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蛋白定量给药组比空白组还低怎么办
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蛋白定量给药组比空白组还低的原因分析及解决方案
在蛋白zhìzǔxué或药物作用机制研究中,实验数据出现蛋白定量给药组比空白组还低的情况并不罕见,但这一现象可能涉及多种复杂因素,需要系统排查。首先需确认实验设计的合理性,包括给药剂量、作用时间是否足以引起预期效应,以及样本处理过程中是否存在蛋白降解。若排除技术误差,这一结果可能反映药物的真实生物学效应,如药物通过抑制特定信号通路导致目标蛋白表达下调,或通过促进蛋白降解途径(如泛素-蛋白酶体系统)降低蛋白水平。此外,实验中的非特异性结合或检测抗体效价不足也可能导致假阴性结果。
技术层面,建议优先验证检测方法的灵敏度与特异性。例如,采用Western Blot时需优化抗体稀释比例和封闭条件,避免高背景干扰;若使用ELISA或质谱检测,需校准标准曲线并设置内参对照。当蛋白定量给药组比空白组还低时,可增加时间梯度实验,观察蛋白动态变化趋势,或通过qPCR验证mRNA水平是否同步降低以区分转录调控与翻译后调控的影响。对于药物处理组,还需考虑细胞毒性效应——若给药浓度过高导致细胞死亡或生长停滞,可能人为降低总蛋白含量,此时应通过MTT或LDH assay评估细胞活力。
样本制备环节是关键控制点。若裂解缓冲液成分不当(如缺乏足够的蛋白酶抑制剂),或离心速度过高导致目标蛋白丢失,均可能造成蛋白定量给药组比空白组还低。推荐使用RIPA裂解液配合磷酸酶和蛋白酶抑制剂cocktail,并在4℃条件下轻柔操作。对于低丰度蛋白,可尝试预先富集(如免疫沉淀)或改用高灵敏度检测技术(如SIM-MS)。成本方面,具体费用需要根据实验需求和样品情况来确定,但质谱检测通常比免疫法更jīngzhǔn且可同时实现多靶点分析。
数据分析阶段需注意归一化方法的选择。若以总蛋白浓度作为内参,需确认给药组与空白组的加载量一致;采用管家蛋白(如GAPDH、β-actin)校正时,需验证这些蛋白在给药条件下是否稳定表达。当蛋白定量给药组比空白组还低的结果重复出现时,建议补充功能实验(如敲除/过表达模型)验证该蛋白的生物学意义,或通过co-IP检测其相互作用蛋白的变化。
常见问题:
Q1. 蛋白定量给药组比空白组还低是否一定意味着药物抑制了目标蛋白?
A:不一定。需排除技术假象(如样本处理不当或检测限不足)后,结合mRNA水平和蛋白半衰期实验综合判断。若mRNA未下调而蛋白降低,可能提示药物增强了蛋白降解途径;若mRNA同步降低,则更可能是转录水平抑制。
Q2. 如何区分药物特异性作用与细胞毒性导致的蛋白含量下降?
A:需平行检测细胞活力标志物(如ATP含量、凋亡指标),并设置浓度梯度实验。特异性作用通常呈现剂量依赖性,而细胞毒性引起的蛋白下降多在较高浓度突然出现,且伴随大量细胞死亡。此外,检测非靶蛋白(如持家基因产物)可辅助判断选择性。
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文献和实验是用于测定细胞增殖或毒性实验中活细胞数目的一种高灵敏度,无放射性的比色检测法,可替代传统的MTT法。 二、用途 药物筛选、细胞增殖测定、细胞毒性测定、肿瘤药敏试验等。 三、优点 使用方便,无需洗涤细胞,不需要放射性同位素和有机溶剂; CCK-8法能快速检测; CCK-8法的检测灵敏度很高,甚至可以测定较低细胞密度; CCK-8法的重复性优于MTT 法,产生的formazan 是水溶性的,减少因洗涤和溶解带来的误差; CCK-8法对细胞毒性小,可以多次测定选取最佳测定时间,与MTT 方法
简述:传统标准的BCA蛋白定量分析方法常规均使用试管或者微孔板进行检测,通过对传统方法进行改进,可使用BioTek公司的Take3TM 超微量多体积检测板进行原位微量BCA法蛋白定量分析。待测蛋白样品和BCA工作缓冲液按照顺序直接加在Take3TM板的微量定量孔处、温浴,使用EpochTM 微孔板分光光度计进行检测。和传统标准BCA方法(BCA工作缓冲液和蛋白质样品体积比为20:1)相比,该方法的蛋白检测灵敏度有明显的提高。相比与Mini-BCA分析方法,原位分析方法更加精确。介绍BCA
kandr20051 最近在做细胞实验,用的是WST-1检测细胞活性。在检测的前72个小时,实验都符合预期,给药组的OD值比阴性对照组的要低,但是到了96个小时以后,WST-1的结果就逆转了。给药组的OD值远远高于阴性对照组。 但最奇怪的是,WST-1的检测结果与我镜下观察到的细胞形态和多少完全不同! 这是阴性对照组 这是给药组的 为什么会出现这种结果呢?
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