神经元组织蛋白酶S通过CX3CL1-CX3CR1轴和JAK2-STAT3通路在衰老和阿尔茨海默病中增加神经炎症并导致认知衰退

Neuronal cathepsin S increases neuroinflammation and causes cognitive decline via CX3CL1-CX3CR1 axis and JAK2-STAT3 pathway in aging and Alzheimer's disease.

作者信息Pei-Pei Liu, Xiao-Hui Liu, Ming-Jing Ren, Xiao-Tong Liu, Xiao-Qing Shi, Ming-Li Li, Shu-Ang Li, Yang Yang, Dian-Dian Wang, Yue Wu, Fan-Xiang Yin, Yan-Hong Guo, Run-Zhou Yang, Meng Cheng, Yong-Juan Xin, Jian-Sheng Kang, Bing Huang, Kai-Di Ren
PMID39453382
发布时间2025-02
DOI10.1111/acel.14393

实验完整度

包括细胞模型(BV2、HT-22)和动物模型(APP/PS1、AAV过表达/敲降)、转录组测序、FACS、免疫印迹、行为学及抑制剂干预等多层级验证。

主要模型

C57BL/6J小鼠 APP/PS1转基因小鼠 BV2小胶质细胞系 HT-22海马神经元细胞系

重点核对

神经元CTSS过表达/敲降的AAV注射及效率验证 小胶质细胞活化及M1/M2表型分析(FACS) CX3CL1-CX3CR1轴和JAK2-STAT3通路蛋白水平检测 LY3000328给药剂量及给药方式

摘要

衰老是一个涉及多种因素相互作用的复杂过程,是包括阿尔茨海默病(AD)在内的慢性疾病的主要风险之一。作为半胱氨酸蛋白酶家族成员,组织蛋白酶S(CTSS)与多种疾病中的炎症有关。在此,我们通过检测衰老小鼠海马神经元中CTSS的表达开始研究神经元CTSS在衰老和AD中的作用,并发现其显著增加,这与识别能力呈负相关。同时,我们观察到老年人血清中CTSS浓度升高。转录组和荧光激活细胞分选(FACS)结果显示,神经元中CTSS过表达加重了脑内炎症环境,使小胶质细胞激活为M1促炎表型,激活趋化因子C-X3-C基序配体1(CX3CL1)—趋化因子C-X3-C基序受体1(CX3CR1)轴和Janus激酶2(JAK2)—信号转导与转录激活因子3(STAT3)通路。由于CX3CL1由神经元分泌并作用于小胶质细胞中的CX3CR1,我们的结果首次揭示了神经元CTSS在神经元-小胶质细胞“串扰”中的作用。此外,我们观察到AD患者多个脑区(包括海马)CTSS表达升高。使用CTSS选择性抑制剂LY3000328,可挽救APP/PS1小鼠中AD相关的病理特征。我们进一步注意到,神经元CTSS过表达增加了小胶质细胞中组织蛋白酶B(CTSB)的活性,但降低了组织蛋白酶L(CTSL)的活性。总的来说,我们提供的证据表明CTSS可作为衰老的生物标志物,并通过调节神经炎症和识别在衰老和AD过程中发挥调控作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
神经元CTSS在衰老和AD中如何调节神经炎症和认知行为?
核心机制
神经元CTSS过表达通过激活CX3CL1-CX3CR1轴和JAK2-STAT3信号通路,促进小胶质细胞向M1促炎表型极化,从而加剧神经炎症并导致认知衰退。
主要证据
基于细胞系和原代神经元共培养、AAV介导的体内过表达/敲降、RNA-seq、FACS、免疫印迹和Morris水迷宫等实验,证实CTSS调控上述机制。
研究意义
作者提出CTSS可作为衰老的生物标志物和AD的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CTSS表达与衰老相关性的鉴定

