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        求RAW264.7,BMDM转染经验分享

        相关实验:细胞转染

        user-title

        dxy_trllw4r9

        用lipofectmine2000和磷酸钙转染根本转染进去,剂量都是按照说明书的,有哪位转染过吗,或者电转转巨噬细胞条件是怎样的呢

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        4 个回答

        user-title

        loveliufudan

        有帮助

        对于 RAW264.7 和 BMDM(骨髓源巨噬细胞)的转染,有几种常见的方法可供选择,包括化学转染和电转染。下面是一些转染经验分享和常用条件的建议:

        化学转染(使用 Lipofectamine 2000):

        1. 细胞密度:在转染前,确保细胞达到适当的密度,通常是约70-80%的细胞完全覆盖培养皿。

        2. 转染试剂:按照 Lipofectamine 2000 的说明书准确配制转染试剂。注意检查试剂的保质期,并在转染前预先验证试剂的适用性。

        3. DNA浓度:确定要转染的 DNA 浓度,并根据试剂说明书中的建议加入适当的量。过高或过低的 DNA 浓度可能会影响转染效果。

        4. 转染条件:将 DNA 和转染试剂混合,根据说明书中的推荐时间进行孵育。确保细胞在转染混合物中暴露的时间不要太长或太短。

        5. 转染混合物制备:将 DNA-转染试剂复合物缓慢滴加到细胞培养皿中,并轻轻摇晃培养皿以确保均匀分布。避免形成气泡。

        电转染:

        1. 细胞密度:确保细胞达到适当的密度,通常是约70-80%的细胞完全覆盖培养皿。

        2. 转染试剂:选择适合电转染的试剂,如电转染缓冲液。请参考相关文献或试剂的说明书,了解正确的试剂使用方法和浓度。

        3. DNA浓度:确定要转染的 DNA 浓度,并根据试剂说明书中的建议加入适当的量。过高或过低的 DNA 浓度可能会影响转染效果。

        4. 电转染条件:根据所使用的设备和试剂的建议,设置适当的电转染条件,如脉冲电压、脉冲长度和脉冲间隔时间等。

        5. 转染混合物制备:将 DNA 与电转染缓冲液混合,确保混合均匀,并在转染前立即使用。

        无论使用化学转染还是电转染,注意以下几点:

        • 在转染前进行细胞处理和培养,确保细胞健康且在对应的生长阶段。

        - 根据实验要求,选择适当的质粒载体或 siRNA 等核酸材料,并在实验设计中包含相应的对照组。

        - 进行适当的阳性对照实验,以确保转染方法的有效性。

        - 转染后,进行适当的培养和处理步骤,如培养基更换、细胞收集或进一步分析。

        请注意,转染条件和方法可能因实验目的、细胞类型和使用的试剂而有所不同。建议在实验前进行文献调研和实验优化,以获得最佳的转染效果。

        user-title

        dxyc42u

        有帮助

        我转染过,这个细胞很难转染,我最后用病毒转染的

        user-title

        sswei

        有帮助

        电转染条件是:

        对于0.2 cm电转杯,细胞密度为10x10^6 cells/ml,DNA用量为2μg,电转液体积为100μl,电压为180V, 电容为950μF,脉冲时间为10mSec。

        对于0.4 cm电转杯,细胞密度为10x10^6 cells/ml,DNA用量为5μg,电转液体积为250μl,电压为275V, 电容为950μF,脉冲时间为15mSec。

        user-title

        土井挞克树

        有帮助

        转染步骤:

        1、BMDM巨噬细胞置于 6 孔板中;


        2、密度为 2.5 × 105细胞;


        3、细胞转染密度为 70%;


        4、10 µL siRNA (100 pmol/mL) 和10ul转染试剂室温混合恒温 15 分钟;


        5、然后加入含有 1ml 的正常 DMEM培养基到 6 孔板;


        6、24 小时后换成新鲜 DMEM培养基继续培养;

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