外泌体传递的S100A4通过激活STAT3诱导免疫抑制和非小细胞肺癌发展

Exosome-transmitted S100A4 induces immunosuppression and non-small cell lung cancer development by activating STAT3.

作者信息Xu Wu, Hui Zhang, Gang Jiang, Minlian Peng, Cheng Li, Jiaxin Lu, Shiyin Jiang, Xiaoping Yang, Yongliang Jiang
PMID36370151
发布时间2022-12-31
DOI10.1093/cei/uxac102

实验完整度

包含体外细胞功能实验、外泌体传递实验、ChIP机制验证及体内小鼠移植瘤模型等多层级验证。

主要模型

A549细胞系 H1299细胞系 T细胞共培养体系 BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型

重点核对

使用A549和H1299细胞系,其中A549高表达S100A4,H1299低表达S100A4 敲低S100A4(si-S100A4)或过表达S100A4(oe-S100A4)的转染效率 A549细胞来源的外泌体或外泌体耗竭的条件培养基处理H1299细胞 体内实验中,每只小鼠皮下接种2×10^6个细胞(100 μl),每组6只,共24只雄性BALB/c裸鼠 ChIP实验验证STAT3与PD-L1启动子的结合

摘要

非小细胞肺癌(NSCLC)是全球肿瘤发病率和死亡率的主要原因。我们旨在研究S100A4在细胞间的传递过程,以及它是否通过影响STAT3表达来影响NSCLC的发展。首先,检测了NSCLC细胞中S100A4的表达。分离并鉴定了MRC-5、A549和H1299细胞中的外泌体。我们构建了si-S100A4和si-PD-L1转染A549细胞,以及oe-S100A4转染H1299细胞,并检测了转染效率。通过细胞功能实验评估细胞增殖、克隆形成、凋亡、细胞周期、迁移和侵袭能力。此外,应用ChIP确定S100A4与STAT3之间的靶向关系。接下来,我们探讨了NSCLC细胞来源的外泌体通过传递S100A4在NSCLC进展中的作用。最后,我们在体内验证了外泌体传递的S100A4在NSCLC中的功能。S100A4的高表达通过外泌体分泌。敲低S100A4后,细胞增殖能力下降,克隆数量减少,凋亡增加,G1期增加,S期受抑制,迁移和侵袭能力也降低。ChIP验证了STAT3和PD-L1的相互作用。敲低S100A4后,PD-L1表达下降,而ov-STAT3逆转了S100A4对PD-L1表达的影响。同时,S100A4通过激活STAT3抑制了T细胞的免疫活性。此外,敲低PD-L1抑制了细胞增殖、迁移和侵袭。NSCLC细胞来源的外泌体通过传递S100A4激活STAT3通路促进癌症进展。最后,体内实验进一步证实外泌体传递的S100A4促进了NSCLC的进展。外泌体传递的S100A4通过激活STAT3诱导免疫抑制和NSCLC的发展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
外泌体传递的S100A4是否通过影响STAT3表达促进非小细胞肺癌进展并诱导免疫抑制?
核心机制
S100A4通过激活STAT3上调PD-L1表达,抑制T细胞免疫活性,导致免疫抑制,从而促进NSCLC进展。
主要证据
体外实验显示敲低S100A4降低细胞增殖、迁移、侵袭和PD-L1表达,增加凋亡;ChIP验证STAT3与PD-L1结合;T细胞共培养实验显示S100A4抑制CD4+和CD8+ T细胞;体内实验证实敲低S100A4减少肿瘤体积,过表达增加肿瘤体积,且IHC显示PD-L1表达变化。
研究意义
本研究为NSCLC的治疗提供了新的思路和靶点,表明外泌体传递的S100A4可能成为潜在的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

S100A4表达检测

明确S100A4在NSCLC细胞中的表达水平,确定高表达和低表达的细胞系

通过RT-qPCR检测BEAS-2B、A549、H1299等细胞中S100A4的mRNA水平,证实A549为高表达,H1299为低表达。

2

外泌体提取与鉴定

验证从细胞培养上清中成功提取外泌体

使用外泌体提取试剂盒从MRC-5、A549、H1299细胞上清中提取外泌体,通过TEM观察形态,Western blot检测外泌体标志物CD63、CD9及阴性标志物Calnexin。

3

S100A4敲低和过表达效果验证

确认si-S100A4和oe-S100A4的转染效果,为后续功能实验提供基础

设计si-S100A4转染A549细胞,oe-S100A4转染H1299细胞,通过RT-qPCR和Western blot检测转染效率。

4

细胞功能实验(增殖、克隆、凋亡、周期、迁移、侵袭)

