养,37℃,200 rpm,16~18小时。取100ul菌液接种于200ml液体LB

    • 酿酒酵母感受态细胞的制备、转化

      酿酒酵母感受态细胞的制备 (1)从YPD平板上挑取一个新鲜的酿酒酵母EBY100单克隆至10 ml YPD液体培养基,30℃,250 rpm 培养过夜。 (2)测定过夜培养物的OD600值为3.0~5.0之间。 (3)将10 ml YPD过夜培养物稀释至OD600值为0.2~0.4。 (4)在28~30℃摇床中继续培养3~6 hr,使其OD600值达到0.6~1.0。 (5)于室温1500 g 离心5 min 收集酵母细胞,弃上清。 (6)用10 ml 洗液洗酵母

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