北京禽流感病毒H5亚型荧光PCR检测试剂盒(AIV-H5)促

特别声明：本产品及我公司所售其他产品均为科研类试剂产品，严禁用于药物、医疗及其他非科研用途。

北京百奥莱博生产销*(代"售")的北京禽流感病毒H5亚型荧光PCR检测试剂盒(AIV-H5)促销，是高品质的动物疫病PCR检测试剂盒产品，欢迎的您垂询订购。

名称：北京禽流感病毒H5亚型荧光PCR检测试剂盒(AIV-H5)促销
等级：科研试剂
规格：48次/盒|96次/盒
品牌：百奥莱博
编号：SYA324
一、简介：
本试剂盒用一对禽流感病毒H5亚型特异性引物，结合一条特异性荧光探针，用一步法荧光RT-PCR技术对禽流感病毒H5亚型RNA进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。本试剂盒中禽流感病毒H5亚型的探针报告基团为FAM。

二、用途：
本试剂盒适用于喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各种组织样品、尿囊液及细胞培养液中的禽流感病毒H5亚型的特异性检测。适用于禽流感病毒H5亚型感染的辅助诊断、监测及流行病学调查，其检测结果仅供临床参考。

三、试剂盒组成：(48T)
组份 数量 规格
禽流感H5荧光qRT-PCR反应液(H5-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
无核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
阴性对照(NTC) 1管 50μL/管
阳性对照(H5-PTC) 1管 50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为6个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与RNA提取
6.1 样品的采集
按照相关标准采集。标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-80℃，但不能超过6个月，标本运送应采用0℃冰壶。
6.1.1 血清：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入无菌的干燥玻璃管，室温(22-25℃)放置30-60min，血标本可自发完成凝集析出血清，或直接使用水平离心机，3000rpm离心5min，吸取上层血清，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.2 血浆：用一次性无菌注射器抽取静脉血2mL，注入含EDTA2Na(乙二*(代"胺")四乙酸二*)或柠檬酸*抗凝剂的玻璃管，立即轻轻颠倒玻璃管混合5-10次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5-10min后即可分离出血浆，转移至1.5mL灭菌离心管。
6.1.3 拭子、分泌物等样品：在装有拭子或分泌物的离心管中加入500μL PBS或生理盐水，剧烈振荡30s。棉拭子尽量挤出液体转移到无RNA酶污染的离心管中，6000rpm离心20s，取上清备用。
6.1.4 病灶组织样品：称取组织约0.1g于研磨器或组织匀浆器中研磨(最好置于冰上或加入液氮)，再加1mL生理盐水研磨至无块状物，然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液于1.5mL灭菌离心管中。
6.2 RNA提取
可按常规方法提取，也可采用商品化试剂盒提取病毒RNA。
6.2.1 取无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管，做好标识。
6.2.2 加入600μL裂解液，200μL样本，200μL*仿，混匀器上振荡5 s，4℃ 12000 rpm离心15 min。
6.2.3 吸取步骤6.2.2中的上清液转移至新的无RNA酶的1.5 mL Eppendorf离心管中(避免吸出中间层)，加入400 μL 异丙醇，颠倒混匀。
6.2.4 4℃ 12000 rpm离心15 min，弃上清；加入600 μL 75％乙醇。
6.2.5 4℃ 12000 rpm离心10 min，弃上清。打开离心管管盖，室温干燥5 min-10 min。
6.2.6 加入10μL 无核酸酶水，溶解管底的RNA，5000 rpm离心5 s，-20℃保存。若长期保存需放置-80℃冰箱。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光qRT-PCR反应液(H5-qRT-PCRMIX)、酶混合物(EnzymesMIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下：
试剂 每个反应加入的量 N个反应加入的量
荧光PCR反应液 14µL N×14µL
酶混合液 1µL N×1µL
总量 15µL N×15µL
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加15μL，向每管中加入处理后样品/阴性对照(NTC)/阳性对照(H5-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qRT-PCR反应条件
将各反应管放入实时荧光PCR仪器的反应槽内。
推荐循环条件:
反转录(Reverse Transcription) 1循环 45℃ for 10 min
预变性 1循环 95℃ for 10 min
PCR扩增 40循环 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸时收集荧光信号。报告基团：设置为FAM。

八、结果分析
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
(1)阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
(2)阳性对照(H5-PTC)：均产生扩增曲线。
(3)以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35的样本为阳性，表明H5核酸阳性。
(2)Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明H5核酸阴性。
(3)如果35＜Ct值≤40，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
(4)对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行H5qRT-PCR检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明H5核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含RNA酶。
(3)PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



