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- 舒桐生物
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- 2026年01月03日
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pG-Transposase通过蛋白质工程技术优化设计，融合了蛋白G(Protein G)结构域，使其具备更广泛的抗体亲和性。这种新一代转座酶不仅完整保留了转座酶的DNA切割和连接活性，还显著提高了与多种抗体类型结合的能力，特别是对IgG抗体亚型的识别效率更高。pG-Transposase是改良版CUT&Tag (Cleavage Under Targets and Tagmentation)技术的核心元件，通过与各类特异性抗体结合，可更精确地定位至目标染色质区域，实现高效的原位DNA片段化和标记，为表观遗传修饰和转录因子结合位点的超高分辨率分析提供强大工具。相较于pA-Transposase，pG-Transposase对抗体的结合亲和力更强，适用范围更广，背景信号更低，能够更高效地满足各类精准基因组学研究需求，尤其适合低丰度表观遗传标记和稀有细胞群体的分析。
产品特点
- 广谱抗体亲和性：融合protein G蛋白，对多种IgG抗体亚型均有高亲和力；
- 增强型靶向能力：相比pA-Transposase，具有更高的抗体结合稳定性和特异性；
- 超低样本需求：可有效处理低至500个细胞样本；
- 超高灵敏度：对染色质修饰和转录因子结合位点具有亚纳米级分辨率；
- 低背景噪音：优化的酶学性能显著降低非特异性切割，提高信噪比。
产品组分
应用领域
1. 表观遗传学研究
增强型CUT&Tag技术：pG-Transposase通过其优异的抗体亲和性能，实现对感兴趣区域的超精准标记和高效文库构建。其工作原理是利用蛋白G与IgG抗体Fc段的强相互作用，将转座酶更牢固地引导至目标位点，实现极高特异性的DNA片段化和接头连接。这种技术特别适合研究极低丰度的转录因子结合位点和罕见的组蛋白修饰，能够在更低的细胞投入量条件下获取高质量数据，为单细胞水平的表观基因组学分析提供可能。
2. 二代测序(NGS)文库构建
GeneRulor Transposase是一种用于构建二代测序DNA文库的高效工具。其特点在于利用GeneRulor Transposase二聚体的特殊转座机制，能够同时完成双链DNA的切割和接头连接两个步骤。这种酶具有快速反应能力，且所需样品量少，可在单一反应中将DNA打断并在两端添加特定接头序列。这一简化的"一步法"标记方法大大优化了实验流程，不仅节省了操作时间，还降低了实验成本，因此在DNA测序文库构建领域得到广泛应用。
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文献和实验干货 | CUT and Tag 核心酶 Hyperactive PA/PG-Tn5 Transposase 大解密
PA/PG 寻找不同来源的抗体，结合在靶蛋白的附近后再进行切割。它的切割作用由 Tn5 转座酶实现，Tn5 转座酶作用机制主要分为三步： 01 转座酶（Tnp）分子（红色）与转座元件末端与特定的 19 bp ES 识别序列（白条）结合，形成两个 TnP-ES 复合体。随后两个 TnP-ES 复合体通过 TnP 的 C 末相互作用进行联会，形成 Tn5 转座酶复合体。 02 在 Mg2+ 存在下，Tnp 活化水分子，活化的水分子进行亲核攻击，水解 DNA
，将 CUT&RUN 技术升级到单细胞水平，并应用于早期胚胎研究。 2019 年 Henikoff 等发明 CUT&Tag ，使用带有接头的 Tn5 转座酶替代 MNase ，简化实验操作，将细胞量从 104 级别降到 60 个细胞甚至单细胞。 2.蛋白质-DNA 互作技术概述 ✦染色质免疫共沉淀（ChIP）: ChIP 是全基因组范围内检测蛋白-DNA 互作的标准方法，该技术由 Orlando 等于 1997 年创立[1]。 图 1：ChIP 基本原理图[1] ✦ ChIP
。 9. CUT&RUN 与 CUT&Tag 实验的主要区别是什么？ CUT&RUN 中的功能酶是融合酶 pA-MNase ，使用 Ca2+ 激活，在 0℃ 切割。CUT&RUN 实验中的二抗为选择项。回收到的 DNA 为片段化的 DNA ，后续需要接传统的 DNA 文库构建，才能得到 CUT&RUN 文库。CUT&Tag 中的功能酶是融合酶 pA/pG-Tn5 ，该酶由 Mg2+ 在 37℃ 激活转座酶切割 DNA ，实验时需要加入二抗进行信号放大。回收到的 DNA 已经带有测序引物结合
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