IRAK1-PIN1信号轴驱动肿瘤内在放疗抵抗

An IRAK1-PIN1 signalling axis drives intrinsic tumour resistance to radiation therapy.

作者信息Peter H Liu, Richa B Shah, Yuanyuan Li, Arshi Arora, Peter Man-Un Ung, Renuka Raman, Andrej Gorbatenko, Shingo Kozono, Xiao Zhen Zhou, Vincent Brechin, John M Barbaro, Ruth Thompson, Richard M White, Julio A Aguirre-Ghiso, John V Heymach, Kun Ping Lu, Jose M Silva, Katherine S Panageas, Avner Schlessinger, Robert G Maki, Heath D Skinner, Elisa de Stanchina, Samuel Sidi
PMID30664786
发布时间2019-02
DOI10.1038/s41556-018-0260-7

实验完整度

高

包含斑马鱼模型、多种癌细胞系、患者队列及异种移植模型,并有基因和药理功能验证及机制验证

主要模型

p53M214K/M214K斑马鱼胚胎 TP53突变人癌细胞系(HeLa、CAL27、SAS等) SAS细胞NOD/SCID小鼠异种移植瘤模型 MDACC HNSCC患者队列

重点核对

斑马鱼胚胎在18 hpf接受15 Gy全身照射,120 hpf评分DTC IRAK1抑制剂R406和Ginsenoside-Rb1在HeLa细胞中测定的MTD及2倍MTD用于癌细胞系筛选 IRAK1 T209磷酸化作为辐射诱导激活的指标 PIN1抑制剂EGCG和buparvaquone与IRAK1抑制剂联合的协同效应通过组合指数评估 异种移植瘤模型中Ginsenoside Rb1 20 mg/kg腹腔注射每日×5持续3周,EGCG 50 mg/kg腹腔注射QD3持续3周,局部放疗2.5 Gy一次

摘要

基于药物的克服肿瘤放疗抵抗(R-RT)策略仍受限于传统放疗增敏剂(如铂类)的单药毒性以及靶向替代方案的缺乏。在筛选能够恢复p53突变斑马鱼放疗敏感性且在未照射野生型动物中耐受的化合物时,我们鉴定了苯并咪唑类驱虫药奥芬达唑。出乎意料的是,奥芬达唑通过抑制IRAK1发挥作用,而IRAK1是一种参与白细胞介素-1和Toll样受体(IL-1R/TLR)免疫反应的激酶。IRAK1通过涉及IRAK4和TRAF6但不涉及IL-1R/TLR—IRAK衔接蛋白MyD88的通路驱动R-RT。辐射激活的IRAK1不是刺激NF-κB,而是阻止由PIDDosome复合物(PIDD/RAIDD/caspase-2)介导的细胞凋亡。用IRAK1抑制剂阻断该通路可抑制源自TP53突变预测R-RT的癌症的肿瘤模型中的R-RT。最后,IRAK1抑制剂与PIN1抑制剂协同作用,PIN1是一种脯氨酰异构酶,对病原体和如本文所示电离辐射诱导的IRAK1激活至关重要。这些数据确定了IRAK1辐射响应通路作为合理的化放疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否找到靶向性药物克服TP53突变肿瘤的放疗抵抗,并阐明其作用机制?
核心机制
辐射激活IRAK1,IRAK1通过不依赖MyD88但涉及IRAK4和TRAF6的通路抑制PIDDosome(PIDD/RAIDD/caspase-2)介导的凋亡,从而驱动放疗抵抗;PIN1对辐射诱导的IRAK1激活至关重要。
主要证据
在p53突变斑马鱼中筛选发现奥芬达唑靶向IRAK1;IRAK1抑制剂在多种TP53突变癌细胞系和异种移植瘤中恢复放疗敏感性;基因敲低/敲除和突变体 rescue 实验验证IRAK1及PIDDosome通路;PIN1抑制剂与IRAK1抑制剂协同。
研究意义
确定IRAK1辐射响应通路为合理的化放疗靶点,IRAK1±PIN1抑制剂策略可能改善TP53突变肿瘤的放疗增敏,且药物毒性可能局限于放疗野内。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

