10×单细胞转录组测序

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  • 单细胞转录组测序是指对单个细胞进行转录组测序,并对获得的数据进行生物信息学分析。单细胞转录组测序主要用于在全基因组范围内挖掘基因调节网络,尤其适用于存在高度异质性的干细胞及胚胎发育早期的细胞群体。与活细胞成像系统相结合,单细胞转录组分析更有助于深入理解细胞分化、细胞重编程及转分化等过程及相关的基因调节网络。单细胞转录组分析的另一应用领域是发现亚细胞成分的基因表达谱,例如对在神经元的轴突或树突部分特异表达的基因分析。 转录组测序是利用第二代高通量测序技术进行cDNA测序,能够全面快速地获取某一物种特定器官或组织在某一状态下的几乎所有转录本序列信息,进行疾病与正常样本间的基因表达差异分析、可变剪切和融合基因分析,寻找与癌症、遗传病相关的致病基因,已广泛应用于基础研究、临床诊断和药物研发等领域。相对于传统芯片而言,无需预先设计特异性探针,具有分辨率高、检测范围广和准确率高的优点。
  • 2025年07月14日
    • 详细信息
    • 询价记录
    • 技术资料
    • 服务名称

      单细胞转录组测序

    • 提供商

      广州华银康科技有限公司

    • 规格

      /sample

    传统的高通量测序是对某一组织整体的细胞合集进行测序和分析,而某一个细胞的基因信息则会被整体覆盖。随着高通量测序技术的发展,人们对基因组与表型之间的关系认识越来越深刻,单个细胞也有可能携带重要的信息。
    10x单细胞测序是使用10x genomics平台,将单细胞悬液中的每个细胞分别进行标记,再通过逆转录和PCR建库测序,分析单个细胞的转录组信息。单细胞测序可以揭示复杂细胞群体的异质性,避免单个细胞的基因表达信号被群体的平均化所掩盖。



    1、10×单细胞转录组测实验方案
         测序策略:Illumina 平台  PE150
         数据量:数据量与捕获的细胞数量相关,捕获细胞越多,产生的数据量也越多,具体如下:
    捕获细胞数量
    平均每个细胞raw reads数
    数据量
    2000-5000
    40~100k
    60G
    5000-7000
    40~60k
    90G
    7000-10000
    40~60k
    120G


    2、单细胞转录组测技术优势
    (1)精准分选:利用10X Genomics平台,实现真正的单细胞测序;
    (2)细胞捕获率高达65%,可实现大量大细胞的快速高效标记、测序和分析;
    (3)项目周期短,技术应用范围广。

    4  单细胞转录组测信息分析
    1 测序数据质控和定量
    1.1 测序序列统计与质控
    1.2 数据定量
    1.3 多样本数据合并和定量均一化
    1.4 最终鉴定细胞表达量矩阵
    2 细胞亚群分类
    2.1细胞过滤
    2.2单细胞亚群分类
    3 Marker基因分析
    4 差异富集分析

    4.1差异基因GO富集性分析
    4.2 差异基因KEGG富集性分析
    5 高级分析
    5.1 已知基因在细胞亚群表达分布及热图
    5.2 细胞分化拟时序分析
    5.3 细胞相互作用图谱
    5.4 加权基因共表达(WGCNA)分析
    5.5 蛋白质互作网络分析
    5.6 细胞周期鉴定



    4、技术流程
    5、单细胞转录组测案例分析
    案例(1)Nature | 对可重复形成人体大脑皮层的“微型人脑”单细胞多样性研究

     
    通过对LN患者和健康个体的肾脏、血液和尿液样本进行单细胞转录组测序分析,结果显示,血液与肾脏中检测到的细胞分子特征存在相似性和差异性,而尿液与肾脏中白细胞亚群的分子活化状态高度相关,有望作为肾脏活检的代替物。使用低分辨率聚类将所取肾脏细胞分为了10个集群,基于谱系标记基因和其他基因上调,将集群标记为髓细胞(C4,C6)、T/NK细胞(C0,C1,C2,C5)、B细胞(C3,C8)、分裂细胞(C9)和肾上皮细胞(C7)。接下来,将每个谱系的细胞分别进行聚类,一共确定了21个免疫细胞集群和一个上皮细胞集群(图2)。 

    案例(2)Nature Immunology | 狼疮性肾炎患者的肾脏免疫细胞组成单细胞测序分析
     
    通过对LN患者和健康个体的肾脏、血液和尿液样本进行单细胞转录组测序分析,结果显示,血液与肾脏中检测到的细胞分子特征存在相似性和差异性,而尿液与肾脏中白细胞亚群的分子活化状态高度相关,有望作为肾脏活检的代替物。
    使用低分辨率聚类将所取肾脏细胞分为了10个集群,基于谱系标记基因和其他基因上调,将集群标记为髓细胞(C4,C6)、T/NK细胞(C0,C1,C2,C5)、B细胞(C3,C8)、分裂细胞(C9)和肾上皮细胞(C7)。接下来,将每个谱系的细胞分别进行聚类,一共确定了21个免疫细胞集群和一个上皮细胞集群(图2)。

    研究利用单细胞转录组学研究从LN患者和活体供体对照中获得的肾脏样本,揭示了LN肾脏免疫群体的复杂性,识别了髓细胞、NK细胞、T细胞和B细胞等多种疾病特异性亚群。研究发现: 大量的分裂细胞和NK细胞,表明IFNγ和细胞溶解分子的主要来源,CD8+T细胞中衰竭标记的少量表达表明了LN中的细胞毒性。浸润白细胞的干扰素反应特征与血液中,趋化因子受体CXCR4和CX3CR1在肾脏免疫细胞中频繁表达,提示它们可能是潜在的治疗靶点,尿液免疫细胞基因表达与相应的肾脏白细胞高度相关。





    参考文献
    [1] Arazi, A., Rao, D. A., Berthier, C. C., Davidson, A., Liu, Y., … Diamond, B. (2019). The immune cell landscape in kidneys of patients with lupus nephritis. Nature Immunology.
    [2] Velasco, S., Kedaigle, A. J., Simmons, S. K., Nash, A., Rocha, M., Quadrato, G., … Arlotta, P. (2019). Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex. Nature, 570(7762), 523–527.

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