筛选并验证与衰老相关且可能影响认知的差异表达基因。

对年轻和年老小鼠海马进行转录组测序,鉴定差异表达基因,并通过免疫印迹和免疫荧光验证CTSS在神经元和小胶质细胞中的表达,同时检测老年人血清CTSS水平。

2

神经元CTSS过表达对认知行为的影响

探究神经元CTSS过表达是否足以导致空间学习和记忆缺陷。

通过海马立体定位注射AAV在年轻小鼠神经元中过表达CTSS,利用Morris水迷宫评估空间学习和记忆能力。

3

神经元CTSS敲降对认知行为的影响

验证降低神经元CTSS是否能改善年老小鼠的学习记忆缺陷。

通过AAV介导的shRNA在年老小鼠海马神经元中敲降CTSS,并进行MWM测试。

4

神经元CTSS过表达对神经炎症和小胶质细胞表型的影响

研究CTSS过表达是否加剧脑内炎症反应并影响小胶质细胞活化状态。

对CTSS过表达海马进行转录组测序,利用qRT-PCR验证炎症标志物,通过FACS和免疫荧光分析小胶质细胞数量及M1/M2表型。

5

CX3CL1-CX3CR1轴及JAK2-STAT3通路的验证

确认CTSS通过CX3CL1-CX3CR1轴和JAK2-STAT3通路介导神经元-小胶质细胞串扰。

通过qRT-PCR、FACS、免疫印迹和免疫荧光检测CX3CL1、CX3CR1、p-JAK2、p-STAT3表达,并使用Transwell共培养体系验证分泌效应。

6

CTSS抑制剂LY3000328对AD病理的干预

评估CTSS选择性抑制剂LY3000328对APP/PS1小鼠AD相关病理和行为缺陷的改善作用。

对8月龄APP/PS1小鼠海马慢性注射LY3000328或DMSO,进行MWM测试、免疫荧光和免疫印迹检测Aβ沉积、小胶质细胞和通路蛋白。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
最低必需培养基Invitrogen--
牛转铁蛋白Calbiochem--
胎牛血清Gibco--
阿糖胞苷Sigma-Aldrich--
B27培养基添加剂Invitrogen--
基质胶BD Biosciences--
杜氏改良Eagle培养基Gibco--
抗CTSS抗体Santa Cruzsc-74429
抗NeuN抗体MilliporeMab377
抗Iba1抗体Abcamab178846
抗Iba1抗体Abcamab5076
抗6E10抗体Biolegend803014
抗β淀粉样蛋白1-42抗体Abcamab201060
抗CX3CR1抗体Thermo Fisher14-7986-81
抗CX3CR1抗体Abcamab308613
抗CX3CL1抗体Thermo Fisher14-6093-81
抗CREB抗体CST9197
抗磷酸化CREB抗体CST9198
DAPICST4083
RIPA裂解液CST9806
蛋白酶和磷酸酶抑制剂Thermo Fisher78441
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime Biotechnology--
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗β-actin抗体Proteintech81115-1-RR
抗JAK2抗体CST3230
抗磷酸化JAK2抗体CST3771
抗STAT3抗体CST9139
抗磷酸化STAT3抗体CST9145
抗组织蛋白酶B抗体Abcamab214428
抗组织蛋白酶L抗体Santa Cruzsc-390367
TRIzol试剂Invitrogen--
一步法基因组DNA去除和cDNA合成预混液Takara--
TB Green qPCR预混液Takara--
微体积分光光度计Thermo Fisher--
Illumina NovaSeq6000平台Illumina--
PercollGE Healthcare--
抗CD11b抗体BioLegend101211
抗CD45.2抗体BioLegend109823
抗CX3CR1抗体BioLegend149005
抗CD86抗体BioLegend105031
抗CD206抗体BioLegend141705
固定/透化试剂盒BioLegend426803
FACS Aria III流式细胞仪BD Biosciences--
Transwell培养板Corning--
LY3000328MedChemExpressHY-15533

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型与AAV注射
小鼠品系、月龄、性别、AAV滴度和注射坐标
阅读提示:见Methods 2.1和2.10,Figure 2和3的图注
CTSS检测
抗体浓度、免疫印迹蛋白上样量(30μg)、qRT-PCR引物序列及内参
阅读提示:见Methods 2.6-2.9,Table 2
行为学测试
MWM平台尺寸、水透明度、训练次数、探针测试时间;开放场测试时长
阅读提示:见Methods 2.11和2.12,Figure 2和3的图注
抑制剂处理
LY3000328剂量(0.2mg/kg)、给药体积和频率、导管植入坐标
阅读提示:见Methods 2.18,Figure 6b,c
小胶质细胞分析
FACS门控策略(CD11b+CD45int)、抗体克隆号、单细胞悬液制备步骤
阅读提示:见Methods 2.14和2.15,Figure 4f-j