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痕量脂质组 (Low-input)

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  • 针对低样本量细胞进行检测
  • 2026年01月02日
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      痕量脂质组

    痕量脂质组学助力揭示哺乳动物早期胚胎发育期间的脂质代谢重塑
    哺乳动物的生命起始于卵子和精子通过受精作用形成全能性的受精卵,经过一系列的细胞分裂、八细胞期的极化、以及随后的桑葚胚开始的谱系分化,形成包含有内细胞团(ICM)、原始内胚层(PE)和滋养外胚层(TE)的囊胚。这一过程伴随着显著的代谢重塑,然而,脂质代谢对哺乳动物早期胚胎发育的调控作用还不清楚。
    脂类在多种生物学事件中具有重要的作用,包括能量的存储与代谢、细胞的增殖与分化,以及作为信号转导分子参与信号通路。目前,哺乳动物早期胚胎发育过程中完整的脂类重塑的全景图还缺少报道。
    2024年2月,中国科学院遗传与发育生物学研究所税光厚研究组与浙江大学医学院张进研究组、中国医科大学附属盛京医院李达研究组等合作在《Nature Cell Biology》发表题为“Low-input lipidomics reveals lipid metabolism remodelling during early mammalian embryo development”的研究论文(DOI: 10.1038/s41556-023-01341-3),系统描绘了小鼠和人早期胚胎发育过程中动态变化的脂质图谱,并阐明了脂质不饱和度调控胚胎发育的功能与机制。
    产品细节图片1
    研究人员开发了一种可同时满足低样本量和高覆盖率的靶向脂质组学方法,实现了在少量小鼠胚胎(120个植入前胚胎)水平上进行代谢物的检测,基于异丙醇(IPA)的单相提取方法与Bligh & Dyer的提取方法互为验证获得了一致的全局模式的脂质组重塑数据。植入前胚胎发育过程中单个脂质类含量的动态变化支持脂质介导的功能,如发育过程中脂筏的形成增加以适应囊胚时期增强的信号转导,甘油三酯(TAG)的含量在四细胞开始至囊胚期的增加可为后期氧化活动的增强提供原料。小鼠植入前胚胎发育过程中表现出脂质不饱和度增加(体现在单不饱和脂肪酸MUFA的增加),人类早期胚胎发育过程中的脂质变化趋势及不饱和度增高方面均存在物种之间的保守性。此外,研究人员发现脂质不饱和度的上调对囊胚形成至关重要。由硬脂酰辅酶A去饱和酶-1 (SCD1)介导的脂质单不饱和度通过极性蛋白流动性调控骨架蛋白的正确分布,影响顶端和基底外侧结构域的形成,最终影响胚胎的着床率。总之,该研究系统地描绘了小鼠和人早期胚胎脂质全景图,为研究哺乳动物植入前胚胎发育中内源性脂质的重塑提供了宝贵的资源,并为脂质不饱和度调节胚胎发育和植入提供了机制上的新的见解。

    产品细节图片2

    小鼠植入前胚胎发育的阶段特异性脂质组学特征

    中科脂典技术总监Sin Man Lam博士为该论文共同第一作者,中国科学院遗传与发育生物学研究所税光厚研究员为该论文共同通讯作者。该研究受到了国家自然科学基金委、浙江省自然科学基金委的支持。

    产品细节图片3

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    1. Rossant J. Genetic Control of Early Cell Lineages in the Mammalian Embryo. Annual review of genetics. 2018;52:185-201. 2. Zhang J, Zhao J, Dahan P, Lu V, Zhang C, Li H and Teitell MA. Metabolism in Pluripotent Stem Cells and Early Mammalian Development. Cell metabolism. 2018;27:332-338. 3. Zhao J, Yao K, Yu H, Zhang L, Xu Y, Chen L, Sun Z, Zhu Y, Zhang C, Qian Y, Ji S, Pan H, Zhang M, Chen J, Correia C, Weiskittel T, Lin DW, Zhao Y, Chandrasekaran S, Fu X, Zhang D, Fan HY, Xie W, Li H, Hu Z and Zhang J. Metabolic remodelling during early mouse embryo development. Nature metabolism. 2021;3:1372-1384. 4. van Meer G, Voelker DR and Feigenson GW. Membrane lipids: where they are and how they behave. Nature reviews Molecular cell biology. 2008;9:112-24. 5. Simons K and Toomre D. Lipid rafts and signal transduction. Nature reviews Molecular cell biology. 2000;1:31-9. 6. Guan XL, Cestra G, Shui G, Kuhrs A, Schittenhelm RB, Hafen E, van der Goot FG, Robinett CC, Gatti M, Gonzalez-Gaitan M and Wenk MR. Biochemical membrane lipidomics during Drosophila development. Developmental cell. 2013;24:98-111. 7. Fraher D, Sanigorski A, Mellett NA, Meikle PJ, Sinclair AJ and Gibert Y. Zebrafish Embryonic Lipidomic Analysis Reveals that the Yolk Cell Is Metabolically Active in Processing Lipid. Cell reports. 2016;14:1317-1329. 8. Nakamura MT and Nara TY. Structure, function, and dietary regulation of delta6, delta5, and delta9 desaturases. Annual review of nutrition. 2004;24:345-76. 9. Lim HYG and Plachta N. Cytoskeletal control of early mammalian development. Nature reviews Molecular cell biology. 2021;22:548-562. 10. Zhu M, Cornwall-Scoones J, Wang P, Handford CE, Na J, Thomson M and Zernicka-Goetz M. Developmental clock and mechanism of de novo polarization of the mouse embryo. Science (New York, NY). 2020;370.
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