体外肌管萎缩模型建立及山姜素效果评估
验证山姜素是否能减轻LLC条件培养基诱导的C2C12肌管萎缩。
C2C12肌管经LLC条件培养基(TCM)刺激,同时给予不同浓度山姜素(25、50、100μM)处理48小时,通过免疫荧光观察肌管形态并测量宽度,实时PCR检测Atrogin-1、Murf1 mRNA,Western blot检测蛋白表达。
Preclinical Investigation of Alpinetin in the Treatment of Cancer-Induced Cachexia via Activating PPARγ.
包含体外细胞模型(C2C12肌管)和体内动物模型(LLC荷瘤小鼠),并进行了功能验证(萎缩指标、体重、组织重量)及机制验证(分子对接、Western blot、ELISA及PPARγ抑制剂GW9662回补实验),符合高完整度标准。
C2C12肌管萎缩模型 LLC荷瘤C57BL/6小鼠恶病质模型
C2C12肌管分化条件(2%马血清,分化5-6天) LLC条件培养基制备(无血清DMEM培养48小时,过滤) 动物实验:5周龄雄性C57BL/6小鼠,皮下接种LLC细胞(1×10^6),分组(正常对照、LLC+溶剂、LLC+Alp 25mg/kg、LLC+Alp 50mg/kg),口服给药,从肿瘤接种后第7天开始,第21天终止 GW9662抑制实验(体外10μM,体内1mg/kg腹腔注射)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证山姜素是否能减轻LLC条件培养基诱导的C2C12肌管萎缩。
C2C12肌管经LLC条件培养基(TCM)刺激,同时给予不同浓度山姜素(25、50、100μM)处理48小时,通过免疫荧光观察肌管形态并测量宽度,实时PCR检测Atrogin-1、Murf1 mRNA,Western blot检测蛋白表达。
评估山姜素对LLC荷瘤小鼠癌症恶病质的治疗作用。
5周龄雄性C57BL/6小鼠皮下接种LLC细胞,分组后口服山姜素(25或50mg/kg)或溶剂(玉米油),每日一次,从接种后第7天开始,持续14天。监测体重、肿瘤大小,第21天处死,测量肌肉、脂肪、器官重量,HE染色分析肌纤维横截面积,Western blot检测肌肉Atrogin-1和MuRF1表达。
预测山姜素与PPARγ的结合模式。
使用AutoDock Vina 1.1.2进行分子对接,获取PPARγ晶体结构(RCSB PDB)和山姜素结构(PubChem),分析结合评分及氢键作用。
验证山姜素是否激活PPARγ并抑制NF-κB和STAT3磷酸化。
在体外肌管和体内肌肉组织中,通过实时PCR和Western blot检测PPARγ表达以及STAT3和NF-κB磷酸化水平;ELISA检测血清细胞因子。
验证山姜素的作用依赖于PPARγ激活。
体外实验中,C2C12肌管先用GW9662(10μM)预处理30分钟,再加入山姜素(100μM)和TCM刺激48小时,观察肌管萎缩、相关基因表达。体内实验中,LLC荷瘤小鼠给予山姜素和/或GW9662(1mg/kg腹腔注射),观察恶病质指标。
探讨在肿瘤生长晚期开始山姜素治疗是否仍有保护作用。
LLC荷瘤小鼠分别于肿瘤接种后6、10或14天开始给药山姜素(50mg/kg),观察对恶病质指标的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Hyclone | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Hyclone | -- | |
| 细胞分化 | 马血清 | Gibco | -- |
| 药物处理 | 山姜素 | MedChemExpress | -- |
| GW9662 | MedChemExpress | -- | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | MedChemExpress | -- |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Servicebio | -- |
| 牛血清白蛋白 | Sigma | -- | |
| DAPI | Boster | -- | |
| MyHC抗体 | R&D Systems | MAB4470 | |
| 二抗 | Proteintech | -- | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | MedChemExpress | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| ECL化学发光试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| p-STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145 | |
| STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9139 | |
| p-NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| NF-κB p65抗体 | Cell Signaling Technology | 8242 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| MuRF1抗体 | Abcam | ab172479 | |
| Atrogin-1抗体 | Abcam | ab168372 | |
| PPARγ抗体 | Abcam | ab59256 | |
| RNA提取 | RNAiso Plus | Takara | -- |
| cDNA合成 | PrimeScript RT预混液 | Takara | RR036A |
| 实时PCR | StepOne实时荧光定量PCR仪 | ABI | -- |
| ELISA | 小鼠TNF-α、IL-1β和IL-6 ELISA试剂盒 | Neobioscience | -- |
| 分子对接 | AutoDock Vina 1.1.2 | -- | -- |
| AutoDockTools 1.5.6 | -- | -- | |
| 显微镜 | 荧光显微镜 | Leica | -- |
| 酶标仪 | BioTek | -- | |
| 图像分析 | ImageJ软件 | NIH | -- |
| Image-Pro Plus 6.0 | Media Cybernetics | -- | |
| 成像 | Syngene G | AlphaMetrix Biotech | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与分化 | C2C12肌管分化条件:DMEM含2%马血清,每日换液,分化5-6天;LLC条件培养基制备:无血清DMEM培养48小时,3000rpm离心20分钟,0.22μm过滤,与DMEM按1:1混合并含2%马血清 阅读提示:见Methods中Cell Cultures and the Conditioned Medium Preparation部分 |
| 体外药物处理 | 山姜素处理浓度(25-100μM)和时间(48小时);CCK-8检测细胞活力的处理时间(24、48、72小时) 阅读提示:见Results及Figure 1图注 |
| 动物模型建立与分组 | 小鼠品系、性别、周龄(5周龄雄性C57BL/6);LLC细胞接种量(1×10^6 cells/100μL PBS);分组(正常+溶剂、LLC+溶剂、LLC+Alp 25mg/kg、LLC+Alp 50mg/kg);每组10只;给药开始时间(第7天);终点(第21天) 阅读提示:见Methods中Animal Experimentation及Figure 2A |
| 药物给药 | 山姜素给药途径(口服)和剂量(25、50mg/kg);GW9662给药途径(腹腔注射)和剂量(1mg/kg);溶剂对照(玉米油) 阅读提示:见Methods动物实验部分及Figure 5A |
| 分子机制验证 | PPARγ抑制剂GW9662预处理条件(体外10μM,30分钟;体内1mg/kg);检测指标(PPARγ、p-STAT3/STAT3、p-NF-κB/NF-κB) 阅读提示:见Figure 4和Figure 5图注 |