斑马鱼放疗增敏剂筛选

鉴定能够恢复p53突变斑马鱼放疗敏感性的化合物

对1151个小分子(包括640个FDA批准药物)在p53M214K/M214K胚胎中进行筛选,以IR后 dorsal tail curvature(DTC)为读出,并复筛 top hits

2

奥芬达唑靶点鉴定

确定奥芬达唑放疗增敏的分子靶点

使用SEA算法预测靶点,并用特异性抑制剂在斑马鱼中验证;通过KINOMEScan和体外激酶实验验证奥芬达唑对IRAK1的抑制;分子对接预测结合位点

3

IRAK1在放疗抵抗中的功能验证

验证IRAK1抑制或敲低能否重现奥芬达唑的放疗增敏效应

在斑马鱼胚胎中使用morpholino敲低Irak1,在HeLa等细胞中使用siRNA/shRNA/CRISPR敲低或敲除IRAK1,并用WT或突变体IRAK1进行rescue实验

4

IRAK1机制通路解析

确定IRAK1驱动放疗抵抗的信号通路及与PIDDosome的关系

检测IR后IRAK1 T209磷酸化、NF-κB/p38/JNK/ERK激活;用siRNA敲低MyD88、IRAK4、TRAF6、PIDD、RAIDD、caspase-2;检测caspase-2成熟和PIDD T788磷酸化

5

IRAK1抑制剂在肿瘤细胞模型中的广谱验证

评估IRAK1抑制剂在多种TP53突变放疗抵抗癌细胞系中的放疗增敏效果

在12种TP53突变癌细胞系及MCF7中,用R406和Ginsenoside-Rb1在MTD和2倍MTD下联合IR(0、2.5、5、7.5 Gy),用AlamarBlue检测细胞活力;并检测IRAK1 T209磷酸化

6

PIN1在放疗抵抗中的作用及与IRAK1的协同

验证PIN1抑制能否克服放疗抵抗,并测试PIN1抑制剂与IRAK1抑制剂的协同效应

在斑马鱼、HeLa、HNSCC细胞系中敲低或抑制PIN1;用PIN1抑制剂EGCG和buparvaquone与IRAK1抑制剂联合,在亚治疗剂量下评估协同;在SAS异种移植瘤模型中验证联合效果

