建立PM2.5诱导的急性肺损伤小鼠模型
模拟PM2.5暴露引起的急性肺损伤,评估MCC950的保护作用。
雄性C57BL/6JNifdc小鼠气管内滴注PM2.5(8 mg/kg)建立ALI模型,MCC950(50 mg/kg)或地塞米松(1 mg/kg)于PM2.5暴露前12 h腹腔注射,24 h后处死取材。
The NLRP3 inhibitor, MCC950, attenuates environmental pollutant PM2.5-induced acute lung injury by inhibiting alveolar macrophage pyroptosis.
包含体内小鼠ALI模型、体外MH-S细胞模型、siRNA敲低、活体成像、电镜等多层级验证,并进行了功能与机制验证。
C57BL/6JNifdc小鼠急性肺损伤模型 MH-S小鼠肺泡巨噬细胞系
PM2.5暴露浓度:体内8 mg/kg,体外100 μg/mL;处理时间:体内24 h,体外8 h MCC950给药剂量:体内50 mg/kg腹腔注射,体外3 nM;给药时间:PM2.5暴露前2 h 地塞米松作为阳性对照:体内1 mg/kg,体外10 μg/mL Nlrp3 siRNA转染敲低NLRP3验证其关键作用 实验分组:Control、PM2.5、PM2.5+MCC950、PM2.5+Dex
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟PM2.5暴露引起的急性肺损伤,评估MCC950的保护作用。
雄性C57BL/6JNifdc小鼠气管内滴注PM2.5(8 mg/kg)建立ALI模型,MCC950(50 mg/kg)或地塞米松(1 mg/kg)于PM2.5暴露前12 h腹腔注射,24 h后处死取材。
验证PM2.5诱导的肺损伤和炎症,并评估MCC950的缓解作用。
通过HE染色评估肺组织病理变化,免疫荧光检测巨噬细胞浸润,ELISA检测BALF和血清中炎性因子(IL-1β、IL-6、IL-18、TNF-α)水平。
验证PM2.5是否诱导焦亡,以及MCC950的抑制作用。
Western blot和qPCR检测肺组织中NLRP3、Caspase-1、GSDMD-NT等表达,免疫荧光检测GSDMD与巨噬细胞标志物共定位。
在细胞水平上验证PM2.5诱导焦亡及MCC950的抑制机制。
MH-S细胞(2×10^5/孔)给予PM2.5(100 μg/mL)处理8 h,MCC950(3 nM)或地塞米松(10 μg/mL)在PM2.5前2 h加入。CCK-8评估细胞活力。
确定NLRP3在PM2.5诱导焦亡中的必要性。
MH-S细胞转染Nlrp3 siRNA或对照siRNA,随后PM2.5处理,检测NLRP3及下游蛋白表达。
在动物水平直接证据证实焦亡的存在及MCC950的抑制作用。
PM2.5暴露后24 h,尾静脉注射FAM-FLIVO探针,30 min后使用IVIS成像系统检测肺部Caspase-1活性。
从形态学上验证MH-S细胞发生焦亡及MCC950的保护作用。
不同处理的MH-S细胞固定后透射电镜观察焦亡特征(细胞肿胀、膜泡、膜破裂)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| PM2.5采样 | 高压红外大流量空气采样器 | ThermoFisher Scientific | -- |
| KQ-400KDB超声波清洗机 | -- | -- | |
| 动物模型 | MCC950 | MedChem Express | HY‑12815 |
| 地塞米松 | Shiyaoyinhu | -- | |
| 免疫荧光 | 抗CD80抗体 | Abcam | ab215166 |
| 抗GSDMD抗体 | Proteintech | 2E6C7 | |
| AlexaFluor® 488荧光二抗 | Abcam | ab150077 | |
| AlexaFluor® 594荧光二抗 | Abcam | ab150116 | |
| DAPI | Report Biotech | -- | |
| 荧光显微镜 | Zeiss | -- | |
| 细胞培养 | MH-S细胞 | American Type Culture Collection | BFN60807584 |
| RPMI 1640培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Dalian Meilun Biotechnology | -- |
| Tecan Spark 10 M酶标仪 | Tecan | -- | |
| siRNA转染 | Nlrp3 siRNA | RiboBio | -- |
| RFect转染试剂 | BAIDAI | -- | |
| 电镜观察 | 胰蛋白酶 | Solarbio | T1300 |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | H-600 | |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| qPCR | TriQuick试剂 | Solarbio | -- |
| 逆转录试剂 | GeneCopoeia | -- | |
| qPCR Mix 2.0 | GeneCopoeia | -- | |
| GAPDH引物 | Sangon Biotech | -- | |
| 蛋白提取 | NanoDrop 2000c分光光度计 | ThermoFisher Scientific | -- |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| Amersham Imager 600成像仪 | GE Healthcare | -- | |
| NLRP3抗体 | Cell Signaling Technology | 15101 | |
| Pro-Caspase1抗体 | Cell Signaling Technology | 2225 | |
| Caspase1抗体 | Cell Signaling Technology | 4199 | |
| IL1β抗体 | Cell Signaling Technology | 12242 | |
| IL18抗体 | Cell Signaling Technology | 67775 | |
| GSDMD-NT抗体 | Affinity | DF13758 | |
| NFκB抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| Phospho-NFκB p65 (Ser536)抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| IκB抗体 | Cell Signaling Technology | 4812 | |
| Phospho-IκB (Ser32)抗体 | Cell Signaling Technology | 2859 | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 20536-1-AP | |
| 山羊抗兔IgG (H+L) HRP | Affinity | S0001 | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L) HRP | Affinity | S0002 | |
| 活体成像 | FAM-FLIVO探针 | ImmunoChemistry Technologies | 980 |
| IVIS® Lumina LT Series III成像系统 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、饲养环境、PM2.5剂量、给药途径、麻醉方式、造模时间 阅读提示:Materials and methods 2.2 Animals and model of acute lung injury (ALI) |
| MCC950给药 | MCC950剂量、给药途径、给药时间(PM2.5前12h) 阅读提示:Materials and methods 2.2 Animals and model of acute lung injury (ALI) |
| 体外细胞实验 | MH-S细胞培养条件、PM2.5浓度、处理时间、MCC950浓度、给药时间 阅读提示:Materials and methods 2.6 Cell culture and treatment |
| Nlrp3敲低验证 | siRNA转染试剂、转染时间、PM2.5和MCC950处理浓度及时间 阅读提示:Materials and methods 2.8 Nlrp3 siRNA transfection |
| 活体成像检测Caspase-1 | FAM-FLIVO探针注射剂量、循环时间、成像系统设置 阅读提示:Materials and methods 2.13 In vivo assessment of caspase-1 activity |