北京禽流感病毒H5亚型荧光PCR检测试剂盒(AIV-H5)促销正在火爆热销，除此之外，为您推荐下别热销产品：

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一、简介：
本试剂盒用一对犬细小病毒特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对犬细小病毒核酸进行体外扩增检测，用于对可疑感染病犬的病原学诊断。

二、用途：
本试剂盒适用于检测咽拭子、痰液，肺、淋巴结等组织以及血清等标本中肺炎支原体(MP)和肺炎衣原体(CP)DNA，适用于肺炎支原体和衣原体感染的辅助诊断。其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：(48T)

 

名称	数量	规格
核酸提取液	2管	1.5ml/管
Taq 酶系	1管	50μl/管
qPCR MIX	1管	1.0ml/管
阳性质控品	1管	50μl/管
阴性质控品	1管	250μl/管

四、荧光PCR 仪器适用范围：取得资格认证的荧光定量PCR仪。

五、储存条件：-20℃避光保存，避免反复冻融，有效期6个月。

六、样本采集及运输：
1. 适用标本：咽拭子、痰液、组织、血液等。
2. 标本采集：
痰液：取受检者深部痰液2-3ml置入5ml离心管，密闭送检。
咽试子：受检者生理盐水漱口，无菌咽试子粘取深部痰液，置入5ml离心管，密闭送检。
灌洗液：取待检者肺灌洗2-3ml，置于5ml离心管，密闭送检。
其他标本：取发病动物血液、组织等标本立即送检。
3. 保存运输：标本建议立即送检，如果需要保存建议于-20℃或者-80度保存，不超过6个月。避免反复冻融。标本运送时应采用0℃冰壶。

七、检测步骤：
1. 核酸提取
1.1 痰液或灌洗液：将痰液或灌洗液充分混匀，取0.5ml转至1.5ml干净离心管，加入等体积4%NaOH，充分混匀，室温放置10min，12000rpm离心5分钟，弃上清，沉淀加50μl核酸提取液，充分混匀，100℃处理10分钟，12000rpm离心5分钟，取上清液4μl做PCR反应。
1.2 咽试子：取1ml生理盐水加入5ml离心管，充分洗涤咽试子，将洗涤液转至1.5ml干净离心管中，13000rpm离心5分钟，弃上清，沉淀加50μl核酸提取液，充分混匀，100℃处理10分钟，12000rpm离心5分钟，取上清液4μl做PCR反应。
1.3 固体组织：剪取约0.5g组织，用生理盐水洗去血污，剪碎加入TE0.5ml转移到匀浆器中匀浆。将匀浆液50ul转移到1.5ml离心管中，加入50μl核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀) 并与沉淀混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清4μl进行PCR反应。
1.4 其他液体标本(培养物或血清等)：取标本1-2ml，13000rpm离心3min，弃上清，沉淀加入50μl核酸提取液(使用前请室温溶解并充分混匀) 并与沉淀混匀，100℃恒温10min，13000rpm离心3min，取上清4μl进行PCR反应。
上述标本也可以选用取得资格认证的商业化试剂盒提取DNA。
2．PCR扩增
从试剂盒中取出qPCR MIX、Taq酶系室温融化并振荡混匀后，瞬时离心。设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：
计算好各试剂的使用量，在一个灭菌洁净离心管中充分混匀，瞬时离心，向设定的N个PCR反应管或反应板中加入21μl上述试剂，然后再分别加入4μl 提取的待测样品、阳性质控品和阴性质控品，瞬时离心。放入荧光定量PCR仪器的反应槽内，按对应顺序设置阳性质控品、阴性质控品以及待测样品，并设置样品名称、报告基团设置为FAM和HEX(或JOE或VIC)，其中FAM基团检测肺炎支原体，HEX(或JOE或VIC)基团检测肺炎衣原体，淬灭基团为TAMRA。
推荐扩增条件为：94℃→2分钟，后94℃ 30秒→55℃ 45秒(采集荧光)，40个循环。
基线调整取6-15个循环的荧光背景信号，阈值设定原则上以阈值线刚超过阴性质控品的检测荧光曲线的最高点。
3. 结果分析判定
反应结束后，针对FAM和HEX(或JOE或VIC)双通道，使用手动调整阈值使阴性质控品Ct 值均在40以上，Ct 值小于35的为阳性；Ct 值在35-40之间，为灰区，需要进行重复试验。重复试验之后，如果Ct 值仍然在35-40之间，判断为阴性。
其中FAM通道为肺炎支原体检测结果，HEX(或JOE或VIC)通道为肺炎衣原体检测结果。
4. 质控标准
阴性质控品：CT值均显示UNDET或者CT=40，即结果为阴性；
阳性质控品：Ct 值均应小于 30，且呈标准“S”型扩增曲线。
以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效，全部试验应重新进行。