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
FDA批准药物库V1Enzo Life Sciences--
Gö6976Calbiochem--
奥芬达唑VWR--
阿苯达唑VWR--
RicobendazoleSigma-Aldrich--
甲苯达唑Santa Cruz Biotechnologies--
芬苯达唑Santa Cruz Biotechnologies--
IRAK1/4抑制剂SIGMAI5409
R406Selleck ChemicalsS2194
人参皂苷Rb1Abcamab142646
人参皂苷Rb1J&K Scientific112127
布帕伐醌Santa Cruz Biotechnologysc-210970
表没食子儿茶素没食子酸酯SIGMAE4268
表没食子儿茶素没食子酸酯SIGMAE4143
重组人IL-1βPeprotech200-01B
盐酸多西环素SIGMAD9891-1G
顺铂----
ApopTag荧光原位凋亡检测试剂盒----
抗激活型Caspase-3抗体StressGenAAs-103
抗γH2AX抗体Millipore05-636
mMESSAGE mMACHINE SP6试剂盒AmbionAM1340
Q5定点突变试剂盒NEBE0552S
X-tremeGENE siRNA转染试剂Roche--
lentiCRISPR v2----
BbsINew England BiolabsR0580
T4连接酶NEBM0202
XL-1 blue感受态大肠杆菌--200249
jetPEIPolyplus101-10N
Lenti-X浓缩试剂Clontech631231
聚凝胺Milliporetr-1003-g
AlamarBlueThermoFisher--
结晶紫Sigma-Aldrich--
APO-BRDU试剂盒BD Biosciences--
NuPAGE LDS上样缓冲液(4X)Invitrogen--
硝酸纤维素膜Thermo Scientific--
SuperSignal West Pico化学发光底物Pierce Biotechnology--
SuperSignal West Dura延长持续时间底物Pierce Biotechnology--
抗γH2AX (Ser139)抗体Cell Signaling Technology9718
抗Chk1 (克隆G-4)抗体Santa Cruzsc-8408
抗Chk1pSer345 (克隆13303)抗体Cell Signaling Technology2348
抗PIDD (抗LRDD,克隆Anto1)抗体Novus BiologicalsNBP1-97595
抗RAIDD (克隆4B12)抗体MBL--
抗PIDDpT788抗体----
抗caspase-2 (克隆11B4)抗体EMD MilliporeMAB3507
抗IRAK1抗体Cell Signaling Technology4504
抗IRAK1pT209抗体Assay BiotechA1074
抗IRAK1pS376抗体Genetex55332
抗IRAK4抗体Cell Signaling Technology4363
抗ERKpT202/Y204抗体Cell Signaling Technology4370
抗ERK1/2抗体Cell Signaling Technology4696
抗p38pT180/Y182抗体Cell Signaling Technology4511
抗p38抗体BD Biosciences610168
抗JNKpT183/Y185抗体Santa Cruzsc-6254
抗IκBα抗体Cell Signaling Technology4814
抗TRAF6抗体Santa Cruzsc-8409
抗MyD88抗体Cell Signaling4283
抗PIN1抗体Abcamab53350
抗actin抗体Abcamab8227
抗Chk2 (克隆7)抗体Millipore--
抗p-Chk2 (T68)抗体Cell Signaling2661
抗GAPDH抗体Cell Signaling2118
抗FLAG (DYKDDDDK标签)抗体Cell Signaling Technology2368
抗兔Alexa Fluor 488Invitrogen--
含DAPI的Vectashield封片剂Vector LaboratoriesCB-2000
cleaved Caspase-3 (Asp175)兔抗体Cell Signaling9661
波形蛋白大鼠抗体R&D systemsMAB2105
Alexa Fluor 488山羊抗兔InvitrogenA11008
Alexa Fluor 568山羊抗大鼠InvitrogenA11077
重组PIN1VWR--
蛋白质热迁移缓冲液Applied Biosciences--
热迁移染料----
StepOne Plus仪器Applied Biosciences--
Suc-Ala-pSer-Pro-Phe-pNA----
Suc-Ala-Glu-Pro-Phe-pNA----
Suc-Ala-Ala-Pro-Phe-pNA----
全反式维甲酸SigmaR2625
环孢菌素ASigma300224
FK-506SigmaF4679

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
斑马鱼放疗增敏剂筛选
胚胎处理时间(17 hpf去绒毛膜,18 hpf照射)、照射剂量15 Gy、药物浓度20 μg/mL、DTC评分时间120 hpf、每孔胚胎数≥15、实验重复次数
阅读提示:Methods 'Zebrafish Drug Screen'及Figure 1 legend
IRAK1抑制剂在癌细胞系中的放疗增敏
细胞系来源和TP53状态、药物MTD(R406为0.5 μg/mL,Ginsenoside-Rb1需2.5 Gy达到MTD)、IR剂量(0、2.5、5、7.5 Gy)、检测时间(IR后3-4天)、重复数
阅读提示:Methods 'Cell Culture and Cell Lines'、'AlamarBlue Cell Survival Assay'及Figure 5 legend
IRAK1机制验证(PIDDosome通路)
siRNA浓度20 nM、IR剂量10 Gy、Western blot检测时间(IR后24小时或指定分钟)、抗体来源和稀释比例
阅读提示:Methods 'siRNA transfection, shRNA transduction, DNA transfection and constructs'、'Western Blotting and Antibodies'及Figure 4 legend
PIN1与IRAK1抑制剂协同效应
亚治疗剂量选择(EGCG 5 μg/mL、buparvaquone 0.5 μg/mL、R406 0.1 μg/mL、Ginsenoside Rb1 5 μg/mL)、IR剂量、协同分析方法(组合指数)
阅读提示:Methods 'Quantification of synergistic drug interactions'及Figure 7 legend
SAS异种移植瘤模型
细胞接种量(2×10^6)、小鼠品系(NOD/SCID)和性别年龄(6-8周龄雌性)、放疗剂量(2.5 Gy一次)、药物剂量和给药方案(Ginsenoside Rb1 20 mg/kg i.p每日×5×3周,EGCG 50 mg/kg i.p QD3×3周)、分组数(4组)、每组动物数(n=5)
阅读提示:Methods 'Xenograft studies'及Figure 7 legend