评估S100A4对NSCLC细胞体外功能的影响

使用CCK-8检测细胞增殖,克隆形成实验检测克隆能力,流式细胞术检测凋亡和细胞周期,Transwell实验检测迁移和侵袭。

5

STAT3和PD-L1表达调控及T细胞免疫活性检测

探究S100A4是否通过STAT3调控PD-L1表达,并影响T细胞活性

敲低S100A4后检测STAT3和PD-L1蛋白表达;si-STAT3敲低后验证与PD-L1的相互作用;si-S100A4处理A549后与T细胞共培养,检测CD4+和CD8+ T细胞比例;过表达STAT3观察对PD-L1表达的逆转效果。

6

外泌体传递S100A4的功能验证

证明A549细胞来源的外泌体通过传递S100A4影响NSCLC细胞功能

用A549来源的外泌体或外泌体耗竭的CM处理H1299细胞,检测S100A4表达及细胞功能;或使用si-ctrl/si-S100A4处理的外泌体处理H1299细胞。

7

体内成瘤实验

验证外泌体传递的S100A4对NSCLC肿瘤生长的影响

将敲低或过表达S100A4的细胞皮下注射到BALB/c裸鼠,监测肿瘤体积和重量,进行HE、Ki-67、TUNEL和IHC检测。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MEM培养基----
DMEM培养基----
Ham's F-12K培养基----
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素----
链霉素----
外泌体提取试剂盒SBIEXOQ5A-1
CD63抗体proteintech25682-1-AP
CD9抗体proteintech20597-1-AP
Calnexin抗体proteintech66903-1-Ig
MagniSort人CD4 T细胞富集试剂盒ThermoFisher8804-6811-74
MagniSort人CD8 T细胞富集试剂盒ThermoFisher8804-6812-74
TRIzol试剂----
逆转录试剂盒Beijing ComWin BiotechCW2569
UltraSYBR混合物试剂盒Beijing ComWin BiotechCW2601
QuantStudio1荧光定量PCR仪Thermo--
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
裂解缓冲液meilunbioMB2479
SDS-PAGE上样缓冲液----
PVDF膜----
S100A4抗体proteintech16105-1-AP
cyclin D1抗体proteintech26939-1-AP
BAX抗体proteintech50599-2-Ig
Bcl-2抗体proteintech26593-1-AP
E-钙粘蛋白抗体proteintech20874-1-AP
vimentin抗体proteintech10366-1-AP
N-钙粘蛋白抗体proteintech22018-1-AP
twist抗体proteintech11752-1-AP
slug抗体proteintech12129-1-AP
snail抗体proteintech13099-1-AP
c-Myc抗体proteintech10828-1-AP
β-连环蛋白抗体proteintech51067-2-AP
STAT3抗体proteintech10253-2-AP
PD-L1抗体proteintech17952-1-AP
β-肌动蛋白抗体proteintech66009-1-Ig
CCK-8试剂盒DOJINDONU679
酶标仪Bio-TekMB-530
Annexin V-FITC试剂keygenbioKGA108
碘化丙啶----
流式细胞仪BeckmanA00-1-1102
Transwell小室Corning33318035
Matrigel基底膜基质BD Biocoat--
显微镜Olympus--
Ki-67抗体abcamab16667
DAB显色液----
TUNEL凋亡检测试剂盒KeyGen BiotechKGA704
生物素Leagene BiotechnologyIH0125
DAB显色液ZSGB-BIOZLI-9018

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系的选择:A549(高表达S100A4)、H1299(低表达S100A4),培养基分别为Ham's F-12K和RPMI-1640,均添加10% FBS、1%青霉素和1%链霉素。
阅读提示:Methods and materials 中的 Cell culture and treatment
外泌体提取与鉴定
外泌体提取试剂盒为SBI的EXOQ5A-1;外泌体标志物CD63、CD9阳性,Calnexin阴性。
阅读提示:Methods and materials 中的 Exosome isolation and identification
基因敲低和过表达
si-S100A4转染A549,oe-S100A4转染H1299;使用si-STAT3和si-PD-L1敲低;需要确认转染效率。
阅读提示:Methods and materials 中的 Cell culture and treatment;Results 中 Figure 2A, 3C, 3F
细胞功能实验
CCK-8实验细胞密度1×10^4/孔,检测时间点12, 24, 48, 72小时;克隆形成1000细胞/孔培养2-3周;凋亡检测使用Annexin V-FITC/PI;周期检测PI染色;Transwell实验细胞密度1×10^6/ml,培养48小时。
阅读提示:Methods and materials 中的 Cell Counting Kit 8 assay, Clone formation assay, Cell apoptosis and cycle, Transwell assay
机制验证
ChIP实验检测STAT3与PD-L1结合;T细胞共培养检测CD4+和CD8+ T细胞比例。
阅读提示:Methods and materials 中的 Chromatin immunoprecipitation 和 Identification and treatment of CD8+ and CD4+ T cells;Results 中的 Figure 3
体内实验
BALB/c裸鼠,雄性,4周龄,每组6只;皮下注射2×10^6个细胞(100 μl);肿瘤体积每4天监测,30天后处死。
阅读提示:Methods and materials 中的 In vivo tumorigenesis;Results 中的 Figure 5