八、注意事项：
(1)初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
(2)所有使用的离心管应高压灭菌，而且必须不含DNA 酶。
(3)PCR 操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR 扩增区等)，防止实验室污染。
(4)样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
(5)试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。



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规格：48次/盒|96次/盒
一、简介：
本试剂盒用一对钩端螺旋体特异性引物，结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对钩端螺旋体的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。

二、用途
本试剂盒适用于检测动物内脏、血液等样本中的钩端螺旋体，用于钩端螺旋体感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。

三、试剂盒组成：

组份	数量	规格
Lep反应液(Lep-qPCR MIX)	1管	672μL/管
核酸提取液(DNA Extraction)	2管	1.5mL/管
酶混合物(Enzymes MIX)	1管	48μL/管
阴性对照(NTC)	1管	50μL/管
Lep阳性对照(Lep-PTC)	1管	50μL/管

四、储存条件及有效期：
本试剂盒于-20℃以下保存，有效期为12个月。

五、荧光PCR仪器适用范围：
ABI系列，Roche系列等荧光定量PCR检测仪等。

六、样品的采集与DNA提取
6.1 样品的采集
病死动物取心、肝、脾、肺、肾、淋巴结等组织1g；活动物用无菌注射器抽取3～5mL 血液。
6.2 样品前处理
每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.05g于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液 100µL于 1.5mL灭菌离心管中；血液样本：取抗凝血下层血细胞 50µL，加入 100µL 双蒸水吹匀。
6.3 DNA提取
6.3.1 对上述处理好的样本加入等体积核酸提取液(固体标本加入50μL核酸提取液)，100℃恒温处理10min，13000rpm离心5min，取上清液转移至新的1.5mL EP管，-20℃保存；
6.3.2 DNA的提取也可以采用商业化DNA提取试剂盒。
 注：阳性对照和阴性对照为已经抽提好的核酸(无需提取)，直接取5µL加入到反应体系中即可。由于阳性对照浓度较高，建议最后在样品制备区域加入阳性对照。

七、检测步骤：
7.1 试剂的准备
从试剂盒中取出荧光PCR反应液(Lep-qPCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振荡混匀后，10000rpm离心10s。
设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照)，每个测试反应体系配制如下表：

试剂	每个反应加入的量	N个反应加入的量
荧光PCR反应液	14µL	N×14µL
酶混合物	1 µL	N×1 µL
总量	15 µL	N×15µL

计算好各试剂的使用量，加入一适当体积洁净离心管中，充分混匀，10000rpm离心10s，向设定的N个PCR反应管中分别加入15μL荧光PCR反应液，向每管中加入处理后样品或阴性对照(NTC)和阳性对照(Lep-PTC)5μL，10000rpm瞬时离心10秒。
7.2 qPCR反应条件
将各反应管放入定量PCR仪器的反应槽内。推荐循环条件：

	1循环	50℃ for 2 min
预变性	1循环	95℃ for 10 min
PCR扩增	40循环	95℃ for 15 sec 60℃ for 60 sec

在60℃延伸时收集荧光信号 。报告基团：设置为FAM。淬灭基团：NONE，请勿选择ROX参比荧光。

八、结果分析：
8.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。基线和阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样品扩增曲线的最高点为准。
8.2 试验成立判定
（1）阴性对照(NTC)：不应产生任何的扩增曲线。
（2）阳性对照(Lep-PTC)：均产生扩增曲线。
（3）以上条件应同时满足，否则，此次试验视为无效。
8.3 结果判定
(1)在试验成立的条件下，Ct值≤35，且曲线有明显的指数增长曲线，表明Lep核酸阳性。
（2）Ct值显示为无的样本为阴性样本，表明Lep核酸阴性。
（3）如果Ct值>35，判为可疑样品。对于可疑样品，先看扩增曲线。如果扩增曲线为对数扩增曲线，则为可疑阳性，否则判为阴性。
（4）对于可疑阳性样品，重新抽提核酸，再次进行Lep 检测。如果重复扩增曲线为对数扩增曲线，判为样本阳性，表明Lep核酸阳性；否则判为样本阴性。

九、注意事项：
（1）初次使用前请仔细阅读说明书。并严格按照说明书步骤操作。
（2）所有使用的离心管最好高压灭菌，而且必须不含DNA酶。
（3）PCR操作应严格按照要求分区(试剂配制区、标本处理区、PCR扩增区等)，防止实验室污染。
（4）样本提取、试剂配置、加样需在不同区的超净工作台进行，以免污染。
（5）试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照卫生部《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

北京百莱博科技有限公司专业生产动物疫病PCR检测试剂盒产品，欢迎来电咨询选购北京禽流感病毒H5亚型荧光PCR检测试剂盒(AIV-H5)促销。