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- 裸鼠是随着近代医学的发展，特别是肿瘤学和免疫学研究的需要，在近十几年中发展起来的动物模型。 由于裸鼠的免疫缺陷，在一定情况下，不排斥来自异种动物的组织移植，因此，可用其建立理想的人类肿 瘤可移植实验动物肿瘤模型。人体肿瘤移植于免疫缺陷动物（裸鼠），能保持其生物学特性，用于研究人 体肿瘤对药物的敏感性有很大帮助。利用裸鼠建立肿瘤模型（即裸鼠成瘤）进行肿瘤的防治研究，是基础 医学研究中的重要课题。
- 浙江省
- 2025年07月11日
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XSL
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脊髓损伤动物模型 神经系统模型
急性脊髓损伤(ASCI)小鼠模型的建模方法
模式动物品系：SPF级ICR小鼠，健康，雄性，8~12W
实验分组：
实验分六组：正常对照组、模型组、阳性药组、受试药组三个剂量组。
实验周期：4-6 weeks
建模方法：
1、取 ICR 小鼠，戊Ba比妥钠麻醉后，采用椎板切除术暴露 T9-T10 处脊髓。然后采用脊髓打击器，于暴 露脊髓处施加 90 kilodynes 的力造成挫伤型脊髓损伤，SCI 后连续 10 天每天肌肉注射庆大霉素 （8mg/kg）防止术后感染，并每天两次人工膀胱按压挤尿直至恢复自主膀胱活动为止（防止尿潴留）。 2、处理一周后进行 BBB 评分评估小鼠后肢运动能力；
3、BBB score=0 时，则模型构建成功。将构模成功的小鼠分为两组，每组 8只，于挫伤型 SCI 处理 1week 后，于大鼠尾静脉处进行注射处理（模型组只注射生理盐水，治疗组注射含有受试药物的生理盐水 ）。
4、SCI 后，16 只小鼠饲养 3week 时，根据SCI后 3 week 结果每组取 3 只效果最显著的小鼠取脊髓进行 病理学检测，剩余 10 只小鼠继续饲养并与5week，7week，9week进行BBB 评分和机械触诱发痛检测。 SCI后 9week 时所有受损脊髓中心进行冻存或 OCT 包埋。
模型评价
1. BBB test
于药物注射后每隔一周进行 BBB test，直至移植后 8 周（即 SCI 后 3week、5week、7week、9week）。 药物注射后 2 周（即 SCI 后 3week）共 16 只小鼠进行行为学检测数据，选择变化显著的 3 只小鼠（每组 3 只，即 6 只小鼠）的脊髓组织进行病理学检测。 剩余 5 只小鼠（每组 5 只，即 10 只小鼠）依旧隔一周（即 SCI 后 5week、7week、9week）进行 BBB test。分值范围为0-21分，其中0分代表后肢完全失去运动功能，21分代表后肢运动功能基本正常。
2. Mechanical allodynia test （机械触诱发痛检测）
使用 Von Frey 测痛套件，记录缩足的压力（g），2 分钟时间间隔内测量 4 次，剔除最大值和最小值后获 取的中间值作为痛阈（g）。
脊髓损伤模型的建立及术后小鼠情况：
所有实验小鼠在打击时均出现痉挛性摆尾，双下肢及躯体回缩扑动，随后双下肢瘫痪，损伤节段脊髓硬膜 完整、出血、水肿。所有麻醉后小鼠于术后苏醒，出现双下肢瘫痪，运动、感觉功能丧失，依靠双上肢移 动躯体，头颈部活动正常。术后1d，所有小鼠BBB评分均小于1分，活动明显减少，进食、饮水量减少， 协助排尿7d后大部分小鼠恢复自主排尿功能。 机械触诱发痛检测： 将小鼠置于金属网格的架子上使之适应环境，采用Von Frey丝自足底下方垂直剌激后爪底皮肤表面，能引 起阳性缩爪反应所需的最低力度记为缩爪阈值，造模后小鼠的PWTs值较正常小鼠均下降。
组织病理学
3.免疫荧光
药物注射后两周，取受损脊髓组织，石蜡切片后，检测其中 MAP-1 的表达分布，
4.小胶质细胞/巨噬细胞检测- 激光共聚焦
药物注射后两周，取受损脊髓组织，石蜡切片后，检测其中 ED1(小胶质细胞/巨噬细胞活化marker)。
需确认的信息
1. 模型种属（大鼠还是小鼠或是其他种属）
2. 动物体重有无要求，年龄有无要求
3. 雌雄有无要求
4. 模型构建具体方案
5. 取材要求（采血、取组织样本）
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文献和实验知识，提高公众对乳腺癌的关注。 图 1. 2020 年全球范围乳腺癌年龄标准化发病率预估 动物模型是疾病研究及治疗方法探索中必不可少的工具，一个理想的乳腺癌动物模型应与人乳腺癌的肿瘤分子特性及生物行为学等方面存在共性，以便于发病机制的研究及治疗新药的开发。但从癌症的分型来看，单一的动物模型对乳腺癌表型模拟程度有限，因此在实际研究中还需结合具体需求选择合适的动物模型，才能更好地达到研究目的。接下来小编将带大家一起了解一下不同的乳腺癌模型特点及如何选择合适的模型。 乳腺癌动物模型主流的乳腺癌小鼠模型
癌症已经成为影响人类健康的重要疾病，发病率呈现逐年上升趋势，癌症研究领域中公认的缺陷之一是缺乏能够研究癌变和癌症治疗的模型系统。在过去的几十年中，抗肿瘤治疗药物的研发呈现爆炸式的增长，但是绝大多数新疗法都不能顺利通过III期临床试验，其主要原因就是缺乏合适的体内模型。我们常用的人类肿瘤细胞系或患者源性肿瘤移植到免疫缺陷小鼠体内的肿瘤动物模型，使用人类肿瘤细胞系建立的动物模型称作肿瘤细胞系异种移植模型（Cancer cell line-based xenograft , CDX），而使
jchent 有意研究wnt信号通路，但是生手不知如何下手。看到一篇文献做的是鸟的wnt相关基因表达，我想换一种动物模型，比如将鸟换成小鼠，将来可以比较二者的不同。不确定这是否可算作是科研创新？意义大吗？非常感谢！！ qingguyouquan 我认为不算科研创新，是跟在别人后面走而已。不过也可以了，如果结果好的话毕业时没问题的。严格意义上的创新基本上是别人没怎么做或者没怎么涉及的，而你从另一个角度独辟蹊径，取得了一定成果
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